约60%的急性髓系白血病(AML)存在克隆性染色体结构、数量异常,并发生与细胞分化、增殖有关的基因突变或表达异常。t(6;9)(p23;q34)是AML中不常见的一类染色体异常,在成人AML中占比为1%~5%,在儿童AML中占比为1%~2%,也有慢性髓性白血病及骨髓增生异常综合征(MDS)的个案报道[1]–[2]。DEK-NUP214融合基因由6号染色体上的DEK基因与9号染色体上的NUP214基因产生基因重排形成。DEK-NUP214融合基因阳性AML患者复发率高、预后差,因此世界卫生组织(WHO)分型将其定义为一种独特的临床类型。以往研究结果表明尽早实施异基因造血干细胞移植(allo-HSCT)能够克服DEK-NUP214对AML患者的不良影响[3]–[4]。本研究中,我们对近年来在我院接受allo-HSCT治疗的16例DEK-NUP214融合基因阳性AML患者进行回顾性分析。
病例与方法
一、病例
本研究纳入2017年7月至2022年10月苏州大学附属第一医院和苏州弘慈血液病医院接受allo-HSCT的16例DEK-NUP214融合基因阳性AML患者。中位发病年龄为38(23~58)岁,女7例、男9例,全部病例均符合WHO(2016)的AML诊断标准。
二、融合基因及基因突变检测
取骨髓标本3 ml,分离单个核细胞。按照TRIzol方法提取总RNA,反转录获得cDNA,多重巢式PCR技术进行急性白血病有关的29类融合基因(包括DEK-NUP 214)检测。抽提基因组DNA,建立包含DNMT3A、CEBPA、KIT、FLT3、NRAS等51个白血病关联的高频基因IonAmpliSeq文库,采用ABI Ion Torrent S5测序仪进行检验。
三、染色体核型分析
骨髓细胞历经24~48 h培养、制片、R显带,分析中期细胞20个,遵从《人类细胞遗传学国际命名体制(ISCN)(2016)》进行核型分析。
四、诱导及巩固治疗方案
诱导化疗方案选择IA(去甲氧柔红霉素+阿糖胞苷)、地西他滨+HAAG(高三尖杉酯碱+阿克拉霉素+阿糖胞苷+G-CSF)或HA(高三尖杉酯碱+阿糖胞苷)联合Bcl-2抑制剂(维奈克拉),部分病例存在FLT3基因突变,加用索拉非尼或富马酸吉瑞替尼靶向治疗。巩固方案包括原诱导方案或中剂量阿糖胞苷方案(2 g/m2,每12 h 1次×3 d)等。血象恢复后行骨髓穿刺评估疾病缓解情况,如获得完全缓解(CR)则给予巩固治疗,未获得CR的患者再行诱导化疗。
五、移植方案
全部病例均采用改良BUCY预处理方案。采用钙调磷酸酶抑制剂+短程甲氨蝶呤预防移植物抗宿主病(GVHD)。无关供者全相合、单倍体移植患者在此基础上联合霉酚酸酯(MMF)、兔抗人胸腺细胞球蛋白(rATG)。其他移植有关并发症的预防及治疗参见文献[5]。
六、随访
随访截至2023年1月15日,中位随访时间为22.8(3.2~66.9)个月,无失访病例。采用查阅门诊/住院病历和电话联系获得患者移植后生存资料。总生存(OS)时间设定为造血干细胞回输到随访截止或死亡的时间,无病生存(DFS)时间定义为移植后获得CR至疾病复发、随访截止或死亡的时间。
七、统计学处理
使用SPSS16.0软件进行统计学分析,使用Kaplan-Meier生存曲线分析DFS和OS。
结果
一、一般情况
16例DEK-NUP214融合基因阳性AML患者发病时血常规(中位数):WBC 12.5(0.8~99.0)×109/L,5例患者WBC >20×109/L,PLT 66(30~157)×109/L,多为轻、中度贫血,中位骨髓原始细胞比例为0.568(0.225~0.830)。按照FAB分型,急性单核细胞白血病(M5)1例,急性粒-单核细胞白血病(M4)2例,急性粒细胞白血病部分分化型(M2)13例。染色体核型R显带分析,正常核型4例,异常核型12例,其中10例检出t(6;9)(p23;q34)。16例患者多重巢式PCR检测DEK-NUP214融合基因均为阳性。全部患者均行二代测序检测51种白血病高频基因突变,突变比例最高的基因是FLT3(68.8%,11例),其中FLT3-ITD 10例,FLT3-TKD 1例;5例未检出FLT3基因突变,其中4例均检出N-RAS基因突变。详见表1。
表1. 16例DEK-NUP214融合基因阳性急性髓系白血病(AML)患者一般资料及诊断时疾病状态.
