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. 2024 Aug 21;121(8):e20230707. [Article in Portuguese] doi: 10.36660/abc.20230707
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Treinamento Físico Reduz a Inflamação e a Fibrose e Preserva a Função e a Perfusão Miocárdica em um Modelo de Cardiomiopatia Chagásica Crônica

Thayrine R Damasceno 1, Denise M Tanaka 2, Enrico F Magnani 1, Rafael D B Oliveira 1, Danielle A G Pereira 1, Ildernandes Vieira-Alves 1, Virginia S Lemos 1, Jorge M Cabeza 3, Camila G Fabricio 2, Alessandra A Resende 2, Dawit A P Gonçalves 1, Gustavo de Oliveira Zanetti 1, Eduardo E Vieira de Carvalho 4, Marcus V Simões 2, Luciano F L Oliveira 1,4
PMCID: PMC11495816  PMID: 39258653

Resumo

Fundamento

A Cardiomiopatia Chagásica Crônica (CCC) é causada por um processo inflamatório induzido pelo Trypanosoma cruzi, que leva à miocardite com fibrose reativa e reparativa. A CCC progride com alterações de perfusão miocárdica e eventos histopatológicos que afetam a Aptidão Cardiorrespiratória (ACR).

Objetivos

Avaliamos os efeitos do Treinamento Físico Aeróbico (TFA) na perfusão miocárdica e nos comprometimentos morfológicos e funcionais relacionados à inflamação e fibrose em hamsters sírios com CCC. Como objetivo secundário, analisamos as áreas de secção transversa do músculo esquelético.

Métodos

Hamsters com CCC e seus respectivos controles foram divididos em quatro grupos: CCC sedentário, CCC-TFA, controle sedentário e controle TFA. Sete meses após a infecção, os animais foram submetidos à ecocardiografia, à cintilografia de perfusão miocárdica e ao teste de esforço cardiopulmonar. TFA de intensidade moderada foi realizado durante cinquenta minutos, cinco vezes por semana, por oito semanas. Posteriormente, os animais foram reavaliados. A análise histopatológica foi realizada após os procedimentos acima mencionados. O nível de significância foi estabelecido em 5% em todas as análises (p<0,05).

Resultados

Animais com CCC sedentários apresentaram piores Defeitos de Perfusão Miocárdica (DPM) ao longo do tempo, Fração de Ejeção do Ventrículo Esquerdo (FEVE) reduzida, e apresentaram mais inflamação e fibrose quando comparados aos demais grupos (análise ANOVA mista). Por outro lado, o TFA foi capaz de mitigar a progressão do DPM, atenuar a inflamação e a fibrose e melhorar a eficiência da ACR em animais CCC-TFA.

Conclusão

Nosso estudo demonstrou que o TFA melhorou a disfunção cardíaca, DPM e reduziu a inflamação e a fibrose em modelos de hamster com CCC. Além disso, os animais CCC-SED apresentaram atrofia do músculo esquelético, enquanto os animais CCC-TFA apresentaram a AST do músculo esquelético preservada. Compreender os efeitos da TFA nas dimensões fisiopatológicas da CCC é crucial para futuras pesquisas e intervenções terapêuticas.

Palavras-chave: Cardiomiopatia Chagásica, Miocardite, Aptidão Cardiorrespiratória, Exercício Aeróbico, Imagem de Perfusão do Miocárdio


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Introdução

A doença de Chagas é uma doença tropical negligenciada que gera, anualmente, 627,46 milhões de dólares em gastos com saúde,1 e afeta de seis a oito milhões de pessoas em todo o mundo.2 A doença é causada pelo protozoário Trypanosoma cruzi (T. cruzi), e a maioria dos indivíduos infectados permanecem assintomáticos ao longo de suas vidas (forma indeterminada). No entanto, cerca de 40% evoluem para as formas clínicas (cardíaca ou digestiva) 10 a 30 anos após a infecção aguda inicial.3 A Cardiomiopatia Chagásica Crônica (CCC) é a cardiomiopatia não-isquêmica mais grave e progressiva na América Latina.4 A CCC manifesta-se com distúrbios eletrocardiográficos, alterações na motilidade e perfusão da parede, eventos tromboembólicos, e insuficiência cardíaca, o que pode levar à morte súbita.5

Os principais mecanismos patogênicos da CCC estão relacionados à persistência do parasita com lesão miocárdica mediada pelo sistema imune, distúrbios microvasculares e disautonomia cardíaca.6 Na fase crônica, a elevada carga de parasitemia observada na fase aguda é reduzida pela resposta imune para uma infecção mais leve, mas persistente.7 Esse processo inflamatório de baixa intensidade, leva à miocardite multifocal com infiltrados mononucleares, lesões miocitolíticas, necrose, desarranjo microvascular, hipertrofia de cardiomiócitos, áreas aumentadas de fibrose intersticial e perivascular e remodelamento cardíaco.1,810

Miocardite e fibrose reparativa são achados característicos da CCC.6 O infiltrado inflamatório no miocárdio é principalmente composto por células T e macrófagos.11 Além disso, há uma expressão aumentada das citocinas inflamatórias – Interferon-gama (INF-γ), Fator de Necrose Tumoral-alfa (TNF-α), Interleucina-6 (IL-6),12,13 e quimiocinas.11,14 A persistência do T. cruzi, levando à produção contínua de INF-γ e TNF-α, estimula o estresse oxidativo e nitrosativo que causa danos às mitocôndrias de cardiomiócitos e disfunção mitocondrial, e compromete vias de produção de energia.15,16 Além dessas alterações que estão associadas a um prognóstico ruim da doença, a disfunção microvascular coronariana e os distúrbios de perfusão miocárdica subsequentes podem ser os marcadores iniciais de progressão da doença.17,18 Esses distúrbios também estão relacionados à necrose miocitolítica e ao desenvolvimento de lesões cicatriciais associados a áreas de fibrose transmural regional.19

Além do dano miocárdico, a infecção crônica por T. cruzi também pode afetar o músculo esquelético. As principais alterações incluem inflamação do músculo esquelético, exsudato mononuclear,20 necrose das células fibrosas,21 desorganização e atrofia das fibras musculares,20 vasculite e fibrose,22 danos capilares com espessamento e reduplicação da membrana basal, diminuição da Área de Secção Transversa (AST) do músculo esquelético,23 e denervação muscular.24 Indivíduos com CCC também podem apresentar obstrução nos capilares e uma atividade mais glicolítica e menos oxidativa no músculo esquelético.25 Em conjunto, tais alterações podem afetar a extração de oxigênio, reduzir a oferta de oxigênio e causar prejuízo funcional.25

Um dos principais fatores associados à morbidade e mortalidade na CCC é a progressão da doença26 que afeta a Aptidão Cardiorrespiratória (ACR)27 e a qualidade de vida.28 Atualmente, o tratamento da CCC baseia-se principalmente no controle de sintomas da doença.1,5,29 Contudo, apesar da escassez de ensaios controlados randomizados,30 alguns estudos já observaram benefícios do treinamento físico nesses indivíduos, com melhoras importantes na ACR.3134 A Diretriz mais recente sobre CCC1 afirma que a atividade física melhora muitos parâmetros clínicos, mas os benefícios para essa população ainda não foram completamente abordados. Assim, esta abordagem tem recomendação de grau "condicional" e um nível de evidência "B".1

Melhoras no VO2 pico foram observadas após o treinamento físico em indivíduos com CCC.30,31 Outros benefícios incluem melhora na fração de ejeção do ventrículo esquerdo (FEVE), força muscular respiratória,33 função microvascular cutânea,35 e qualidade de vida.30 Nos estudos experimentais, o treinamento físico antes e após infecção experimental por T. cruzi modulou a reação inflamatória e melhorou a resistência contra o T. cruzi,36 induziu redução na atividade sérica da creatina quinase e da creatina quinase forma MB37 e reduziu fibrose cardíaca.38 Na CCC, somente um estudo demonstrou que o exercício aeróbico de baixa intensidade melhora parâmetros morfológicos e morfométricos dos ventrículos direito e esquerdo.39

Nos estudos experimentais sobre CCC, vários modelos animais foram utilizados.8,9,4043 Entre eles, o modelo murino com hamster sírio é o modelo que desenvolve CCC que lembra infecção humana com a história natural típica, e alterações histológicas, estruturais e funcionais da doença com uma linha do tempo mais adequada para estudos científicos.10,43,44 Apesar dessas evidências, nenhuma dessas investigações focaram nos efeitos do exercício aeróbico na perfusão miocárdica, nas alterações histopatológicas (inflamação e fibrose) e no músculo esquelético em hamsters sírios com CCC. Considerando as adaptações cardiovasculares,4547 acreditamos que o exercício aeróbico pode levar a melhorias nos principais mecanismos patogenéticos envolvidos na progressão da doença: Defeitos de Perfusão Miocárdica (DPM) e inflamação. Portanto, este estudo teve como objetivo avaliar o impacto do Treinamento Físico Aeróbico (TFA) nas alterações morfológicas, funcionais e de perfusão do miocárdio, correlacionando essas variáveis com inflamação e fibrose cardíacas em hamsters sírios com CCC usando exames de imagem de alta resolução in vivo. Além disso, nosso objetivo secundário foi analisar as AST do músculo esquelético deste modelo experimental.

