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. 2022 Jan 28;47(1):18–25. [Article in Chinese] doi: 10.11817/j.issn.1672-7347.2022.210320

全氟辛酸对SD大鼠肝脂质代谢紊乱及脂肪酸代谢相关蛋白表达的影响

Perfluorooctanoic acid-induced lipid metabolism disorder in SD rat liver and its effect on the expression of fatty acid metabolism-related proteins

王 力 1,2,2, 周 勇兵 1,2, 马 新壮 1,2, 孙 伟强 2,3, 刘 辉 2,3,
Editor: 傅 希文
PMCID: PMC10930491  PMID: 35545359

Abstract

目的

全氟辛酸(perfluorooctanoic acid,PFOA)能引起动物体脂代谢紊乱,影响脂肪酸的分解与合成,过氧化物酶体增殖剂激活受体(peroxisome proliferators-activated receptor,Ppar)在此过程中发挥极其重要的作用。本研究旨在探讨PFOA对Sprague Dawley (SD)大鼠肝脂质代谢紊乱及其相关蛋白表达的影响。

方法

将40只雄性SD大鼠随机分成对照组(注射双蒸水)、低剂量组[PFOA剂量为1.25 mg/(kg·d)]、中剂量组[PFOA剂量为5.00 mg/(kg·d)],高剂量组[PFOA剂量为20.00 mg/(kg·d)],每组10只。正常饮食,采用PFOA经口灌胃14 d,每日观察、称重、记录。经口灌胃后,采血、处死大鼠、迅速剥离其肝脏。取部分肝组织固定于4%多聚甲醛后进行糖原过碘酸希夫(periodic acid-schiff,PAS)染色;检测血清以及肝组织中HDLC、LDLC、TG、TC的含量及相关酶的活性;蛋白质印迹法检测环磷腺苷效应元件结合蛋白(cyclic adenosine monophosphate-response element binding protein,Cbp)、类氨基酸合成酵母同源物通用调控蛋白2(general control of amino acid synthesis 5-like 2,Gcn5L2)、Ppar γ、沉默信息调节因子1(silent information regulator 1,Sirt1)和人类视黄醇X受体α2(retinoid X receptor alpha 2,Rxrα2)的表达水平。

结果

PFOA暴露14 d后,与对照组相比,中、高剂量组的SD大鼠肝细胞的胞质及胞核内PAS染色阳性颗粒明显减少。与对照组相比,低、中剂量组血清中LDLC、TC含量显著降低(均P<0.05),高剂量组中LDLC、TC含量升高,但差异无统计学意义(均P>0.05),HDLC、TG差异均无统计学意义(均P>0.05);低、中、高剂量组血清中碱性磷酸酶(alkaline phosphatase,AKP)、谷丙转氨酶(alanine aminotransferase,ALT)的活性显著升高(均P<0.05);高剂量组中ALT/谷草转氨酶(aspartate aminotransferase,AST)比值显著升高(P<0.05);LDH、TG差异均无统计学意义(均P<0.05)。与对照组相比,高剂量组肝组织中的HDLC含量明显降低(P<0.05);低、中、高剂量组肝组织中的TC含量明显升高(均P<0.05),LDLC、TG差异均无统计学意义(均P<0.05);中、高剂量组肝组织中的AKP活性明显升高(均P<0.05),LDH、ALT、ALT/AST比值差异均无统计学意义(均P>0.05)。与对照组相比,高剂量组肝组织中Ppar γ、Cbp、Rxrα2的蛋白质表达水平均明显下调(均P<0.05);Sirt1的蛋白质表达则明显上调(均P<0.05)。