例号 | 性别 | 年龄(岁) | FAB分型 | 骨髓原始细胞(%) | 染色体核型 | 融合基因检测 |
1 | 女 | 24 | M2 | 33 | 46,XX,t(6:9)(p23:q34)[20] | DEK-NUP214、FLT3-ITD阳性 |
2 | 男 | 47 | M4 | 29.5 | 46,XY[12] | DEK-NUP214阳性 |
3 | 男 | 58 | M2 | 79 | 46,XY[20] | DEK-NUP214、FLT3-ITD阳性 |
4 | 女 | 36 | M2 | 23 | 46,XX,del(9)(q12q34)[10] | DEK-NUP214、NRAS、KRAS阳性 |
5 | 男 | 30 | M2 | 57.5 | 46,XY[20] | DEK-NUP214、FLT3-ITD阳性 |
6 | 女 | 48 | M5 | 77.5 | 46,XX,t(6:9)(p23:q34)[18] | DEK-NUP214、FLT3-ITD阳性 |
7 | 女 | 50 | M2 | 22.5 | 46,XX,t(6:9)(p23:q34)[6] | DEK-NUP214、FLT3-TKD、TP53阳性 |
8 | 男 | 46 | M2 | 56 | 46,XX,t(6:9)(p23:q34)[16] | DEK-NUP214、FLT3-ITD阳性 |
9 | 男 | 30 | M2 | 75 | 45,XY,t(6;9)(p23;q34),-17,der(18)t(17;18)(q11.2;q23)[20] | DEK-NUP214、FLT3-ITD阳性 |
10 | 男 | 26 | M2 | 78 | 48,XY,+8,+13,15p-[10] | DEK-NUP214、IDH2、NRAS阳性 |
11 | 男 | 23 | M4 | 36 | 46,XY[20] | DEK-NUP214、FLT3-ITD阳性 |
12 | 女 | 41 | M2 | 63.5 | 46,XX,t(6:9)(p23:q34)[16] | DEK-NUP214、FLT3-ITD、IDH2阳性 |
13 | 女 | 25 | M2 | 83 | 46,XX,t(6:9)(p23:q34)[15] | DEK-NUP214、FLT3-ITD阳性 |
14 | 男 | 41 | M2 | 75 | 45X,-Y,t(5;12)(q31;p13),t(6;9)(p23;q34)[20] | DEK-NUP214、IDH1、NRAS阳性 |
15 | 女 | 30 | M2 | 24.5 | 46,XX,t(6:9)(p23:q34)[20] | DEK-NUP214、FLT3-ITD、TET2阳性 |
16 | 男 | 42 | M2 | 35 | 46,XY,t(6;9)(p23;q34)[8]/47,idem,+13[4] | DEK-NUP214、WT1、NRAS阳性 |
注 M5:急性单核细胞白血病;M4:急性粒-单核细胞白血病;M2:急性粒细胞白血病部分分化型
二、移植前结果
16例DEK-NUP214融合基因阳性的AML患者中,1个疗程获CR 7例,≥2个疗程获CR 8例,总缓解率为93.7%(15/16),获得CR的15例患者接受1~4个疗程巩固化疗后均行allo-HSCT(单倍体移植5例,全相合同胞供者移植8例,全相合无关供者移植3例),诊断至移植的中位时间为5(3~7)个月。
三、移植特征
移植前疾病状态:CR 15例(7例患者DEK-NUP214融合基因未转阴),NR 1例。全部患者均获得造血重建,中位粒细胞植活时间为11(10~15)d,中位血小板植活时间为13(10~22)d。发生巨细胞病毒血症3例(1例出现巨细胞病毒肺炎),EB病毒血症3例(无淋巴细胞增殖性疾病发生),经积极治疗后病毒均转阴。移植后6例(37.5%)患者发生急性GVHD,其中Ⅰ、Ⅱ、Ⅲ、Ⅳ度分别为1例(16.7%)、2例(33.3%)、1例(16.7%)、2例(33.3%)。移植100 d后9例(56.2%)发生慢性GVHD,其中局限型 6例、广泛型 3例。8例经积极治疗后症状好转,病情稳定,1例广泛型慢性GVHD患者发生细菌、真菌、病毒混合肺部感染并死于呼吸衰竭。详见表2。
表2. 16例DEK-NUP214融合基因阳性急性髓系白血病(AML)患者移植特征及随访结果.
例号 | 供者类型 | 移植前疾病状态 | 移植前DEK-NUP214 | 干细胞来源 | GVHD预防 | CMV感染 | EBV感染 | aGVHD | cGVHD | 复发 | 转归 | DFS(月) | OS(月) |