Métodos

Delineamento do estudo

Neste estudo experimental, hamsters sírios fêmeas (Mesocricetus auratus), com idade de 12 semanas, obtidos do Anilab (Animais de Laboratório Criação e Comercio Ltda, Paulínia/SP, Brasil) foram mantidos em uma sala com temperatura controlada com livre acesso à água e alimentação padrão, e submetidos a um ciclo claro-escuro de 12 horas. Os animais foram mantidos em uma gaiola seguindo-se as recomendações do CONCEA (Conselho Nacional de Controle de Experimentação Animal), com uma área por animal > 122,5 cm2 e enriquecimento ambiental apropriado para a espécie. Todos os procedimentos foram conduzidos durante a fase clara do ciclo claro-escuro.

Os animais foram aleatoriamente alocados usando uma ferramenta de randomização (www.random.org Random.org, Dublin, Irlanda). Inicialmente, os animais (n=60) foram alocados em grupos infectados e não infectados. Após a fase aguda da infecção, os animais sobreviventes [infectados (n=37), não infectados (n=16)] foram separados em quatro grupos experimentais [TFA e sedentários: CCC-TFA (n=22), CCC-SED (n=22); e dois grupos controles também separados em TFA e sedentários: CT-TFA (n=8) e CT-SED (n=8)]. Os procedimentos foram conduzidos por um pesquisador, cego quanto aos grupos e que desconhecia os tratamentos.

Os animais foram infectados por via intraperitoneal com 3,5x104 da forma tripomastigota da cepa Y de T. cruzi, enquanto o grupo controle foi inoculado com solução salina (0,4 mL). Sete meses após a infecção (Figura 1), os animais foram submetidos à ecocardiografia bidimensional (ECO-2D), tomografia computadorizada por emissão de fóton único (SPECT) com 99mTc-Sestamibi (RPHKARDIA, Porto Alegre, Brasil) e Teste de Esforço Cardiopulmonar (TECP). As avaliações das imagens duraram uma semana, com um intervalo de dois a três dias entre os testes. O TECP durou cinco dias a mais para climatização e realização dos testes. O treinamento físico foi iniciado dois dias depois do TECP. Oito semanas após o período de intervenção (TFA), os animais foram submetidos às mesmas avaliações (TECP, ECO-2D e SPECT), em seguida à eutanásia [cetamina (Vetbrands, Jacareí, São Paulo, Brasil) e xilazina (Bayer, São Paulo, Brasil), 160 mg/Kg e 10 mg/Kg, respectivamente], seguida de coleta de amostras de sangue para confirmar a doença de Chagas crônica.48 A infecção crônica por T. cruzi foi confirmada pela técnica de Western blotting para detectar anticorpos anti-T.cruzi no soro de animais infectados conforme descrito anteriormente.48,49 Amostras do tecido cardíaco e do músculo esquelético foram coletados para análise histopatológica.

Figura 1. Linha do tempo do estudo. Após infecção experimental com cepa Y de T. cruzi e sete meses de acompanhamento para o desenvolvimento da doença, os animais sobreviventes e o grupo controle foram submetidos à ecocardiografia bidimensional (ECO-2D), tomografia computadorizada por emissão de fóton único (SPECT) com 99mTc-Sestamibi e Teste de Esforço Cardiopulmonar (TECP). Em seguida, os animais foram alocados em quatro grupos [CT-SED (n=6), CCC-SED (n=16), CT-TFA (n=8), CCC-TFA (n=12)]. Subsequentemente, os grupos TFA foram submetidos a oito semanas de Treinamento Físico Aeróbico (TFA) e reavaliados. Por fim, os animais foram eutanasiados, e o coração e o músculo esquelético foram coletados para análise histopatológica. A figura foi criada por meio do BioRender.com.

Figura 1

O estudo foi realizado seguindo-se as recomendações do CONCEA após aprovação do Comitê de Ética no Uso de Animais – CEUA (N°229/2019) de nossa instituição.

Ecocardiografia bidimensional

O ecocardiograma com Doppler foi realizado usando um sistema de ecocardiografia bidimensional de alta resolução (ECO-2D) para pequenos animais Vevo® 2100 (Visual Sonics Inc., Toronto, Canada) com um transdutor linear com frequência de 30 MHz. Após sedação com cetamina e xilazina (80 mg/Kg e 5 mg/Kg, respectivamente), os pelos dos animais foram raspados e os animais colocados em decúbito lateral. Foram obtidas imagens da janela paraesternal (eixo curto e longo) do Ventrículo Esquerdo (VE). Imagens bidimensionais foram usadas para avaliar FEVE, volume diastólico final do VE e volume sistólico final do VE no corte paraesternal eixo longo como descrito anteriormente.50

Imagem de perfusão miocárdica

Para avaliar a perfusão miocárdica em repouso, foram adquiridas imagens por SPECT com 99mTc-Sestamibi, usando uma gamma camera (BrightView XCT; Philips Medical Systems Inc., Cleveland, OH) adaptada com um sistema de aquisição de imagens e um colimador tipo "pinhole" de abertura de 1,5mm posicionado paralelamente a um suporte rotacional para o animal, conforme descrito anteriormente.48,51

Em resumo, sob anestesia com isoflurano52 (Isoforine, São Paulo, Brasil), os animais receberam 555 MBq de MIBI pela veia sublingual e acordaram. Noventa minutos depois, os hamsters foram anestesiados novamente com uma combinação de cetamina (80mg/Kg) e xilazina (5mg/kg), e imagens SPECT foram adquiridas. As imagens, coletadas com os animais em pé, foram reconstruídas usando um algoritmo tridimensional de subconjuntos ordenados e maximização da expectativa (3D-OSEM, quatro subconjuntos e 10 interações). O acúmulo de radiotraçador no miocárdio foi analisado de maneira semiquantitativa utilizando mapas polares gerados pelo software MunichHeart® (MunichHeart software, Technical University Munich, Munique, Alemanha). Os DPM foram considerados significativos se superiores a 5% do VE.48

Teste de esforço cardiopulmonar

Antes do TECP, os animais foram familiarizados com a esteira por cinco dias consecutivos, com incremento de velocidade e inclinação fixa (5°).53 Para a avaliação da capacidade cardiorrespiratória dos animais, o consumo de oxigênio (VO2) e a produção de dióxido de carbono (VCO2) foram continuamente medidos por calorimetria indireta de fluxo aberto (Panlab, Harvard Apparatus, Espanha). O VO2 foi expresso em unidades ajustadas para o tamanho do animal (mL.kg-0.75.min-1) e o pico de VO2 foi definido como o valor mais alto de VO2 medido durante o teste antes da exaustão. O VO2 no limiar anaeróbico (VO2LA) foi definido como o consumo de oxigênio no qual uma relação linear entre VCO2 e VO2 foi perdida durante exercício progressivo na esteira, associado a um aumento abrupto na razão de troca respiratória.

O protocolo de estresse foi descrito anteriormente.54 Em resumo, o protocolo consiste em aumentar a velocidade e a inclinação da esteira em cada estágio. Os primeiros três estágios tiveram duração de dois minutos com um aumento de cinco graus em cada estágio. Do estágio quatro em seguida, a duração foi de um minuto, e a inclinação mantida em 15 graus. A velocidade iniciou-se em 15 cm/s e aumentada 5 cm/s até o estágio seis. A partir daí, a velocidade aumentou 1,67 cm/s em cada estágio até a exaustão do animal. Os critérios para interrupção do teste foram o animal permanecer por cinco segundos ou mais sobre a grade de estimulação elétrica ou permanecer por 10 segundos sobre a extremidade final da esteira.53,54

Treinamento físico aeróbico

Após a avaliação basal (ECO-2D, SPECT e TECP), os animais foram submetidos ao TFA em uma esteira (Gaustec Magnetismo, Nova Lima, Minas Gerais, Brasil), seguindo um protocolo de oito semanas adaptado de um estudo anterior.53 O TFA foi realizado cinco vezes por semana durante 50 minutos em intensidade moderada (50% da velocidade pico definida pelo TECP e inclinação de 5%) no mesmo período do dia. O tempo, a velocidade e o grau foram aumentados progressivamente nas duas primeiras semanas até se atingir a intensidade prescrita. Para assegurar uma manipulação e uma exposição ao TFA similares aos animais, os animais sedentários foram submetidos a dois minutos de corrida na esteira cinco dias por semana, com a mesma velocidade de corrida que os animais submetidos ao TFA. Após o período de treinamento, os métodos de avaliação foram repetidos e os animais submetidos à eutanásia para coleta de tecidos e análise histopatológica.

Análise histopatológica

Para a análise histopatológica, secções transversais (5 μm espessura) foram obtidas de três regiões do coração (basal, médio-ventricular e apical), mantendo a orientação para a correlação com imagens in vivo como descrito anteriormente.10 Após progressiva desidratação, o tecido foi fixado em parafina e amostras de cada seção ventricular coradas com hematoxilina-eosina e picrosirius vermelho para quantificar inflamação e fibrose, respectivamente. Em seguida, imagens digitais microscópicas (lentes objetivas 40x) do endocárdio, miocárdio e epicárdio de cada segmento de VE foram obtidas usando o microscópio BX51 Olympus (Olympus; Tóquio, Japão), equipado com uma câmera Q-color 5 (Olympus America, Center Valley, Inc., EUA). Para os cortes corados com picrosirius vermelho, também foram tiradas fotos por microscopia de luz polarizada para quantificar colágeno tipo I e tipo III, identificando as fibras vermelho-amarelas e verdes, respectivamente. Em seguida, as fotos foram analisadas usando os programas Aperio ImageScope (versão 12.4.6, Leica Biosystems Imaging, Inc., EUA) e Image Pro Plus 32 (versão 4.5.0.29; Media Cybernetics, Inc., Maryland, EUA).

