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. 2018 Apr;39(4):336–338. [Article in Chinese] doi: 10.3760/cma.j.issn.0253-2727.2018.04.017

祛铁治疗对IPSS低危/中危-1骨髓增生异常综合征患者EPO-Stat5信号通路及调节性T细胞表达的影响

Effect of iron chelation therapy on EPO-Stat5 signaling pathway and Treg expression in IPSS low risk/medium risk-1 group myelodysplastic syndrome patients

Yao Zhang 1, Shuang Han 1, Cha Guo 1, Qingxia Zhang 1, Chunkang Chang 1,
Editor: 刘 爽1
PMCID: PMC7342130  PMID: 29779334

骨髓增生异常综合征(MDS)为造血干细胞克隆性疾病,以骨髓病态造血为特征。低危/中危-1 MDS属于疾病早期,其病理表现以骨髓造血细胞过度增殖和凋亡为主,贫血是常见的临床特征之一。长期输血是MDS患者出现铁过载的主要原因[1]。部分铁过载的MDS患者接受袪铁治疗后血常规可恢复正常,能不依赖输血长期生存[2]。红细胞生成依赖EPO-EPOR-Janus激酶2-转录激活因子5(Stat5)信号转导。Foxp3是调节性T细胞(Terg细胞)特异性标志物,其表达与Stat5的调控有关[3],在MDS中的表达尚有争议。铁过载对EPO-Stat5信号通路及Terg细胞表达的影响尚不清楚。本研究我们初步探讨祛铁治疗对IPSS低危/中危-1 MDS患者EPO、Stat5、Terg细胞表达及红细胞生成的影响,现报道如下。

病例与方法

1.病例:以2014年3月至2018年1月我院诊治的IPSS分组为低危/中危-1的42例MDS患者为研究对象,男24例,女18例,中位年龄54(32~81)岁。MDS诊断、分型及预后分组参照文献[4]标准,其中难治性血细胞减少伴单系发育异常(RCUD)1例,难治性贫血伴环状铁粒幼红细胞(RARS)6例,难治性血细胞减少伴多系发育异常(RCMD)35例。排除活动性炎症、肝病、肿瘤、溶血和酗酒等因素的影响,以血清铁蛋白(SF)>1 000 µg/L为铁过载[5]。42例MDS患者中,铁过载组22例,对照组20例。本研究征得我院伦理委员会批准,样本的取得均经患者知情同意。

2.治疗:铁过载组中18例患者接受甲磺酸去铁胺(20~60 mg·kg−1·d−1,持续皮下泵入12 h)或地拉罗司(30 mg·kg−1·d−1,口服)袪铁治疗,14 d为1个疗程,治疗4个疗程复查相关指标进行评估。全部42例患者检测指标近1个月内未接受重组EPO治疗,祛铁治疗期间患者仅接受输血、雄激素、益血生胶囊等促造血支持治疗。

3.标本采集及处理:采集全部患者治疗前及18例袪铁治疗组患者治疗4个疗程时外周血5 ml,EDTA抗凝。取其中2 ml常规分离血浆,行ELISA检测;取其中200 µl提取总RNA,行PCR检测;余下用淋巴细胞分离液收集单个核细胞,调整细胞数为1×106行流式细胞术检测。

4.血红蛋白、网织红细胞、促红细胞生成素及铁代谢指标检测:采用Sysmex XE-2100全自动血细胞分析仪测定HGB、网织红细胞绝对计数(Ret)。放射免疫法测定EPO、血清铁蛋白(SF)含量,亚铁嗪显色法测定血清铁(SI)、总铁结合力(TIBC)。

5.流式细胞术检测外周血CD3+CD4+ T细胞表面CD25及Foxp3表达:常规处理后实验管加入鼠抗人FITC-CD3、PerCP-CD4、APC-CD25、PE-Foxp3单抗各20 µl,对照管加入FITC-小鼠IgG2a、PerCP-小鼠IgG2a、APC-小鼠IgG2a、PE-小鼠IgG2a单抗各20 µl,上FACS Calibur流式细胞仪进行检测,抗体及仪器均为美国BD公司产品,通过CELL Quest软件分析CD3+CD4+/CD3+、CD3+CD4+CD25+/CD3+CD4+、CD3+CD4+CD25+Foxp3+/CD3+CD4+细胞比例。