结论

PFOA暴露可导致SD大鼠肝脂质代谢紊乱以及糖原减少,这可能与PFOA激活Sirt1的表达、抑制Ppar γ的表达,从而影响脂肪酸正常代谢及促进糖酵解有关。

Keywords: 全氟辛酸, 脂肪酸氧化, 过氧化物酶体增殖剂激活受体, 沉默信息调节因子1


全氟辛酸(perfluorooctanoic acid,PFOA)是全氟烷基化合物(perfluoroalkyl substances,PFASs)中的代表之一,具有疏水、疏油的特性,被广泛应用于各类生产与生活领域。PFOA能导致动物体明显的肝损伤和脂代谢紊乱,促进脂质过氧化,导致DNA损伤等[1-3]。在PFOA导致的肝不良反应过程中,脂肪酸的分解与合成都受到很大的影响。其中,过氧化物酶体增殖剂激活受体α(peroxisome proliferators-activated receptor α,Ppar α)在不良反应中的作用研究较多,研究[4-6]表明PFOA的暴露可以激活Ppar α的表达,减轻细胞内活性氧簇(reactive oxygen species,ROS)的累积,Ppar α在PFOA导致的肝细胞氧化损伤以及胆固醇稳态等方面起一定的保护作用。而Ppar γ在脂肪酸代谢过程中的变化与影响却少有关注。Ppar γ是主要调节葡萄糖和脂质代谢的配体诱导型核受体,通过调节相关基因的表达,在糖代谢、脂代谢的过程中发挥重要作用,并与多种代谢性疾病(如糖尿病、肥胖、高血压等)以及癌症的发生、发展有关 [7-9]。因此,本实验以Sprague Dawley(SD)大鼠为模型动物进行PFOA暴露,研究PFOA对SD大鼠肝脂质代谢紊乱及其调控相关蛋白质表达的影响。

1. 材料与方法

1.1. 材料和仪器

PFOA(CAS号335-67-1)购自美国Sigma-Aldrich公司;生物化学指标检测试剂盒购自南京建成生物工程研究所;BCA蛋白定量试剂盒购自北京康为世纪生物科技有限公司;Ppar γ调控脂肪酸代谢相关蛋白抗体试剂盒购自美国Cell Signaling Technology公司;Scientz-48型高通量组织研磨破碎仪购自宁波新芝生物科技股份有限公司;Centrifuge 5810R型超低温离心机购自德国Eppendorf公司;Synergy 2型酶标仪购自美国Biotek公司;EPS 300型电泳仪和Tanon-5200型分子成像仪购自上海天能科技有限公司。

1.2. 方法

1.2.1. 动物分组及处理

成年SD雄性大鼠40只,初始体重为(256.75±19.04) g,购自南京市江宁区青龙山动物繁殖场[动物合格证号:SCXK(沪)2013-0006]。本研究已通过蚌埠医学院医学伦理委员会批准[审批号:伦动科批字[2018]第005号]。40只雄性SD大鼠被随机分成4组(每组10只):对照组经口灌胃双蒸水,体重为(257.90±19.11) g;低剂量组经口灌胃PFOA 1.25 mg/(kg·d),体重为(249.00±17.58) g;中剂量组经口灌胃PFOA 5.00 mg/(kg·d),体重为(253.40±16.89) g;高剂量组注射PFOA 20.00 mg/(kg·d),体重为(266.70±20.51) g。4组初始体重差异无统计学意义(F=1.657,P<0.05)。大鼠正常饮食,经口灌胃14 d,每日观察、称重、记录。经口灌胃后,采血,处死大鼠,迅速剥离其肝。用生理盐水冲洗后将部分肝组织固定于4%多聚甲醛,其余组织经液氮速冻后转入-80 ℃冰箱保存,供后续生物化学指标检测及蛋白质印迹法检测使用。

1.2.2. 糖原过碘酸希夫染色

取4%多聚甲醛固定后的肝组织,经梯度酒精脱水后,用常规方法行石蜡包埋、切片,切片厚度为5 μm。用常规方法脱蜡至水后,进行糖原过碘酸希夫(periodic acid-schiff,PAS)染色:蒸馏水冲洗后用过碘酸乙醇液氧化10 min,然后用70%乙醇冲洗,置Schiff氏乙醇液中在室温下染色10~15 min,以流水冲洗5 min后用苏木精染核3 min,再用自来水冲洗2~3 min,晾干,置显微镜下观察,拍照。

1.2.3. 生物化学指标检测

全程低温制备肝组织匀浆,按照试剂盒说明书检测血清及肝组织匀浆中高密度脂蛋白胆固醇(high density lipoprotein cholesterol,HDLC)、低密度脂蛋白胆固醇(low density lipoprotein cholesterol,LDLC)、总胆固醇(total cholesterol,TC)、三酰甘油(triglycerides,TG)的含量以及乳酸脱氢酶(lactate dehydrogenase,LDH)、碱性磷酸酶(alkaline phosphatase,AKP)、谷草转氨酶(aspartate aminotransferase,AST)、谷丙转氨酶(alanine aminotransferase,ALT)的活性。