A inflamação foi quantificada contando-se o número de células mononucleadas por campo (células/mm2). A coloração com picrosirius vermelho definiu fibrose intersticial como porcentagem (%) da área total com cuidado para excluir fibrose perivascular. Para analisar as alterações histopatológicas, o VE foi dividido em 16 segmentos: basal (anterior, ânterosseptal, ínferosseptal, inferior, ínfero-lateral, ântero-lateral), médio-ventricular (anterior, ânterosseptal, ínferosseptal, inferior, ínfero-lateral, ântero-lateral) e apical (anterior, septal, inferior, lateral).

Cortes transversais do músculo esquelético (5 μm) da porção medial foram fixadas em parafina e, em seguida, coradas com hematoxilina-eosina para quantificar a AST. Imagens histológicas da porção medial do músculo (escala=100μm, 20x) foram analisadas usando os programas Aperio ImageScope (versão 12.4.6, Leica Biosystems Imaging, Inc., EUA) e ImageJ Fiji (versão JAVA 1.8.0_322., National Institutes of Health, Bethesda, Maryland, EUA). Para a análise da AST, cerca de 200 fibras musculares foram medidas por amostra. Além disso, usamos somente um número representativo de animais [CT-SED (n=4), (C) CCC-SED (n=6), (D) CT-TFA (n=4) e (E) CCC-TFA (n=5)] de cada grupo experimental.

Cálculo do tamanho amostral

O tamanho da amostra foi calculado usando o programa online OpenEpi (Open Source Epidemiologic Statistics for Public Health, version 3.1, Atlanta, GA, EUA), e os critérios usados para definir o tamanho amostral foram baseados em estudos prévios.10,55 Assumiu-se uma redução de 10% no defeito de perfusão entre os grupos infectados ao final do tratamento, com um alfa bicaudal de 0,05, 1-β= 0.8. O tamanho amostral estimado para este estudo foi 13 animais em cada grupo infectado e oito animais nos grupos controles. No entanto, considerou-se uma perda de 40% dada a agressividade da parasitemia nos grupos de animais infectados. Também consideramos que somente 30-50% dos animais infectados cronicamente desenvolvem cardiomiopatia chagásica.12 Assim, o número total de animais usados neste estudo foi 16 animais controles (CT-SED = 8 animais; CT-TFA = 8 animais) e 44 animais infectados (CCC sedentários = 22 animais; CCC-TFA = 22 animais), totalizando 60 animais.

Análise estatística

As variáveis contínuas foram descritas como média ± desvio padrão, e as variáveis categóricas em frequência absoluta (n) e relativa (%). O teste de Kolmogorov-Smirnov foi usado para verificar distribuição gaussiana das variáveis. Análise de variância one-way foi usada para comparação simultânea dos quatro grupos experimentais no basal e para análise histopatológica da inflamação e fibrose. A análise de variância mista (mixed ANOVA ou ANOVA fatorial split-plot) para medidas repetidas foi usada para verificar a interação (efeito principal) entre os grupos experimentais (efeito entre indivíduos) e o tempo (efeito intraindivíduo) para o efeito do TFA sobre as variáveis da ECO-2D, do SPECT e do TECP. Em caso de interações estatisticamente significativas, múltiplas comparações post hoc de Bonferroni foram realizadas.

A análise estatística e os gráficos foram elaborados usando o programa GraphPad Prism (versão 9.0.0; GraphPad Software, San Diego, Califórnia, EUA). O nível de significância foi de 5% em todas as análises (p<0.05).

Resultados

Na fase aguda da infecção (até 35 dias após a infecção), observou-se uma taxa de mortalidade de 16% (n=7). Trinta e sete animais infectados e 16 controles foram submetidos a avaliações basais (sete meses após a infecção). Durante as avaliações basais, três animais infectados morreram devido a anestesia. Seis animais infectados (CCC-SED, n= 4 e CCC-TFA, n= 2) e dois controles morreram durante o período de intervenção. Nenhum animal morreu durante o TFA.

TFA reduz remodelamento, e disfunção sistólica e de perfusão do VE

Os resultados do ECO-2D e do SPECT de perfusão do miocárdio no basal e após as avaliações após o TFA estão apresentados na Tabela 1. Em relação à FEVE, observou-se uma interação significativa entre o tempo e os grupos experimentais. A FEVE mostrou uma importante redução somente no grupo CCC-SED. O grupo CCC-TFA foi o único que apresentou dilatação diastólica do VE ao longo do tempo. No entanto, o grupo não apresentou aumento na massa ou no diâmetro sistólico do VE. Em relação aos DPM, o grupo CCC-SED apresentou piora dos defeitos ao longo do tempo.

Tabela 1. Dados de ecocardiografia e de tomografia computadorizada por emissão de fóton único (SPECT) dos grupos experimentais antes e após o treinamento físico aeróbico.

Variáveis CT-SED
(n=6)
CCC-SED
(n=16)
CT-TFA
(n=8)
CCC-TFA
(n=12)
Valor p
FEVE (%)
Antes 52,93 ± 1,49 45,49 ± 8,84 49,86 ± 2,93 43,74 ± 9,92
Após 52,47 ± 3,59† 39,69 ± 7,80* 47,28 ± 5,67† 42,46 ± 4,47 0,007
DDVE (mm)
Antes 7,71 ± 0,51 7,57 ± 0,70 7,73 ± 0,34 7,71 ± 0,43
Após 7,96 ± 0,56 7,99 ± 1,00 8,22 ± 0,50 8,34 ± 0,60* 0,030
DSVE (mm)
Antes 5,68 ± 0,43 5,68 ± 0,94 5,99 ± 0,40 6,13 ± 0,54
Após 6,08 ± 0,53 6,06 ± 1,01 6,47 ± 0,81 6,80 ± 0,74 0,050
Massa do VE (mg)
Antes 519,19 ± 89,55 549,85 ± 96,73 532,02 ± 98,15 541,89 ± 84,71
Após 667,78 ± 125,04* 686,99 ± 152,06* 735,47 ± 170,16* 622,15 ± 129,83 0,014
DPM (%)
Antes 2,45 ± 1,69 4,64 ± 3,45 3,08 ± 2,56 4,81 ± 3,52
Após 3,31 ± 2,44† 8,29 ± 7,06* 2,56 ± 3,43 6,30 ± 3,38 0,010

Dados em média e desvio padrão; TFA: treinamento físico aeróbico, CCC: cardiomiopatia chagásica crônica, CT: controle, SED: sedentário, FEVE: fração de ejeção do ventrículo esquerdo; DDVE: diâmetro diastólico do ventrículo esquerdo, DSVE: diâmetro sistólico do ventrículo esquerdo, VE: ventrículo esquerdo, DPM: defeito de perfusão do miocárdio; ANOVA mista para medidas repetidas;

Os animais que apresentavam DPM importantes (>5% do VE) foram detectados nos dois grupos de animais no basal, com cinco animais (36%) no grupo sedentário e três (25%) no grupo exercício. Após o seguimento, observamos um aumento no tamanho (p<0,05) e no número de animais (n=10, 67%) com DPM no grupo CCC-SED, enquanto no grupo submetido ao TFA observamos um menor aumento no tamanho (p>0,05) e no número de animais com anormalidades de perfusão (n= 5, 42%).

A Figura 2 mostra um exemplo de um animal do grupo CCC-SED que apresentou dilatação do Diâmetro Sistólico do VE (DSVE) associada com aumento de DPM ao longo do tempo (Figuras 2 A e B) em comparação a um animal do grupo CCC-TFA com função e morfologia do VE preservadas e sem aumento nos DPM (Figuras 2 C e D).

Figura 2. Efeitos do Treinamento Físico Aeróbico (TFA) na função e na perfusão cardíaca; (A) e (B) mostram imagens representativas da ecocardiografia bidimensional (ECO-2D), tomografia computadorizada por emissão de fóton único (SPECT) com Defeitos de Perfusão Miocárdica (DPM) de um animal do grupo CCC-SED (n=16), e (C) e (D) de um animal do grupo CCC-TFA (n=12); CCC: cardiomiopatia chagásica crônica, SED: sedentário.

Figura 2

TFA aumenta a eficiência da aptidão cardiorrespiratória na CCC

As variáveis do TECP estão na Tabela 2. Além de os animais não terem apresentado melhoras significativas no consumo de oxigênio no pico de exercício ou no limiar anaeróbico, o grupo CT-SED foi o único que não apresentou aumento no tempo até a exaustão após o período de acompanhamento. No entanto, os grupos que se submeteram ao treinamento físico apresentaram melhoras mais evidentes. Embora o CCC-TFA tenha apresentado um aumento no VO2AT, e uma diminuição tenha sido observada no CCC-SED, essa diferença não alcançou significância estatística..

Tabela 2. Dados de Teste de Esforço Cardiopulmonar dos grupos experimentais antes e após o treinamento físico aeróbico.