1 | 单倍体 | CR | 阴性 | 骨髓+外周血+脐血 | CsA+MTX+MMF+rATG | 阴性 | 阴性 | 皮肤(Ⅳ度) | 局限型 | 否 | 存活 | 66.9 | 66.9 |
2 | 全相合同胞 | CR | 阴性 | 外周血 | CsA+MTX | 阴性 | 阴性 | 无 | 局限型 | 否 | 存活 | 63 | 63 |
3 | 单倍体 | CR | 阳性 | 骨髓+外周血+脐血 | CsA+MTX+MMF+rATG | 阴性 | 阳性 | 无 | 局限型 | 否 | 存活 | 59.3 | 59.3 |
4 | 全相合同胞 | CR | 阳性 | 外周血 | CsA+MTX | 阴性 | 阴性 | 皮肤、肠道(Ⅱ度) | 广泛型 | 否 | 存活 | 39.1 | 39.1 |
5 | 全相合同胞 | CR | 阳性 | 外周血 | CsA+MTX | 阴性 | 阴性 | 无 | 无 | 否 | 存活 | 35.5 | 35.5 |
6 | 全相合同胞 | CR | 阳性 | 外周血 | CsA+MTX | 阴性 | 阴性 | 无 | 无 | 否 | 存活 | 24.7 | 24.7 |
7 | 单倍体 | CR | 阴性 | 外周血+脐血 | CsA+MTX+MMF+rATG | 阴性 | 阳性 | 无 | 无 | 否 | 存活 | 20.8 | 20.8 |
8 | 全相合同胞 | NR | 阳性 | 外周血 | CsA+MTX | 阴性 | 阴性 | 无 | 无 | 是 | 死亡 | 6.3 | 13.1 |
9 | 全相合同胞 | CR | 阴性 | 外周血 | CsA+MTX | 阳性 | 阴性 | 皮肤、肠道(Ⅲ度) | 广泛型 | 否 | 存活 | 17.0 | 17.0 |
10 | 全相合无关 | CR | 阴性 | 外周血 | CsA+MTX+MMF+rATG | 阳性 | 阳性 | 肠道(Ⅱ度) | 无 | 否 | 存活 | 42.3 | 42.3 |
11 | 单倍体 | CR | 阴性 | 骨髓+外周血+脐血 | CsA+MTX+MMF+rATG | 阳性 | 阴性 | 皮肤、肠道(Ⅳ度) | 广泛型 | 否 | 死亡 | 5.9 | 5.9 |
12 | 单倍体 | CR | 阳性 | 骨髓+外周血+脐血 | CsA+MTX+MMF+rATG | 阴性 | 阴性 | 无 | 无 | 是 | 死亡 | 14.4 | 17.7 |
13 | 全相合同胞 | CR | 阴性 | 外周血 | CsA+MTX | 阴性 | 阴性 | 无 | 局限型 | 否 | 存活 | 36.6 | 36.7 |
14 | 全相合无关 | CR | 阳性 | 外周血 | CsA+MTX+MMF+rATG | 阴性 | 阴性 | 无 | 无 | 是 | 存活 | 3.5 | 3.7 |
15 | 全相合无关 | CR | 阴性 | 外周血 | CsA+MTX+MMF+rATG | 阴性 | 阴性 | 皮肤(Ⅰ度) | 局限型 | 否 | 存活 | 3.2 | 3.2 |
16 | 全相合同胞 | CR | 阴性 | 外周血 | CsA+MTX | 阴性 | 阴性 | 无 | 局限型 | 否 | 存活 | 4.6 | 4.6 |
注 CR:完全缓解;NR:未缓解;MTX:甲氨蝶呤;CsA:环孢素A;rATG:兔抗人胸腺细胞球蛋白;CMV:巨细胞病毒;EBV:EB病毒;aGVHD:急性移植物抗宿主病;cGVHD:慢性移植物抗宿主病;DFS:无病生存;OS:总生存
四、生存分析
3例(18.8%)患者移植后出现疾病复发,其中微小残留病复发1例(移植后105 d)、血液学复发2例(移植后321 d、479 d)。2例血液学复发患者分别在形态学复发前48 d、132 d出现DEK-NUP214融合基因转阳。1例患者通过减停免疫抑制剂、阿扎胞苷治疗,但DEK-NUP214融合基因表达进行性升高,后出现形态学复发,再诱导化疗失败,死于本病。另外1例发现DEK-NUP214融合基因转阳后未予特殊干预,1月余后复查骨髓示血液学复发,放弃治疗后死亡。1例微小残留病复发患者通过减停免疫抑制剂,IDH1抑制剂(艾伏尼布)联合阿扎胞苷治疗中,目前骨髓暂未复查,密切随访中。3例患者死亡,2例死因为疾病复发,1例广泛型慢性GVHD发生重症肺部细菌、真菌、病毒混合感染,后死于呼吸衰竭,死亡时间分别为移植后5.9、13.1、17.7个月。中位随访时间为22.8(3.2~66.9)个月,预期3年OS率为(76.2±6.6)%,3年DFS率为(76.9±6.8)%。