1.2.4. 蛋白质印迹法

肝组织在低温环境下匀浆裂解后,以常规方法提取肝组织总蛋白,BCA蛋白定量试剂盒对总蛋白质进行定量。经电泳(上样体积5 μL,上样总蛋白质40 μg)、转膜、ECL发光检测摄片后,分析如下蛋白质表达情况:环磷腺苷效应元件结合蛋白质(cAMP-response element binding protein,Cbp)、类氨基酸合成酵母同源物通用调控蛋白质2(general control of amino acid synthesis 5-like 2,Gcn5L2)、Ppar γ、沉默信息调节因子1(silent information regulator 1,Sirt1)、人类视黄醇X受体α2(retinoid X receptor Alpha2,Rxrα2)和内参蛋白质[β微管蛋白(β-tubulin)]。蛋白质相对表达量为目的蛋白质灰度值与内参蛋白质灰度值的比值。

1.3. 统计学处理

采用SPSS 22. 0统计学软件对数据进行统计分析。资料数据经检验符合正态分布后,采用均数±标准差( x¯ ±s)表示,多组间比较采用方差分析后,再采用SNK-q检验进行组间均数的两两比较,以P<0.05为差异有统计学意义。

2. 结 果

2.1. PAS染色结果

大量PAS染色阳性结果(紫红色粗大颗粒)分布在对照组和低剂量组的SD大鼠肝细胞的胞质及胞核内,染色均匀,密度高。中、高剂量组的SD大鼠肝细胞的胞质及胞核内几乎见不到PAS染色阳性颗粒,糖原染色明显减少(图1)。

图1.

图1

PFOA暴露14 dSD大鼠肝糖原合成的影响(PAS染色)

Figure 1 Effect of PFOA exposure for 14 days on liver glycogen synthesis in SD rats (PAS staining)

2.2. PFOASD大鼠血清中HDLCLDLCTCTG含量及LDHAKPALTAST活性的影响

与对照组相比,低、中剂量组血清中LDLC、TC含量均显著降低(均P<0.05),高剂量组升高,但差异无统计学意义(P>0.05);TG含量有在低、中剂量组中减少及高剂量组升高的趋势,但与对照组相比,差异均无统计学意义(均P>0.05),HDLC差异亦无统计学意义(均P>0.05);与对照组比较,低、中、高剂量组血清中AKP、ALT的活性均显著升高(均P<0.05);高剂量组中ALT/AST比值显著升高(P<0.05);LDH、AST活性有在低、中、高剂量组升高的趋势,但差异均无统计学意义(均P>0.05,表1)。

表1.

PFOASD大鼠血清中各项生物化学指标的影响(n=6 x¯ ±s)

Table 1 Effect of PFOA on various biochemical indexes in the serum of SD rats (n=6, x¯ ±s)

组别 HDLC/(mmol·L-1) LDLC/(mmol·L-1) TC/(mmol·L-1) TG/(mmol·L-1)
对照组 0.98±0.13 0.29±0.04 1.49±0.11 0.74±0.23
低剂量组 0.74±0.11 0.11±0.03* 0.96±0.16* 0.57±0.16
中剂量组 0.75±0.15 0.15±0.05* 0.95±0.23* 0.47±0.10
高剂量组 1.07±0.29 0.40±0.20 1.69±0.48 0.72±0.10
F 4.627 9.062 10.407 3.862
P <0.05 <0.05 <0.05 <0.05
组别 LDH/(U·L-1) AKP/(U·L-1) ALT/(U·L-1) AST/(U·L-1) ALT/AST
对照组 732.67±247.77 158.17±14.33 28.43±4.06 98.98±19.03 0.29±0.07
低剂量组 1 124.17±526.01 200.67±13.17* 36.02±6.40* 123.43±15.51 0.29±0.04
中剂量组 1 230.67±345.51 198.67±9.67* 33.37±5.41* 124.45±5.48 0.26±0.05
高剂量组 861.33±275.82 195.00±12.89* 66.83±29.71* 124.18±31.59 0.53±0.18*
F 2.379 15.196 7.495 2.309 9.372
P >0.05 <0.05 <0.05 >0.05 <0.05