Variáveis CT-SED
(n=6)
CCC-SED
(n=16)
CT-TFA
(n=8)
CCC-TFA
(n=12)
Valor p
Tempo até exaustão (s)
Antes 464,67 ± 32,47 445,21 ± 72,19 494,00 ± 71,25 481,20 ± 76,57
Após 557,50 ± 91,24 539,64 ± 94,04* 686,78 ± 109,59* 687,20 ± 141,67* 0,043
VO2 pico (mL.Kg.min)
Antes 38,50 ± 3,46 42,70 ± 5,45 42,11 ± 4,40 40,32 ± 5,08
Após 43,04 ± 4,90 43,75 ± 4,42 43,33 ± 3,43 45,60 ± 5,65* 0,254
VO2@LA (mL.Kg.min)
Antes 31,22 ± 6,79 33,06 ± 5,48 30,12 ± 4,54 30,56 ± 3,25
Após 30,90 ± 6,25 28,95 ± 5,86 33,44 ± 3,96 34,39 ± 4,06 0,759

Dados em média e desvio padrão; TFA: treinamento físico aeróbico, CCC: cardiomiopatia chagásica crônica, CT: controle, SED: sedentário, VO2: consumo de oxigênio; VO2AT: consumo de oxigênio no limiar anaeróbico; ANOVA mista para medidas repetidas;

*

p<0,05 vs. basal do mesmo grupo experimental,

p≤0,05 vs. CCC-SED após tratamento, teste de Bonferroni para comparações múltiplas.

TFA reduz inflamação e fibrose no miocárdio e preserva a AST do músculo esquelético

A inflamação do miocárdio foi maior nos animais do grupo CCC-SED em comparação aos grupos CT-SED, CT-TFA e CCC-TFA (1,61±0,63 vs. 0,37±0,12 vs. 0,7±0,2 vs. 0,93±0,2 células/mm2, respectivamente, p<0,001). Não foi observada diferença significativa na fibrose total (p>0,05). Contudo, o grupo CCC-SED, mas não o grupo CCC-APT, apresentou maior expressão de colágeno tipo I em comparação aos grupos controles (p<0,05) (Figura 3).

Figura 3. Gráficos de barra mostrando os resultados de (A) inflamação miocárdica, (B) fibrose total, (C) colágeno tipo I, e (D) colágeno tipo III. Amostras histopatológicas representativas de tecidos de animais dos grupos (E) CT-SED (n=6), (F) CCC-SED (n=16), (G) CT-TFA (n=8) e (H) CCC-TFA (n=12), marcados com hematoxilina-eosina e vermelho picrosirius; TFA: Treinamento Físico Aeróbico; CCC: Cardiomiopatia Chagásica Crônica, CT: Controle, SED: Sedentário; escala= 50 μm, aumento de 40x.

Figura 3

Além disso, a atrofia do músculo esquelético foi confirmada pela redução na AST. O CCC-SED apresentou atrofia do músculo esquelético que foi normalizada pelo treinamento físico no grupo CCC-APT, como observado na Figura 4. Os animais do grupo CCC-SED frequentemente apresentaram inflamação do músculo esquelético que foi menos observado e menos intenso nos animis CCC-TFA.

Figura 4. (A) Gráficos de barra mostrando a análise quantitativa da área de secção transversa do músculo gastrocnêmio de animais do grupo infectado e do grupo controle. Imagens histopatológicas representativas do músculo gastrocnêmio dos grupos (B) CT-SED (n=4), (C) CCC-SED (n=6), (D) CT-TFA (n=4) e (E) CCC-TFA (n=5). Infiltrado inflamatório difuso de células mononucleares pode ser visto em CCC-SED (C); TFA: Treinamento Físico Aeróbico; CCC: Cardiomiopatia Chagásica Crônica; CT: Controle; SED: Sedentário; escala =100 μm, aumento 20x.

Figura 4

Discussão

O presente estudo investigou os efeitos do TFA em um modelo experimental de CCC em hamsters sírios utilizando técnicas de imagens de alta resolução in vivo e TECP. Os principais achados deste estudo foram que o TFA atenuou a progressão dos DPM, remodelamento e deterioração sistólica do VE, além de melhorar a eficiência da ACR. Ademais, o TFA diminuiu a inflamação e fibrose do miocárdio e aumentou a AST do músculo esquelético.

Em nosso estudo, o grupo CCC-SED apresentou piora nos defeitos de perfusão ao longo do tempo. A piora progressiva nos DPM como um mecanismo fisiopatológico da doença foi observada previamente tanto em cenários experimentais48,55 como clínicos.56,57 Além disso, alguns estudos levantaram a hipótese de que anormalidades da perfusão miocárdica podem preceder a deterioração sistólica do VE.19,58 Portanto, terapias visando melhorar a perfusão do miocárdio podem prevenir a progressão no dano cardíaco. Em nosso estudo, não observamos melhora nos DPM após a intervenção com exercício; contudo, os defeitos de perfusão não aumentaram significativamente após o exercício, diferentemente do que foi observado no grupo sedentário infectado.

Com base em nosso conhecimento atual, este é o primeiro estudo a utilizar esta estratégia para tratar DPM na CCC. Um recente estudo piloto investigou os efeitos do exercício aeróbico sobre os DPM em pacientes com angina microvascular, uma doença com um mecanismo similar aos distúrbios de perfusão miocárdica.59 Os autores observaram uma redução significativa nos DPM associados com melhora no pico de VO2 e na qualidade de vida. O exercício também promoveu benefícios na perfusão miocárdica na doença arterial coronariana60,61 e insuficiência cardíaca.62,63 Os mecanismos pelos quais o treinamento com exercício melhora a perfusão cardíaca são provavelmente multifatoriais e vários foram descritos incluindo melhora na função endotelial,6466 adaptações vasculares coronarianas,67 e melhor colateralização.68 Além disso, a redução da inflamação e melhorias no equilíbrio autonômico e neuro-hormonal podem contribuir para isso.

Quanto a outros tratamentos para perfusão miocárdica na CCC, Tanaka et al.55 utilizaram dipiridamol, um agente vasodilatador da artéria coronária, para melhorar DPM em hamsters sírios fêmeas. Os autores observaram uma melhora significativa nos DPM nos grupos tratados em comparação aos grupos controles. No entanto, o tratamento não interrompeu a disfunção progressiva do VE. Segundo os autores, apesar da melhora na perfusão, a doença progrediu porque o tratamento não teve benefícios na inflamação do miocárdio, que permaneceu similar entre os dois grupos infectados. Recentemente, Tanaka et al.17 investigaram o mesmo modelo animal com CCC tratada com pentoxifilina. Os autores relataram que esse tratamento reduziu a inflamação e os DPM, mas não preveniu a progressão da disfunção sistólica do VE. Os autores sugeriram que talvez o período de intervenção (seis meses após a infecção) não tenha sido suficiente para melhorar a disfunção sistólica do VE, mas para reduzir inflamação e DPM, uma vez que esses ocorrem nos estágios iniciais da doença e precedem a disfunção sistólica do VE. Outro estudo, utilizando verapamil (bloqueador de canal de cálcio) e aspirina (anti-inflamatório não esteroidal), demonstrou melhora significativa nos DPM e na qualidade de vida de pacientes com CCC.69 Infelizmente, os autores não avaliaram a função sistólica nem inflamação após a intervenção. Os efeitos benéficos do verapamil na CCC também foram demonstrados em camundongos infectados com T. cruzi.9,70

A infecção crônica pelo T. cruzi em humanos geralmente leva a um dano cardiovascular mais agressivo, com maior quantidade de fibrose e remodelamento ventricular mais grave em homens que em mulheres.71 Em animais, o pico de parasitemia e a progressão da doença parecem mais homogêneos nas mulheres.55,72 Uma vez que vários estudos10,17,21,43,48,55 apresentaram, com sucesso, o uso de hamsters sírios fêmeas na investigação da CCC, escolhemos esse modelo murino para estudar a doença. Nossos resultados estão de acordo com pesquisas prévias 10,43 em que hamsters sírios desenvolveram a doença semelhante a CCC em humanos. Disfunção ventricular esquerda, um marcador de gravidade da doença, foi observada na primeira avaliação sete meses após a infecção parasitária, quando a FEVE já estava reduzida. Achados similares foram descritos por Ribeiro et al.73 em que a FEVE e o diâmetro sistólico final do VE estavam deteriorados aos seis meses do início da doença, com progressão em estágios mais tardios nesse mesmo modelo animal. No entanto, observamos que o exercício interrompeu a progressão da disfunção do VE. Poucos ensaios clínicos investigaram a função e a morfologia do VE após o exercício.31,74 Nenhum desses estudos documentaram melhoras na função ou na morfologia cardíaca após o exercício. Entretanto, trataram-se de estudos pequenos, com diferentes perfis de pacientes e, portanto, mais estudos com um maior número de pacientes e períodos mais longos de acompanhamento são necessários para investigar se o treinamento físico pode melhorar ou interromper a deterioração cardíaca na CCC.