讨论
t(6;9)(p23;q34)是血液系统肿瘤中少见的随机染色体异常,由Rowley和Poter在1976年在1例AML患者中发现[6],后来1992年发现该染色体异位形成DEK-NUP214(DEK-CAN)融合蛋白。FAB分型中,DEK-NUP214融合蛋白与AML-M2和M4高度相关,我们这组病例中M2 13例(81.2%),M4 2例(12.5%),与既往文献报道一致。本组病例染色体R显带核型分析发现,正常核型4例,异常核型12例,其中10例患者检出t(6;9)(p23;q34)。染色体核型分析尽管能发现具体的易位染色体,但存在细胞增殖不良导致分析失败的可能,且不能检出隐匿性易位,但逆转录聚合酶链式反应(RT-PCR)法可检出DEK-NUP214融合基因。我们这组病例使用RT-PCR法均检出DEK-NUP214融合基因。因此,在临床工作中,联合应用这两种检测方法可以最大程度防止漏诊。
多项研究发现,DEK-NUP214融合基因阳性AML患者FLT3基因突变检出率高达70%以上,尤其是FLT3-ITD基因突变的检出率较其他AML患者高3倍[7]–[8]。本组病例中11例(66.7%)患者检出FLT3基因突变,其中10例为FLT3-ITD突变,与既往文献报道相似。我们还发现,5例未检出FLT3基因突变的患者中,4例检出N-RAS基因突变,可能提示N-RAS基因与FLT3基因的互排性,但需要更多的病例来验证。大量临床研究发现伴FLT3-ITD突变的AML患者预后差,FLT3抑制剂联合标准方案化疗可提高患者的缓解率[9]–[10],为后续allo-HSCT提供机会,且多项研究证实移植后FLT3抑制剂维持治疗可明显减少复发及死亡风险[11]。本研究中存在FLT3基因突变的部分病例加用FLT3抑制剂(索拉非尼或富马酸吉瑞替尼)靶向治疗,总缓解率达93.7%,治疗效果满意。
研究DEK-NUP214蛋白功能时发现,该融合蛋白只是对个别造血干细胞存在诱发白血病作用,还具有维持白血病细胞干性的功能[12]。DEK-NUP214阳性AML患者化疗效果差、复发率高可能与此有关。Sandahi等[13]研究发现,DEK-NU214阳性儿童AML患者第一次CR(CR1)时进行allo-HSCT 5年无事件生存率、OS率均为68%,而单纯化疗组为18%、54%。Garçon等[14]对5例DEK-NUP214阳性AML患者行allo-HSCT,4例中位随访时间达到18.5个月,均无病生存,预后良好。国内高梦鸽等[15]对15例DEK-NUP214阳性AML的患者进行回顾性分析,allo-HSCT OS率、DFS率分别为60.5%、61.5%,与该中心标准危险分层AML患者的总体OS率大致相当。本研究大部分DEK-NUP214融合基因阳性AML患者在CR1状态下行allo-HSCT,移植后3年OS率为(76.2±6.6)%,3年DFS率为(76.9±6.8)%,取得了不错的效果。分析其原因,我们这组病例较早减停免疫抑制剂,后期56.2%的病例出现慢性GVHD,带来持续的移植物抗白血病反应。对于未发生持续慢性GVHD患者采用去甲基化药物(地西他滨或阿扎胞苷)或者FLT3抑制剂维持治疗,对控制复发及延长生存起一定作用。3例死亡患者中2例死于本病复发,是影响总体预后的主要因素。我们发现2例血液学复发患者分别在形态学复发前48、132 d出现DEK-NUP214融合基因转阳,常规治疗未能控制病情,这提示我们需要进一步探索治疗方法。
总之,DEK-NUP214阳性AML是一类少见的白血病类型,尽早进行allo-HSCT可能有助于改善预后。本研究病例数较少,以上结论尚需开展多中心研究加以验证。
Funding Statement
基金项目:国家重点研发计划(2019YFC0840604)、江苏省重点研发计划(BE2019798)、江苏省科教强卫工程-临床医学中心(YXZXA2016002)
Footnotes
利益冲突 所有作者声明不存在利益冲突
作者贡献声明 夏晶:病例资料收集,数据分析,文章撰写;陈峰:设计研究、实施,数据分析,文章审阅;其他作者:参与研究
References