6.ELISA法检测血浆中p-STAT5浓度:采用人磷酸化(p)-Stat5 ELISA试剂盒(美国BIM Bioscience公司产品),实验要求和步骤严格按照说明书进行,450 nm波长处测定各孔的吸光度值。绘制标准曲线,计算样品p-Stat5浓度。

7.RQ-PCR检测外周血中Stat5及Foxp3 mRNA表达:Stat5(货号DHS065456)、Foxp3(货号DHS067532)、ACTB(货号DHS579991)引物由上海杏园生物科技有限公司合成。提取单个核细胞的总RNA,按照TransScript Green One-Step qRT-PCR SuperMix试剂盒(北京全式金生物技术有限公司产品)进行PCR反应。反应条件:逆转录,45 °C 5 min;预变性,94 °C 30 s;40个循环的扩增,95 °C 10 s,60 °C 30 s。以ACTB为内参照,使用LightCycler相对定量软件计算目的基因的相对定量表达。

8.统计学处理:应用SPSS 19.0软件进行统计分析,非正态分布数据以中位数(四分位距)表示,铁过载组与对照组采用Mann-Whitney U检验进行组间比较,袪铁治疗前后数据采用两相关样本的Wilcoxon检验进行组间比较;正态分布数据以x±s表示,铁过载组与对照组比较采用独立样本的t检验,袪铁治疗前后数据采用配对t检验进行比较。P<0.05为差异有统计学意义。

结果

1.铁过载对较低危MDS患者铁代谢指标、EPO、Stat5、Treg细胞表达及红细胞生成的影响:与对照组相比,铁过载组SF、SI及EPO水平明显升高,TIBC、Stat5 mRNA相对定量、p-Stat5、Ret、HGB表达明显降低(P值均<0.05)。与对照组Treg细胞表达比较,铁过载组CD3+CD4+/CD3+比例升高,Foxp3 mRNA相对定量、CD3+CD4+CD25+/CD3+CD4+及CD3+CD4+CD25+Foxp3+/CD3+CD4+比例降低(P值均<0.05)(表1)。

表1. 低危/中危-1骨髓增生异常综合征患者铁过载组和对照组铁代谢指标、EPO、Stat5、Treg细胞表达及红细胞生成比较[x±sMQ)].

组别 例数 SF(µg/L) SI(µmol/L) TIBC(µmol/L) EPO(U/L) Stat5 mRNA(×10−3 磷酸化Stat5(ng/L)
铁过载组 22 4 382.53±67.26 39.84±9.83 33.58±6.74 4 454.58±66.74 1.70(1.23) 30.95±11.98
对照组 20 386.32±19.81 30.81±7.52 47.22±7.63 798.93±28.27 16.29(8.50) 167.54±52.08

统计量 255.568 3.316 −6.152 234.788 −4.998 −11.457
P <0.001 0.002 <0.001 <0.001 <0.001 <0.001
组别 例数 Foxp3 mRNA(×10−3 CD3+CD4+/CD3+(%) CD3+CD4+CD25+/CD3+CD4+(%) CD3+CD4+CD25+Foxp3+/CD3+CD4+(%) Ret(×109/L) HGB(g/L)
铁过载组 22 0.85(0.40) 53.48±9.82 13.31±4.29 0.88±0.41 3.22±1.79 38.41±6.19
对照组 20 2.82(1.15) 42.91±5.31 23.51±5.75 3.03±0.86 17.51±4.79 59.61±7.74

统计量 −4.740 4.392 −6.555 −10.178 −13.040 −9.846
P <0.001 <0.001 <0.001 <0.001 <0.001 <0.001

注:SF:血清铁蛋白;SI:血清铁;TIBC:总铁结合力;Ret:网织红细胞绝对计数;正常参考值范围:SF 22~322 µg/L,SI 12.5~32.2 µmol/L,TIBC 45~82 µmol/L,EPO 4.3~29.0 U/L,Ret(28.7~75.0)×109/L

2.祛铁治疗后铁代谢指标、EPO、Stat5、Treg细胞表达及红细胞生成的变化:祛铁治疗后SF、SI、EPO较治疗前明显下降,TIBC、Stat5 mRNA相对定量、p-Stat5、Ret、HGB较前升高(P值均<0.05)。Treg细胞表达比较,治疗后CD3+CD4+/CD3+比例较前降低,Foxp3 mRNA相对定量、CD3+CD4+CD25+/CD3+CD4+及CD3+CD4+CD25+Foxp3+/CD3+CD4+比例较前明显升高(P值均<0.05)(表2)。

表2. 18例低危/中危-1骨髓增生异常综合征铁过载患者接受祛铁治疗前后铁代谢指标、EPO、Stat5、Treg细胞表达及红细胞生成比较[x±sMQ)].