Além disso, na análise histopatológica, observamos que os animais infectados sedentários mostraram uma maior extensão de infiltrados inflamatórios com agrupamentos de células inflamatórias mononucleares e áreas de fibrose extensa em comparação a outros animais. O papel da inflamação e da fibrose promovendo anormalidades de perfusão já foi relatado por outros pesquisadores. Bilate et al.43 encontraram uma correlação estatisticamente significativa entre miocardite e fibrose intersticial. Os autores sugeriram que, provavelmente, o infiltrado inflamatório cardíaco tenha sido responsável por essa lesão tecidual progressiva, e consequente remodelamento e fibrose extensa. Ademais, Oliveira et al.48 relataram que esses distúrbios de perfusão possam estar localizados em regiões com miocárdio viável e perfusão diminuída secundária à inflamação. Assim, demonstramos que o TFA realizado em intensidade moderada, cinco vezes por semana, por oito semanas, foi capaz de reduzir inflamação e fibrose. A inflamação do miocárdio é a principal característica histopatológica da CCC, e terapias que objetivam melhorar essa condição demonstraram benefício promissores na função cardíaca.1,75

A fibrose cardíaca é considerada um preditor independente de desfecho adverso nesta cardiomiopatia.76 A fibrose também exerce um importante papel no déficit do desempenho cardíaco e dilatação cardíaca.77 Ramirez et al.21 relataram dilatação cardíaca (principalmente no apex) e trombo mural em hamsters sírios com CCC. Em nosso estudo, observamos dilatação diastólica no grupo CCC-TFA ao longo do tempo. No entanto, nossa hipótese é a de que esse aumento tenha sido uma adaptação fisiológica ao exercício, uma vez que nenhuma diferença foi observada na FEVE ou na fibrose entre esse grupo e animais não infectados. O colágeno tipo I foi mais abundante no grupo CCC-SED, mas não identificamos nenhuma diferença estatisticamente significativa entre os grupos com doença de Chagas que se submeteram ao exercício.

Os pacientes com CCC também podem apresentar anormalidades no músculo esquelético.20 Em nosso estudo, nós analisamos amostras do músculo gastrocnêmio. O grupo CCC-SED apresentou atrofia, e no grupo CCC-TFA a atrofia muscular foi normalizada após o exercício. Embora alguns estudos prévios2025,7881 tenham avaliado anormalidades do músculo esquelético após a infecção por T. cruzi, somente alguns deles analisaram a fase crônica, e nenhum avaliou AST do músculo após o TFA. Em relação aos estudos experimentais, Silva et al.80 observaram miosite com exsudato mononuclear e fibrose nos músculos do diafragma, intercostal e psoas de coelhos seis meses após a infecção.80 Weaver et al.22 avaliaram o músculo quadríceps de camundongos no início (2-4 meses) e no final (9-10 meses) da fase crônica. Os autores relataram poucos parasitas T. cruzi no músculo, inflamação, vasculite necrotizante, fibrose vascular, fibrose do endomísio, e anormalidades na marcha (incluindo evitar colocar o peso sobre um dos membros, arrastar o pé, e até mesmo paresia).22 Ramírez et al.21 avaliaram o músculo esquelético (músculo não especificado) de hamsters sírios e relataram miosite focal e necrose. Souza et al.78 identificaram uma expressão aumentada de quimiocinas, e que o número de células inflamatórias mantiveram-se elevadas no músculo esquelético (músculo não especificado) de camundongos em todos os tempos avaliados entre a fase aguda e crônica. Estudos sobre CCC com análises de biópsias humanas relataram dano capilar e menor AST do músculo esquelético (músculo vasto lateral);23 inflamação, desorganização e atrofia das fibras musculares (músculo bíceps);20 fibras musculares atróficas desnervadas (músculo gastrocnêmio);24 oclusão capilar, maior percentual de fibras musculares com menor capacidade oxidativa e maior percentual de fibras com maior capacidade glicolítica (músculo vasto lateral).25

Independentemente dos benefícios bem estabelecidos do exercício aeróbico em pacientes cardiopatas,45,82 poucos estudos clínicos investigaram o TFA no tratamento de cardiomiopatia chagásica.30 Lima et al.32 observaram melhoras na aptidão cardiorrespiratória (aumento no pico de VO2, no tempo de exercício e da distância de caminhada no Teste de Caminhada de Seis Minutos) e nenhum efeito adverso do exercício nos pacientes tratados. Artigos do estudo PEACH29,31,35,83 abordaram os efeitos do treinamento com exercício em pacientes com cardiomiopatia chagásica. Os estudos observaram maiores benefícios na ACR em pacientes com disfunção ventricular esquerda e insuficiência cardíaca. Adicionalmente, os efeitos benéficos contínuos do exercício ainda eram notados aos três48 e seis31 meses de acompanhamento. O exercício realizado por seis meses também melhorou a resposta vascular cutânea à hiperemia reativa.35

Nosso estudo também detectou efeitos positivos do TFA na CCC, com aumento na capacidade de exercício nos grupos submetidos ao TFA após oito semanas de treinamento (intensidade moderada, cinco dias/semana, 50 minutos). Quanto aos estudos experimentais prévios, somente seis3638,8486 investigaram os efeitos do TFA em outras fases da doença de Chagas, e somente um39 abordou o papel do exercício aeróbico na CCC já estabelecida. Schebeleski-Soares et al.86 conduziram um treinamento físico na esteira durante oito semanas (intensidade moderada, cinco dias/semana, velocidade e duração progressivas) antes da infecção por T. cruzi em camundongos. Soares et al.37 realizaram um treino na esteira por oito semanas (intensidade moderada, cinco dias/semana, aumento progressivo de velocidade e duração) antes da infecção por T. cruzi em camundongos. Novaes et a.85 aplicaram um protocolo de esteira de nove semanas (intensidade moderada, cinco dias/semana, aumento progressivo de velocidade e duração) em ratos Wistar antes da infecção por T. cruzi. Novaes et al.84 também usaram o mesmo protocolo em outra investigação com ratos Wistar (nove semanas de exercício na esteira, intensidade moderada, cinco dias/semana, aumento progressivo de velocidade e duração) antes da infecção por T. cruzi. Lucchetti et al.36 conduziram um protocolo na esteira durante nove semanas (intensidade definida pelo máximo estado estável de lactato, cinco dias/semana, 60 minutos)87 antes da infecção por T. cruzi em camundongos. Pedra-Rezende et al.38 estudaram a forma indeterminada crônica da doença de Chagas e usaram um protocolo de quatro semanas na esteira 140 dias após infecção (intensidade moderada, cinco dias/semana, aumento progressivo de velocidade e 60 minutos de duração). Finalmente, Preto et al.39 usaram um protocolo de natação por oito semanas (baixa intensidade de exercício aeróbico, cinco dias por semana, 30 minutos por dia) para tratar camundongos com CCC.

Embora todos esses estudos tenham usado o exercício aeróbico para tratar os animais, atualmente, somente Preto et al.39 observaram os efeitos do TFA na CCC e mostraram que o exercício melhorou parâmetros morfológicos e morfométricos dos ventrículos esquerdo e direito. Já nos animais não tratados, os autores observaram déficit na função contrátil do cardiomiócitos, mais inflamação e quantidades maiores de colágeno, hipertrofia do VE, diminuição na área periférica dos cardiomiócitos, alterações microvasculares e piora da tolerância ao exercício.39 Considerando esse cenário, nossos resultados contribuem com novos conhecimentos sobre os efeitos do exercício aeróbico na perfusão miocárdica e alterações histopatológicas no coração, e mostram que o TFA foi capaz de preservar a AST do músculo esquelético. Nós destacamos que este foi o primeiro estudo experimental em hamsters sírios que usou o exercício aeróbico no tratamento da CCC com o objetivo de mitigar os DPM, a inflamação e a fibrose no tecido cardíaco. Este também foi o primeiro estudo a avaliar a integridade da área periférica do músculo esquelético de animais com CCC após oito semanas de exercício aeróbico.

Como uma limitação, nós estudamos somente defeitos de perfusão no repouso, e é esperado que defeitos isquêmicos de perfusão ajudariam na interpretação. No entanto, seria necessário usar agentes inotrópicos positivos em animais anestesiados, o que pode interferir nos resultados. Adicionalmente, nosso grupo mostrou anteriormente a correlação entre DPM e inflamação em miocárdio viável.48,55 Apesar dos resultados positivos sobre os efeitos do TFA, talvez um período mais longo de acompanhamento e de treinamento com exercício revelaria resultados mais significativos sobre DPM. Além disso, nós não incluímos neste artigo dados quantitativos da inflamação no músculo esquelético. Estudos futuros usando treinamento com exercício no manejo de CCC são necessários para contribuir ao conhecimento disponível.

Por fim, este estudo corrobora a hipótese de que tanto DPM como inflamação contribuem para a deterioração na função sistólica na CCC, e o exercício é uma importante estratégia para minimizá-los. O treino com exercício tornou-se uma forte recomendação para a maioria das doenças cardíacas. Contudo, diretrizes atuais não recomendam explicitamente reabilitação cardíaca para pacientes com CCC.1,88 Nossos resultados fornecem a base para estudos futuros que visem investigar os benefícios da intervenção com exercício na CCC.