- 1.Shearer BM, Knudson RA, Flynn HC, et al. Development of a D-FISH method to detect DEK/CAN fusion resulting from t(6;9)(p23;q34) in patients with acute myelogenous leukemia[J] Leukemia. 2005;19(1):126–131. doi: 10.1038/sj.leu.2403557. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
- 2.赵 霄晨, 何 苗, 白 海. 伴DEK-CAN融合基因阳性急性髓系白血病二例并文献复习[J] 海南医学. 2018;29(23):3395–3397. doi: 10.3969/j.issn.l003-6350.2018.23.043. [DOI] [Google Scholar]
- 3.Ishiyama K, Takami A, Kanda Y, et al. Allogeneic hematopoietic stem cell transplantation for acute myeloid leukemia with t(6;9)(p23;q34) dramatically improves the patient prognosis: a matched-pair analysis[J] Leukemia. 2012;26(3):461–464. doi: 10.1038/leu.2011.229. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
- 4.Slovak ML, Gundacker H, Bloomfield CD, et al. A retrospective study of 69 patients with t(6;9)(p23;q34) AML emphasizes the need for a prospective, multicenter initiative for rare ‘poor prognosis’ myeloid malignancies[J] Leukemia. 2006;20(7):1295–1297. doi: 10.1038/sj.leu.2404233. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
- 5.夏 晶, 陈 苏宁, 陈 佳, et al. 单倍型造血干细胞移植治疗阵发性睡眠性血红蛋白尿症17例疗效和安全性研究[J] 中华血液学杂志. 2018;39(11):904–907. doi: 10.3760/cma.j.issn0253-2727.2018.11.006. [DOI] [Google Scholar]
- 6.Rowley JD, Poter D. Chromosomal banding patterns in acute nonlymphocytic leukemia[J] Blood. 1976;47(5):705. [PubMed] [Google Scholar]
- 7.Thiede C, Steudel C, Mohr B, et al. Analysis of FLT3-activating mutations in 979 patients with acute myelogenous leukemia: association with FAB subtypes and identification of subgroups with poor prognosis[J] Blood. 2002;99(12):4326–4335. doi: 10.1182/blood.v99.12.4326. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
- 8.Oyarzo MP, Lin P, Glassman A, et al. Acute myeloid leukemia with t(6;9)(p23;q34) is associated with dysplasia and a high frequency of flt3 gene mutations[J] Am J Clin Pathol. 2004;122(3):348–358. doi: 10.1309/5DGB-59KQ-A527-PD47. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