与对照组相比,*P<0.05。

2.3. PFOASD大鼠肝中HDLCLDLCTCTG含量及LDHAKPALTAST活性的影响

与对照组相比,低、中、高剂量组肝组织中的HDLC含量均有所减少,其中高剂量组的HDLC含量明显减少(均P<0.05);与对照组比较,低、中、高剂量组肝组织中的TC含量均明显增多(均P<0.05),LDLC、TG差异均无统计学意义(均P>0.05);中、高剂量组肝组织中的AKP活性均较对照组明显升高(均P<0.05);LDH活性有在低剂量组中升高、在中、高剂量组降低的趋势,但与对照组相比,差异均无统计学意义(均P>0.05);LDH、ALT、ALT/AST的比值与对照组比较差异均无统计学意义(均P>0.05,表2)。

表2.

PFOASD大鼠肝中各项生化指标的影响(n=6 x¯ ±s)

Table 2 Effect of PFOA on various biochemical indexes in the liver of SD rats (n=6, x¯ ±s)

组别 HDLC/(mmol·gProt-1) LDLC/(mmol·gProt-1) TC/(mmol·gProt-1) TG/(mmol·gProt-1)
对照组 21.78±8.28 0.83±0.64 0.20±0.08 0.18±0.04
低剂量组 8.52±3.20 0.76±0.24 0.57±0.14* 0.28±0.13
中剂量组 8.91±6.88 0.89±0.38 0.50±0.12* 0.23±0.11
高剂量组 7.60±4.74* 0.43±0.22 0.56±0.16* 0.15±0.04
F 7.337 1.502 11.157 2.382
P <0.05 >0.05 <0.05 >0.05
组别 LDH/(U·gProt-1) AKP/(U·gProt-1) ALT/(U·gProt-1) AST/(U·gProt-1)
对照组 9 193.40±457.78 9.17±2.72 5.09±2.41 10.69±3.24
低剂量组 11 178.18±599.37 15.74±5.40 5.93±1.70 12.87±1.56
中剂量组 8 133.37±766.95 33.38±13.04* 4.17±1.57 9.52±2.97
高剂量组 8 582.78±511.94 20.45±6.16* 2.95±1.34 15.99±8.65
F 5.084 10.284 3.013 2.007
P <0.05 <0.05 >0.05 >0.05

与对照组相比,*P<0.05。

2.4. PFOASD大鼠肝中Ppar γ及其调控脂代谢相关蛋白质表达水平的影响

与对照组相比,高剂量组肝组织中Ppar γ、Cbp、Rxrα2的蛋白质表达水平均明显下调(均P<0.05),Sirt1的蛋白质表达水平则明显上调(P<0.05);Rxrα2在低剂量组表达上调(P<0.05),Gcn5L2在中剂量组表达上调(P<0.05,图2)。

图2.

图2

PFOA暴露14 dSD大鼠肝组织中相关蛋白表达的影响

Figure 2 Effect of PFOA exposure for 14 days on the expression of related proteins in the liver tissues of SD rats

A: Electrophoretogram of the expression of related proteins; B: Histogram of the expression of related proteins. Cbp: cAMP-response element binding protein; Gcn5L2: General control of amino acid synthesis 5-like 2; Ppar γ: Peroxisome proliferation factor activated receptor γ; Sirt1: Silent information regulator 1; Rxrα2: Retinoid X receptor Alpha2. *P<0.05 vs the control group.

3. 讨 论

PFOA目前已成为一种持久性有机污染物,对生态系统已造成并持续造成不利影响,伴随着城市化与现代化的推进,它已对全球环境造成了威胁[10]。对此类有机污染的健康相关研究也从未停止,本实验主要关注PFOA对SD大鼠肝脂质代谢及其相关调控蛋白表达的影响。实验结果显示,PFOA暴露可导致SD大鼠肝糖原减少,相关脂代谢指标发生紊乱,这表明PFOA暴露干扰了SD大鼠的糖脂代谢过程。ALT、AST尤其是ALT/AST比值以及AKP水平都可用于判断肝是否受损,在本实验中,PFOA暴露后的SD大鼠肝存在损伤,而导致脂代谢紊乱发生的基础很有可能是肝组织的器质性损伤。