Conclusão

Nosso estudo apresenta evidências de que o TFA minimiza a disfunção cardíaca e os DPM em um modelo de hamster sírio com CCC. Ademais, além de melhorar o desempenho na corrida, o APT reduziu a infiltração de células inflamatórias e a fibrose no miocárdio, indicando seu potencial como estratégia terapêutica para a CCC. Esses achados destacam a importância do treinamento com exercício em mitigar a progressão da CCC e melhorar a função cardíaca. Além dos achados significativos relacionados às alterações cardíacas, vale destacar que nosso estudo também observou atrofia musculoesquelética em hamsters com CCC e melhora na AST do músculo após treinamento físico. Embora essas alterações não tenham sido o foco de nosso estudo, elas forneceram outros insights sobre complicações sistêmicas associadas a essa doença. Portanto, um entendimento mais abrangente dos efeitos do TFA sobre várias dimensões fisiopatológicas da CCC continua sendo um aspecto importante para estudos futuros.

Footnotes

Fontes de financiamento: O presente estudo foi financiado por Fundação de Amparo à Pesquisa do Estado de Minas Gerais – FAPEMIG (parecer: Demanda Universal 001/2022 APQ-01253-22); PROEX/CAPES (parecer: 23038.002321/2020-79); Fundação de Amparo à Pesquisa do Estado de São Paulo - FAPESP (parecer: 2016/25403-9).

Vinculação acadêmica: Este artigo é parte de dissertação de mestrado de Thayrine R. Damasceno pela Universidade Federal de Minas Gerais.

Aprovação ética e consentimento informado: Este estudo foi aprovado pelo Comitê de Ética da Universidade Federal de Minas Gerais sob o número de protocolo 229/2019. Todos os procedimentos envolvidos nesse estudo estão de acordo com a Declaração de Helsinki de 1975, atualizada em 2013.

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Exercise Training Reduces Inflammation and Fibrosis and Preserves Myocardial Function and Perfusion in a Model of Chronic Chagas Cardiomyopathy

Thayrine R Damasceno 1, Denise M Tanaka 2, Enrico F Magnani 1, Rafael D B Oliveira 1, Danielle A G Pereira 1, Ildernandes Vieira-Alves 1, Virginia S Lemos 1, Jorge M Cabeza 3, Camila G Fabricio 2, Alessandra A Resende 2, Dawit A P Gonçalves 1, Gustavo de Oliveira Zanetti 1, Eduardo E Vieira de Carvalho 4, Marcus V Simões 2, Luciano F L Oliveira 1,4,Mailing Address: Luciano F. L. Oliveira

Abstract

Background

Chronic Chagas cardiomyopathy (CCC) is caused by an inflammatory process induced by Trypanosoma cruzi, which leads to myocarditis with reactive and reparative fibrosis. CCC progresses with myocardial perfusion abnormalities and histopathological events that affect cardiorespiratory fitness (CRF).

Objectives

We evaluated the effects of aerobic physical training (APT) on myocardial perfusion and on morphological and functional impairments related with inflammation and fibrosis in Syrian hamsters with CCC. As a secondary objective, we analyzed the cross-sectional areas of the skeletal muscle.

Methods

Hamsters with CCC and their respective controls were divided into four groups: CCC sedentary, CCC-APT, sedentary control and APT control. Seven months after infection, the animals underwent echocardiography, myocardial perfusion scintigraphy and cardiopulmonary exercise testing. Moderate-intensity APT was performed for fifty minutes, five times a week, for eight weeks. Subsequently, the animals were reassessed. Histopathological analysis was conducted after the above-mentioned procedures. The level of significance was set at 5% in all analyses (p<0.05).

Results

CCC sedentary animals presented worse myocardial perfusion defects (MPD) over time, reduced left ventricle ejection fraction (LVEF) and showed more inflammation and fibrosis when compared to other groups (mixed ANOVA analysis). Conversely, APT was able to mitigate the progression of MPD, ameliorate inflammation and fibrosis and improve CRF efficiency in CCC-APT animals.

Conclusions

Our study demonstrated that APT ameliorated cardiac dysfunction, MPD, and reduced inflammation and fibrosis in CCC hamster models. Additionally, CCC-SED animals presented skeletal muscle atrophy while CCC-APT animals showed preserved skeletal muscle CSA. Understanding APT's effects on CCC's pathophysiological dimensions is crucial for future research and therapeutic interventions.

Keywords: Chagas Cardiomyopathy, Myocarditis, Cardiorespiratory Fitness, Exercise, Myocardial Perfusion Imaging

Introduction

Chagas disease is a neglected tropical disease that generates an annual global burden of US$ 627.46 million in healthcare costs1 and affects six to eight million people worldwide.2 The disease is caused by the protozoan Trypanosoma cruzi (T. cruzi) and most of the infected subjects remain asymptomatic throughout their lives (indeterminate form). However, about 40% progress to clinical forms (cardiac or digestive) 10 to 30 years after the initial acute infection.3 Chronic Chagas cardiomyopathy (CCC) is the most severe and progressive nonischemic cardiomyopathy in Latin America.4 CCC manifests with electrocardiography disturbances, wall motion and perfusion abnormalities, thromboembolic events, and heart failure, which may lead to sudden death.5

The main pathogenetic mechanisms of CCC are related to parasite persistence and immune-mediated myocardial injury, microvascular disorders and cardiac dysautonomia.6 In the chronic phase, the distinctive high load parasitemia observed in the acute phase is lessened by the immune response into a low-grade but persistent infection.7 This low-intensity inflammatory process, thus, leads to multifocal myocarditis with mononuclear infiltrates, myocytolytic lesions, necrosis, microvascular derangement, mitochondrial dysfunction, cardiomyocyte hypertrophy, increased areas of interstitial and perivascular fibrosis and cardiac remodeling.1,810

Myocarditis and reparative fibrosis are hallmarks of CCC.6 The myocardial inflammatory infiltrate is mainly composed by T cells and macrophages.11 Moreover, there is also an increased expression of inflammatory cytokines interferon-gamma (IFN-γ), tumor necrosis factor-alpha (TNF-α), interleukin-6 (IL-6)12,13 and chemokines.11,14 Additionally, persistence of T. cruzi, leading to continued production of INF-γ and TNF-α, stimulates oxidative and nitrosative stress that damage cardiomyocytes’ mitochondria, cause mitochondrial dysfunction and compromise energy production pathways.15,16 In addition to the above mentioned alterations that are associated with the poor prognosis of the disease, coronary microvascular dysfunction and the following myocardial perfusion disturbances may be an early mark of disease progression.17,18 These disturbances are also related to myocytolytic necrosis and development of cicatricial injuries linked with areas of regional transmural fibrosis.19

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Beside the myocardial damage, chronic T. cruzi infection can also affect the skeletal muscle. The main alterations include skeletal myositis, with mononuclear exudate,20 necrosis of fiber cells,21 muscle fiber disorganization and atrophy,20 vasculitis and fibrosis,22 capillary damage with thickening and reduplication of the basement membrane, smaller skeletal muscle cross-sectional area (CSA),23 and muscle denervation.24 CCC subjects may also present occluded capillaries and more glycolytic and less oxidative activity in the skeletal muscle.25 Together, these alterations may affect oxygen extraction, reduce oxygen delivery and lead to functional impairment.25

One of the main factors associated with morbidity and mortality in CCC is the disease progression26 that affects cardiorespiratory fitness (CRF)27 and quality of life.28 Currently, the treatment for CCC is mainly based on controlling the symptoms of the disease.1,5,29 However, despite the scarcity of prospective randomized trials,30 some studies have already observed the benefits of exercise training in these subjects, with major improvements in CRF.3134 The latest guideline regarding CCC1 has stated that physical activity improves many clinical parameters, but the benefits for this population have not yet been fully addressed. Hence, this approach has "conditional" grade recommendation and a "B" level of evidence.1

Improvements in peak VO2 have been observed after exercise training in subjects with CCC.30,31 Other benefits comprise improvements in left ventricular ejection fraction (LVEF), muscle respiratory strength,33 cutaneous microvascular function35 and in quality of life.30 In experimental studies, exercise training before or after acute experimental T. cruzi infection modulated inflammatory reaction and improved resistance against T.cruzi,36 induced reduction in serum activities of creatine kinase and creatine kinase-myocardial band (CK-MB),37 and reduced cardiac fibrosis.38 In CCC, only a study demonstrated that low-intensity aerobic exercise improves morphological and morphometric parameters of the right and left ventricles.39

In CCC experimental investigations, various animal models have been used.8,9,4043 Among these, the Syrian hamster murine model is the one that develops CCC resembling the human infection with the typical natural history, and histological, structural and functional changes of the disease with a more adequate timeline for research studies.10,43,44 Despite this evidence, none of these investigations have focused on the effects of aerobic exercise on myocardial perfusion, histopathological alterations (inflammation and fibrosis) and skeletal muscle changes in Syrian hamsters with CCC. Considering the several cardiovascular adaptations,4547 we believe that aerobic exercise may lead to improvements in the main pathogenetic mechanisms involved in the disease progression: myocardial perfusion defects (MPD) and inflammation. Therefore, this study aimed to evaluate the impact of aerobic physical training (APT) on myocardial morphological, functional and perfusion changes, correlating these variables with myocardial inflammation and fibrosis in Syrian hamsters with CCC by using high-resolution imaging in vivo. In addition, as a secondary objective, we aimed to analyze the cross-sectional areas of the skeletal muscle of this experimental model.