- 9.Röllig C, Serve H, Hüttmann A, et al. Addition of sorafenib versus placebo to standard therapy in patients aged 60 years or younger with newly diagnosed acute myeloid leukaemia (SORAML): a multicentre, phase2, randomised controlled trial[J] Lancet Oncol. 2015;16(16):1691–1699. doi: 10.1016/S1470-2045(15)00362-9. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
- 10.Larson RA, Mandrekar SJ, Huebner LJ, et al. Midostaurin reduces relapse in FLT3-mutant acute myeloid leukemia: the Alliance CALGB 10603/RATIFY trial[J] Leukemia. 2021;35(9):2539–2551. doi: 10.1038/s41375-021-01179-4. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
- 11.Xuan L, Wang Y, Huang F, et al. Sorafenib maintenance in patients with FLT3-ITD acute myeloid leukaemia undergoing allogeneic haematopoietic stem-cell transplantation: an open-label, multicentre, randomised phase 3 trial[J] Lancet Oncol. 2020;21(9):1201–1212. doi: 10.1016/S1470-2045(20)30455-1. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
- 12.Oancea C, Riister B, Henschler R, et al. The t(6; 9) associated DEK/CAN fusion protein targets a population of long - term repopulating hematopoietic stem cells for leukemogenic transformation[J] Leukemia. 2010;24(11):1910–1919. doi: 10.1038/leu.2010.180. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
- 13.Sandahi JD, Coenen EA, Forestier E, et al. t(6;9)(p22;q34)/DEK-NUP214-rearranged pediatric myeloid leukemia: an international study of 62 patients[J] Haematologica. 2014;99(5):865–872. doi: 10.3324/haematol.2013.098517. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
- 14.Garçon L, Libura M, Delabesse E, et al. DEK-CAN molecular monitoring of myeloid malignancies could aid therapeutic stratification[J] Leukemia. 2005;19(8):1338–1344. doi: 10.1038/sj.leu.2403835. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
- 15.高 梦鸽, 付 强, 秦 亚溱, et al. 急性髓系白血病患者异基因造血干细胞移植后监测DEK-NUP214融合基因的预后意义[J] 中华内科杂志. 2021;60(10):868–874. doi: 10.3760/cma.j.cn112138-20201015-00868. [DOI] [Google Scholar]