组别 SF(µg/L) SI(µmol/L) TIBC(µmol/L) EPO(U/L) Stat5 mRNA(×10−3 磷酸化Stat5(ng/L)
祛铁前 4 536.56±53.16 40.59±8.62 32.27±7.49 4 663.77±68.29 1.69(0.91) 29.82±12.37
祛铁后 2 853.32±47.66 31.96±7.83 40.62±8.17 2 624.87±51.23 4.50(1.49) 74.62±19.55

统计量 16.740 12.631 −9.544 11.477 −3.724 −14.514
P <0.001 <0.001 <0.001 <0.001 <0.001 <0.001
组别 Foxp3 mRNA(×10−3 CD3+CD4+/CD3+(%) CD3+CD4+CD25+/CD3+CD4+(%) CD3+CD4+CD25+ Foxp3+/CD3+CD4+(%) Ret(×109/L) HGB(g/L)
祛铁前 0.82(0.38) 54.35±9.84 12.80±4.50 0.85±0.39 2.86±1.69 36.17±6.01
祛铁后 1.64(0.67) 46.29±7.26 18.55±4.23 2.86±0.78 7.82±2.81 50.61±7.11

统计量 −3.726 6.532 −13.527 −17.751 −11.271 −7.962
P <0.001 <0.001 <0.001 <0.001 <0.001 <0.001

注:SF:血清铁蛋白;SI:血清铁;TIBC:总铁结合力;Ret:网织红细胞绝对计数;正常参考值范围:SF 22~322 µg/L,SI 12.5~32.2 µmol/L,TIBC 45~82 µmol/L,EPO 4.3~29.0 U/L,Ret(28.7~75.0)×109/L

讨论

长期输血依赖的MDS患者会出现铁过载,而骨髓无效造血也会导致原发铁过载[6]。本研究结果显示,在对照组非输血依赖的MDS患者中,SF也较正常参考值偏高,可能与低危/中危-1 MDS患者骨髓无效造血有关。铁过载组患者SF明显增高,但SI未同比例升高,可能与铁从巨噬细胞向血浆释放障碍有关。高铁浓度引起铁调素水平升高,可减少铁从巨噬细胞向血浆释放。继发性血色病造成转铁蛋白合成不足,可导致TIBC降低。祛铁治疗后TIBC较前升高。

EPO与EPO受体结合后可使受体胞内区的Stat5酪氨酸发生磷酸化而被激活,活化的胞内p-Stat5蛋白引发下游信号转导通路,使红细胞进一步增殖分化成熟[7]。Stat5还作为祖红细胞表面Epo-R下游区抗凋亡信号子发挥抗凋亡作用,维持祖红细胞的生存[8]。铁过载组患者EPO浓度明显升高,Stat5 mRNA和p-Stat5的表达却较对照组明显减少,表明铁过载可能导致了EPO抵抗,抑制了EPO-Stat5信号通路的表达。体内循环EPO水平升高,可能是对信号通路缺陷的一个补偿效应。过量铁促使线粒体内的蓄积铁(FtMt)高表达,FtMt可通过减少p-Stat5促进细胞调亡,并将胞质内游离铁隔离至线粒体内干扰血红素合成[9]。FtMt高表达时产生的病理效应,可能是导致Stat5减少的原因。祛铁治疗后,Stat5 mRNA和p-Stat5表达升高,可能与体内活性氧减少,线粒体内FtMt降低,减少了对Stat5的抑制有关。