Methods

Study design

In this experimental study, female Syrian hamsters (Mesocricetus auratus), aged 12 weeks, obtained from Anilab (Animais de Laboratório Criação e Comercio Ltda, Paulínia/SP, Brazil) were kept in a temperature-controlled room with free access to water and standard food and were submitted to a 12-hour light-dark cycle. The animals were kept in a cage following Brazilian National Council for the Control of Animal Experimentation (CONCEA) recommendations, with an area/animal > 122.5 cm² and environmental enrichment appropriate for the species. All the procedures were conducted during the light phase of the light-dark cycle.

The animals were randomly allocated using a randomization generator (www.random.org Random.org, Dublin, Ireland). Initially, they (n=60) were allocated into infected and non-infected groups. After the acute phase of infection, the surviving animals [infected (n=37), non-infected (n=16)] were allotted into four experimental groups – APT and sedentary: CCC-APT (n=22), CCC-SED (n=22); and two control groups also divided into APT and sedentary: CT-APT (n=8) and CT-SED (n=8). The procedures were conducted by a researcher, blind to the groups and unaware of the treatment.

The animals were infected intraperitoneally with 3.5x104 trypomastigote forms of the Y strain of T. cruzi, while the control group was inoculated with saline solution (0.4 ml). Seven months after infection (Figure 1), the animals were submitted to two-dimensional echocardiography (2-D ECHO), single photon emission tomography (SPECT) with 99mTc-Sestamibi (RPHKARDIA, Porto Alegre, Brazil) and cardiopulmonary exercise testing (CPET). The image assessments lasted one week with two to three days between each test. The CPET lasted another five days for climatization and performance of the tests. The exercise training started two days after CPET. Eight weeks after the intervention period (APT), the animals underwent the same assessments (CPET, ECHO-2D and SPECT), followed by euthanasia [ketamine (Vetbrands, Jacareí, São Paulo, Brazil) and xylazine (Bayer, São Paulo, Brazil), 160 mg/Kg and 10 mg/Kg, respectively] and collection blood samples collection to confirm chronic Chagas disease.48 The confirmation of chronic T. cruzi infection was carried out with a Western blot assay to detect anti-T. cruzi antibodies in the sera of the infected animals as previously described.48,49 Cardiac tissue and skeletal muscle samples were collected for histopathology.

Figure 1. Study timeline. After the experimental infection with the Y-strain of T. cruzi and the follow-up period of seven months for the development of the disease, the surviving animals and the control group underwent two-dimensional echocardiogram (ECHO-2D), SPECT with 99mTc-Sestamibi and cardiopulmonary exercise testing (CPET). Afterwards, they were allocated in four groups [CT-SED (n=6), CCC-SED (n=16), CT-APT (n=8), CCC-APT (n=12)]. Subsequently, the APT groups were submitted to eight weeks of aerobic physical training (APT) and reassessed. Lastly, they were euthanized, and the heart and skeletal muscle were collected for the histopathological analysis. Illustration created with BioRender.com.

Figure 1

The study was conducted in compliance with the recommendations of CONCEA after due approval from the Ethics Committee on Animal Use – CEUA (N°229/2019) of our institution.

Two-dimensional echocardiography

Doppler echocardiography was performed using a dedicated high-resolution two-dimensional echocardiography (ECHO 2-D) system for small animals Vevo® 2100 (Visual Sonics Inc., Toronto, Canada) with a 30 MHz frequency linear transducer. After sedation with ketamine and xylazine (80 mg/Kg and 5 mg/Kg, respectively), the animals were shaved and placed in left lateral decubitus. Images from the parasternal long and short axis of the left ventricle were obtained. Two-dimensional images were used to assess LVEF, left ventricular (LV) end-diastolic and LV end-systolic volumes in the parasternal long-axis view as previously described.50

Myocardial perfusion imaging

To assess myocardial perfusion at rest, high-resolution SPECT images were acquired with 99mTc-Sestamibi, using a gamma camera (BrightView XCT; Philips Medical Systems Inc., Cleveland, OH) adapted with an image acquisition system with a "pinhole" collimator of 1.5 mm opening positioned parallel to a rotational support for the animal, as previously described elsewhere.48,51

Briefly, under isoflurane anesthesia52 (Isoforine, São Paulo, Brazil), the animals received 555 MBq of MIBI through the sublingual vein and were allowed to awake. After 90 minutes, the hamsters were re-anesthetized with a combination of ketamine (80mg/kg) and xylazine (5mg/kg) and SPECT images were acquired. Images, collected in upright position, were reconstructed using a three-dimensional ordered-subset expectation maximization algorithm (3D-OSEM, four subsets and 10 interactions). Radiotracer accumulation in the myocardium was analyzed semi-quantitatively using polar maps generated by software MunichHeart® (MunichHeart software, Technical University Munich, Munich, Germany). The MPD were considered significant if they were higher than 5% of the left ventricle.48

Cardiopulmonary exercise testing

Previously to CPET, the animals were familiarized with the treadmill for five consecutive days with incremental velocities and fixed inclination (5°).53 For the evaluation of the cardiorespiratory fitness of the animals, oxygen consumption (VO2) and carbon dioxide production (VCO2) were continuously measured by open-flow indirect calorimetry on a treadmill with speed and incremental inclination (Panlab, Harvard Apparatus, Spain). VO2 was expressed in units adjusted to the animal's size (mL.kg-0.75.min-1) and peak VO2 was defined as the highest VO2 value measured during the test before exhaustion. The VO2 at anaerobic threshold (VO2AT) was determined as the oxygen consumption at which a linear relationship between VCO2 and VO2 was lost during progressive treadmill exercise associated with an abrupt increase in respiratory exchange ratio.

The stress protocol has been described before.54 Concisely, the protocol consists in increasing speed and inclination of the treadmill at each stage. The first three stages lasted two minutes with a five-degree increment in each stage. From stage four onwards, the duration was of one minute, and inclination was maintained at 15 degrees. The speed started at 15 cm/s and increased 5 cm/s each stage until stage six. From that, the speed increased 1.67 cm/s each stage until the animal's exhaustion. The criteria for interrupting the test included the animals staying for five seconds or longer on the electrical stimulation grid or staying for 10 seconds on the distal end of the treadmill.53,54

Aerobic physical training

After basal evaluation (ECHO 2-D, SPECT and CPET), the animals underwent APT on a treadmill (Gaustec Magnetismo, Nova Lima, Minas Gerais, Brazil), following an 8-week protocol adapted from previous work.53 APT was performed 5 times a week for 50 minutes at moderate intensity (50% of the peak velocity defined by the CPET and 5% treadmill grade) in the same period of the day. The time, speed and grade were progressively increased in the first two weeks until the prescribed intensity was reached. To ensure similar handling and exposure to APT animals, the sedentary animals were submitted to two minutes of treadmill running five days per week, with the same running speed as APT animals. After the training period, the evaluation methods were repeated and the animals euthanized for tissue collection for histopathological study.

Histopathological analysis

For histopathological analysis, transverse tissue slices (5 μm thick) were obtained from three sections of the heart (basal, mid-ventricular and apical), maintaining the orientation for the topographic correlation with in vivo images as previously described.10 After progressive dehydration, the tissue was fixed in paraffin and samples from each ventricular section were stained with hematoxylin-eosin and picrosirius-red to quantify inflammation and fibrosis, respectively. After that, digital microscopy images (40× objective lens) of endocardium, myocardium and epicardium from each LV segment were taken using BX51 Olympus microscope (Olympus; Tokyo, Japan) equipped with a Q-color 5 camera (Olympus America, Center Valley, Inc., USA). For picrosirius-red slices, polarized light microscopy photographs were also taken to quantify type I and type III collagen, by identifying bright red-yellow and green fibers, respectively. Subsequently, they were analyzed using the Aperio ImageScope (version 12.4.6, Leica Biosystems Imaging, Inc., USA) and Image Pro Plus 32 (version 4.5.0.29; Media Cybernetics, Inc., Maryland, USA) software.

Inflammation was quantified by counting the number of mononucleated cells per field (cells/mm2). Picrosirius red staining defined the interstitial fibrosis as the percent (%) of total area with caution to exclude perivascular fibrosis. To analyze the histopathological alterations, the left ventricle was divided into 16 segments: basal (anterior, anteroseptal, inferoseptal, inferior, inferolateral, anterolateral), mid-ventricular (anterior, anteroseptal, inferoseptal, inferior, inferolateral, anterolateral) and apical (anterior, septal, inferior, lateral).

Transverse skeletal muscle sections (5 μm thick) from medial portion were fixed in paraffin and, later, were stained with hematoxylin-eosin to quantify the fiber CSA. Histological images of the muscle middle portion (bar=100 μm, 20x) were analyzed using the softwares Aperio ImageScope (version 12.4.6, Leica Biosystems Imaging, Inc., USA) and ImageJ Fiji software (version JAVA 1.8.0_322., National Institutes of Health, Bethesda, Maryland, USA). For the CSA analysis, about 200 muscle fibers were measured per sample. Additionally, we only used a representative number of animals [CT-SED (n=4), (C) CCC-SED (n=6), (D) CT-APT (n=4) and (E) CCC-APT (n=5)] from each experimental group.