在本研究中,随着PFOA暴露浓度的增高,Sirt1的表达随之上调,与对照组相比,高浓度组中Sirt1上调具有统计学意义。Sirt1能编码尼克酰胺腺嘌呤二核苷酸依赖的蛋白脱乙酰酶,主要以转录因子为底物进而促进糖脂代谢,Sirt1的激活可以减轻高葡萄糖诱导的胰岛素抵抗,从而促进糖酵解[11-12]。因此,PFOA暴露激活Sirt1的表达可能促进了SD大鼠的糖酵解过程,进而导致肝中糖原大量减少。有研究[13]表明:Sirt1可以抑制白色脂肪中的Ppar γ的表达,白色脂肪中敲除或降低Sirt1的表达会导致肥胖和胰岛素抵抗。Ppar γ在糖脂代谢过程中有着很重要的意义,Ppar γ去乙酰化能调节肝细胞的糖异生通路,人类视黄醇X受体Rxr可以与Ppar γ形成异二聚体,可以增强胰岛素介导的糖摄取而进入胰岛素靶组织,促进糖原的合成和脂肪酸的正常合成与分解[14]。Gcn5L2是一种转录接头蛋白和组蛋白乙酰转移酶,Cbp是一种结合Ppar γ的转录共激活蛋白,也具有组蛋白乙酰转移酶活性,二者在调节线粒体蛋白的乙酰化、细胞生物能、ROS的产生以及细胞器在许多不同细胞类型中的定位等过程中发挥作用[15]。在本研究中,随着PFOA暴露浓度的增高,Ppar γ随之下调,与对照组相比,在中、高浓度组中下调具有统计学意义;Cbp蛋白表达趋势与Ppar γ一致,在PFOA中高剂量组中显著下调,而Rxrα2在高剂量组中也显著下调。而Ppar γ下调可能会导致小鼠肝细胞中的脂质累积[16]。因此,如图3所示:PFOA可能通过激活Sirt1,与核受体共抑制因子(nuclear receptor co-repressor,NCoR)对接而抑制Ppar γ的表达,导致大鼠肝组织产生胰岛素抵抗,从而抑制SD大鼠的糖异生作用,促进大鼠的能量消耗,尤其是以碳水化合物为主要来源的消耗[17-19],进而导致肝糖原减少以及脂质在肝中堆积。而Gcn5L2在低、中浓度组的肝中表达量上调,尤其是中浓度组中显著上调,这可能是对PFOA引起的Ppar γ、Cbp表达下调的一种代偿性反应,但是随着PFOA处理浓度的增高及毒性的增强,Gcn5L2表达也随之下调。可以认为,高浓度的PFOA造成了肝较为严重的糖脂代谢紊乱。

图3.

图3

Sirt1Ppar γ相互影响的简要示意图

Figure 3 Brief schematic diagram of the interaction between Sirt1 and Ppar γ

PFOA: Perfluorooctanoic acid; Sirt1: Silent information regulator 1; Ppar γ: Peroxisome proliferation factor activated receptor γ; NCoR: Nuclear receptor co-inhibitory factor; Cbp: cAMP-response element binding protein; Rxrα2: Retinoid X receptor alpha2.

综上,PFOA暴露可导致SD大鼠肝脂质代谢紊乱以及糖原减少,这可能与PFOA激活Sirt1的表达,进而抑制Ppar γ的表达而影响脂肪酸正常代谢及促进糖酵解有关。PFOA和Sirt1之间的具体关系及其相互作用的机制尚不清楚,在后续实验中,将重点关注PFOA与Sirt1之间相互作用的关系。可采用纯化大鼠Sirt1蛋白质,通过分子对接技术、圆二色光谱和等温滴定量热法等方法评估其与PFOA结合的作用关系及特点。

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利益冲突声明

作者声称无任何利益冲突。

作者贡献

王力,刘辉 论文构想、撰写和修改。王力,周勇兵,马新壮,孙伟强 数据采集、统计分析。周勇兵 论文修改。

原文网址

http://xbyxb.csu.edu.cn/xbwk/fileup/PDF/20220118.pdf

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