激活的T细胞介导的免疫损伤是低危/中危-1 MDS重要发病机制之一。MDS患者自身T淋巴细胞在体外可以抑制红系祖细胞增殖,从骨髓细胞中移除T细胞则可以增强集落的形成[10]。Treg细胞是抑制免疫反应的重要细胞。T细胞受体诱导CD25(IL-2受体α链)高表达,IL-2受体激活Stat5,Stat5与Foxp3启动子结合,诱导Foxp3表达。MDS早期Treg细胞不能有效归巢至骨髓去调节免疫反应[11],可能是导致T细胞过度活化介导免疫损伤的原因之一。铁过载组CD3+CD4+/CD3+细胞比例升高,表明T细胞免疫失衡加重。Foxp3 mRNA及CD3+CD4+CD25+Foxp3+/CD3+CD4+表达较对照组下降,祛铁后较前升高,表明铁过载可能影响Foxp3的表达。CD3+CD4+CD25+/CD3+CD4+比例降低,显示CD25表达受抑制。Foxp3低表达可能受Stat5降低的影响。Treg细胞低表达加重活化T细胞造成的免疫损伤。

综上所述,祛铁治疗可上调Stat5 mRNA和p-Stat5的表达,部分恢复EPO-Stat5通路对红系造血的作用,增强红系造血的功能;同时诱导CD3+CD4+ T细胞CD25和Foxp3表达,平衡免疫应答,减少T细胞介导的免疫损伤对红系造血的负面影响。

References

  • 1.宋 陆茜, 郑 晴晴, 肖 超, et al. 骨髓增生异常综合征患者铁代谢参数异常和铁过载状况的研究[J] 中华血液学杂志. 2016;37(10):903–907. doi: 10.3760/cma.j.issn.0253-2727.2016.10.018. [DOI] [Google Scholar]
  • 2.Guariglia R, Martorelli MC, Villani O, et al. Positive effects on hematopoiesis in patients with myelodysplastic syndrome receiving deferasirox as oral iron chelation therapy: a brief review[J] Leuk Res. 2011;35(5):566–570. doi: 10.1016/j.leukres.2010.11.027. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
  • 3.Burchill MA, Yang J, Vogtenhuber C, et al. IL-2 receptor beta-dependent STAT5 activation is required for the development of Foxp3+ regulatory T cells[J] J Immunol. 2007;178(1):280–290. doi: 10.4049/jimmunol.178.1.280. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
  • 4.中华医学会血液学分会. 骨髓增生异常综合征诊断与治疗中国专家共识(2014年版)[J] 中华血液学杂志. 2014;35(11):1042–1048. doi: 10.3760/cma.j.issn.0253-2727.2014.11.023. [DOI] [Google Scholar]
  • 5.中华医学会血液学分会, 中国医师协会血液科医师分会. 铁过载诊断与治疗的中国专家共识[J] 中华血液学杂志. 2011;32(8):572–574. doi: 10.3760/cma.j.issn.0253-2727.2011.08.021. [DOI] [Google Scholar]
  • 6.杨 英, 杨 波, 梁 志鹏. 铁代谢指标在骨髓增生异常综合征无效造血中的临床研究[J] 中国实验血液学杂志. 2013;21(4):948–952. doi: 10.7534/j.issn.1009-2137.2013.04.026. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
  • 7.Grebien F, Kerenyi MA, Kovacic B, et al. Stat5 activation enables erythropoiesis in the absence of EpoR and Jak2[J] Blood. 2008;111(9):4511–4522. doi: 10.1182/blood-2007-07-102848. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
  • 8.Rane SG, Reddy EP. JAKs, STATs and Src kinases in hematopoiesis[J] Oncogene. 2002;21(21):3334–3358. doi: 10.1038/sj.onc.1205398. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
  • 9.Santambrogio P, Erba BG, Campanella A, et al. Over-expression of mitochondrial ferritin affects the JAK2/STAT5 pathway in K562 cells and causes mitochondrial iron accumulation[J] Haematologica. 2011;96(10):1424–1432. doi: 10.3324/haematol.2011.042952. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
  • 10.Sloand EM, Mainwaring L, Fuhrer M, et al. Preferential suppression of trisomy 8 compared with normal hematopoietic cell growth by autologous lymphocytes in patients with trisomy 8 myelodysplastic syndrome[J] Blood. 2005;106(3):841–851. doi: 10.1182/blood-2004-05-2017. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
  • 11.Kotsianidis I, Bouchliou I, Nakou E, et al. Kinetics, function and bone marrow trafficking of CD4+CD25+FOXP3+ regulatory T cells in myelodysplastic syndromes (MDS)[J] Leukemia. 2009;23(3):510–518. doi: 10.1038/leu.2008.333. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]

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