表 1.
作者
Author |
发表年份
Publication year |
动物模型
Animal model |
样本量
n |
实验组处理
Experimental group treatment |
对照组处理
Control group treatment |
术后随访
时间 Follow-up time |
结果
Result |
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注:SIS:小肠黏膜下层;PHBV:聚羟基丁酸酯-羟基戊酸盐
Note: SIS: small-intestine submucosa; PHBV: poly (3-hydroxybutyrate-co-hydroxyvalerate) | ||||||||||
Lee 等[19] | 2011 | 裸鼠全层皮肤创伤模型 | ① 4/② 4/③ 4 | ① 胶原凝胶搭载 1×
106个人 ADSCs; ② 胶原凝胶搭载人真皮 Fb |
③ 单用胶原凝胶 | 28 d | 与对照组相比,实验组 ① 和 ② 表皮厚度均增加(仅基于 HE 染色) | |||
Yun 等[20] | 2012 | 猪背部全层皮肤创伤模型 | 2(每只猪背部左右各 18 个皮肤创伤模型) | 术后 50 d 皮下注射 1×106个人 ADSCs,共注射 3 次,每次间隔 10 d | 术后 50 d 皮下注射等量 PBS,共注射 3 次,每次间隔 10 d | 100 d | 局部注射 ADSCs 可以减小瘢痕面积,改善瘢痕颜色和柔韧性;ADSCs 通过增加基质金属蛋白酶分子表达,降低肥大细胞活性,抑制 TGF-β1对 Fb 的作用,促进瘢痕重塑 | |||
Castiglione
等[21] |
2013 | 大鼠纤维性海绵体炎(TGF-β1 诱导) | 9/9 | 局部注射含 1×
106个人 ADSCs 的 PBS |
局部注射等量 PBS | 5 周 | 实验组 Ⅲ 型胶原和弹性蛋白沉积减少,且勃起功能改善 | |||
Lam 等[22] | 2013 | 小鼠背部全层皮肤创伤模型 | ① 3/② 3/③ 3(小鼠背部双侧造模) | ① SIS 搭载 1×106个小鼠 ADSCs | ② 单独应用 SIS;③ 单独注射 1×106个 ADSCs | 14 d | 单独注射 ADSCs 不能存活;与单独应用 SIS 相比,SIS 搭载 ADSCs 可减少纤维化面积 | |||
Uysal 等[23] | 2014 | 大鼠背部全层皮肤创伤模型 | 20/20(每只大鼠背部造 4 个皮肤创伤模型) | 局部注射含 1×107个大鼠 ADSCs 的 PBS | 局部仅注射 PBS 或 PBS 注射后补片植皮 | 56 d | 与对照组相比,局部注射 ADSCs 使伤口愈合速度加快,表皮厚度增加,但瘢痕面积比 PBS 对照组大 | |||
Zhang 等[24] | 2015 | 兔耳全层皮肤创伤模型 | ① 4/② 4/③ 4(每只兔左右耳各 3 个创伤模型) | ① 右耳术后 14 d
局部注射 4×106 个兔 ADSCs |
② 右耳术后 14 d 局部注射等量 ADSCs-CM 或 ③ 不做处理。①②③ 组左耳均注射等量 DMEM 培养基 | 35 d | 局部注射 ADSCs 或 ADSCs-CM 可通过降低 α-SMA 和Ⅰ型胶原基因表达,改善胶原沉积,减少兔耳增生性瘢痕形成 | |||
Zonari 等[11] | 2015 | 大鼠背部全层皮肤创伤模型 | ① 4/② 4/③ 4(每只大鼠背部 2 个创伤模型) | ① PHBV 支架搭载 1×106 个大鼠 ADSCs | ② 单用 PHBV 支架③ 不处理 | 28 d | 实验组 α-SMA、TGF-β1 降低,TGF-β3 升高,能促进伤口愈合,减少瘢痕形成 | |||
Franck 等[25] | 2019 | 大鼠腹部全层皮肤烧伤模型 | 11/12(每只大鼠腹部 484 mm2方形烧伤面积) | 皮温降至 35℃ 时,每只大鼠烧伤部位注射 3.4×106个大鼠 ADSCs/4 mL PBS;伤后第 4 天,同法注射等量 ADSCs | 皮温降至 35℃ 时,每只大鼠烧伤部位注射 4 mL PBS;伤后第 4 天,同法注射等量 PBS | 14 d | 与对照组相比,局部注射 ADSCs 能降低受伤皮肤区域淋巴管数量,且烧伤区域皮肤愈合形成的瘢痕面积更小 |