Sample size calculation

The sample size was calculated using OpenEpi online software (Open Source Epidemiologic Statistics for Public Health, version 3.1, Atlanta, GA, USA), and the criteria used to define the sample size were based on previous studies.10,55 A 10% reduction in the perfusion defect between infected groups at the end of the treatment was assumed, with two-tailed alpha of 0.05, 1-β= 0.8. The estimated sample size for this study was 13 animals in each infected group and eight animals in the control groups. As the study includes four groups (two controls and two infected groups), the total number was 42 animals. However, a loss of 40% was considered due to the aggressiveness of the parasitemia in the groups of infected animals. We also considered that only 30 to 50% of chronically infected animals develop Chagas cardiomyopathy.12 Therefore, the total number of animals used in this study was 16 control animals (CT-SED = 8 animals; CT-APT = 8 animals) plus 44 infected animals (CCC sedentary = 22 animals; CCC APT = 22 animals), totaling 60 animals.

Statistical analysis

Continuous variables are reported as mean ± standard deviation and categorical variables are expressed as absolute (n) and relative (%) frequency. The Kolmogorov–Smirnov Test was used to verify Gaussian distribution of the variables. One-way ANOVA analysis of variance was used for simultaneous comparison of the four experimental groups at baseline and for histopathological analysis of inflammation and fibrosis. The mixed ANOVA (mixed ANOVA or split-plot factorial ANOVA) for repeated measures was used to verify the interaction (main effect) between the experimental groups (between-subject effect) and the time (within-subject effect) for the effect of APT on ECO-2D, SPECT and CPET variables. In case of statistically significant interactions, the Bonferroni post hoc multiple comparisons were conducted.

The statistical analysis and the graphs were made using GraphPad Prism software (version 9.0.0; GraphPad Software, San Diego, California, USA). The level of significance was set at 5% in all analyzes (p<0.05).

Results

In the acute phase of infection (up to 35 days after infection), a mortality rate of 16% (n=7) was observed. Thirty-seven infected animals and 16 controls underwent baseline evaluations (7 months after infection). During baseline evaluations, three infected animals died due to anesthesia. Another six infected animals (CCC-SED, n= 4 and CCC-APT, n= 2) and 2 controls died during the intervention period. No animal died while performing APT.

APT ameliorates LV remodeling and LV systolic and perfusion dysfunction

The results of Echo-2D and myocardial perfusion SPECT at baseline and after reassessments post-APT are presented in Table 1. Regarding LVEF, a significant interaction between the time and experimental groups was observed. LVEF had an important reduction only in CCC-SED group. The CCC-APT was the only group that presented LV diastolic dilation over time. However, this group did not present increase in LV mass or LV systolic diameter. Regarding the MPD, the CCC-SED group presented worsening of perfusion defects over time.

Table 1. Echocardiography and myocardial perfusion SPECT data from the experimental groups before and after the aerobic physical training.

Variables CT-SED
(n=6)
CCC-SED
(n=16)
CT-APT
(n=8)
CCC-APT
(n=12)
p Values
LVEF (%)
Pre 52.93 ± 1.49 45.49 ± 8.84 49.86 ± 2.93 43.74 ± 9.92
Post 52.47 ± 3.59 39.69 ± 7.80* 47.28 ± 5.67 42.46 ± 4.47 0.007
LVDD (mm)
Pre 7.71 ± 0.51 7.57 ± 0.70 7.73 ± 0.34 7.71 ± 0.43
Post 7.96 ± 0.56 7.99 ± 1.00 8.22 ± 0.50 8.34 ± 0.60* 0.030
LVSD (mm)
Pre 5.68 ± 0.43 5.68 ± 0.94 5.99 ± 0.40 6.13 ± 0.54
Post 6.08 ± 0.53 6.06 ± 1.01 6.47 ± 0.81 6.80 ± 0.74 0.050
LV Mass (mg)
Pre 519.19 ± 89.55 549.85 ± 96.73 532.02 ± 98.15 541.89 ± 84.71
Post 667.78 ± 125.04* 686.99 ± 152.06* 735.47 ± 170.16* 622.15 ± 129.83 0.014
MPD (%)
Pre 2.45 ± 1.69 4.64 ± 3.45 3.08 ± 2.56 4.81 ± 3.52
Post 3.31 ± 2.44 8.29 ± 7.06* 2.56 ± 3.43 6.30 ± 3.38 0.010

Data are reported as mean ± standard deviation. APT: aerobic physical training, CCC: chronic Chagas cardiomyopathy, CT: control, SED: sedentary, LVEF: left ventricle ejection fraction, LVDD: left ventricle diastolic diameter, LVSD: left ventricle systolic diameter, LV mass: left ventricle mass, MPD: myocardial perfusion defect, SPECT: single-photon emission computerized tomography; mixed ANOVA for repeated measures;

*

p<0.05 vs. baseline of the same experimental group,

p≤0.05 vs. post-treatment CCC-SED, Bonferroni test for multiple comparisons.

Animals presenting significant MPD (> 5% of LV) were detected in both infected groups at baseline, with five animals (36%) in the sedentary and three (25%) in the exercise group. After follow-up, we observed an increase in the size (p< 0.05) and number of animals (n=10, 67%) with MPD in the CCC-SED group while in the APT group we noticed a smaller increase in the size (p>0.05) and number of animals with perfusion abnormalities (n= 5, 42%).

Figure 2 shows an example of an animal from the CCC-SED group that presented LV systolic diameter (LVSD) dilation associated to MPD increase over time (Figures 2 A and B) in comparison with an animal from the CCC-APT with preserved LV function and morphology and no increase in MPD (Figures 2 C and D).

Figure 2. Effects of APT in cardiac function and perfusion. (A) and (B) show representative images of ECHO-2D and SPECT with MPD of an animal from CCC-SED (n=16), and (C) and (D) of an animal from CCC-APT (n=12); APT: aerobic physical training, CCC: chronic Chagas cardiomyopathy, SED: sedentary, MPD: myocardial perfusion defect.

Figure 2

APT increases the efficiency of cardiorespiratory fitness in CCC

CPET variables are shown in Table 2. Besides the animals did not present significant improvements in the oxygen consumption at the peak of exercise or at the anaerobic threshold, CT-SED was the only group that did not present increase in the time until the exhaustion after the follow-up period. However, greater improvements were observed in groups that underwent exercise training. Although CCC-APT presented an increase in VO2AT, and a decrease was observed in CCC-SED, this difference did not reach statistical significance.

Table 2. Cardiopulmonary exercise testing data from the experimental groups before and after the aerobic physical training.

Variables CT-SED
(n=6)
CCC-SED
(n=16)
CT-APT
(n=8)
CCC-APT
(n=12)
p Values
Time until exaustion (s)
Pre 464.67 ± 32.47 445.21 ± 72.19 494.00 ± 71.25 481.20 ± 76.57
Post 557.50 ± 91.24 539.64 ± 94.04* 686.78 ± 109.59* 687.20 ± 141.67* 0.043
VO2peak (mL.Kg.min)
Pre 38.50 ± 3.46 42.70 ± 5.45 42.11 ± 4.40 40.32 ± 5.08
Post 43.04 ± 4.90 43.75 ± 4.42 43.33 ± 3.43 45.60 ± 5.65* 0.254
VO2@AT (mL.Kg.min)
Pre 31.22 ± 6.79 33.06 ± 5.48 30.12 ± 4.54 30.56 ± 3.25
Post 30.90 ± 6.25 28.95 ± 5.86 33.44 ± 3.96 34.39 ± 4.06 0.759

Data are reported as mean ± standard deviation; APT: aerobic physical training, CCC: chronic Chagas cardiomyopathy, CT: control, SED: sedentary, VO2: oxygen consumption; VO2AT: oxygen consumption at anaerobic threshold. Mixed ANOVA for repeated measures;

*

p<0.05 vs. baseline of the same experimental group,

p≤0.05 vs. post-treatment CCC-SED, Bonferroni test for multiple comparisons.

APT ameliorates myocardial inflammation and fibrosis and preserves skeletal muscle CSA

Myocardial inflammation was higher in animals from CCC-SED when compared to CT-SED, CT-APT and CCC-APT (1.61±0.63 vs 0.37±0.12 vs 0.7±0.2 vs 0.93±0.2 cells/mm2, respectively, p< 0.001). No significant difference in total fibrosis (p> 0.05) was observed. However, the CCC-SED group, but not the CCC-APT group, presented higher type I collagen expression when compared to control groups (p<0.05) (Figure 3).

Figure 3. Bar graphs showing the results of (A) myocardial inflammation, (B) total fibrosis, (C) type I collagen and (D) type III collagen. Representative histopathological samples of (E) CT-SED (n=6), (F) CCC-SED (n=16), (G) CT-APT (n=8) and (H) CCC-APT (n=12) tissues stained with hematoxylin & eosin and picrosirius red. APT: aerobic physical training, CCC: chronic Chagas cardiomyopathy, CT: control, SED: sedentary. Bar= 50 μm, 40x magnification.

Figure 3

Furthermore, skeletal muscle atrophy was confirmed by the reduction in CSA. CCC-SED presented skeletal muscle atrophy that was normalized by exercise training in CCC-APT group, as observed in the Figure 4. The CCC-SED animals frequently presented skeletal muscle inflammation that was less observed and less intense in the CCC-APT animals.

Figure 4. (A) Bar graphs showing the quantitative analysis of the gastrocnemius muscle cross-sectional area (CSA) of animals from the infected and control groups. Representative gastrocnemius muscle histopathological images taken from (B) CT-SED (n=4), (C) CCC-SED (n=6), (D) CT-APT (n=4) and (E) CCC-APT (n=5) groups. Diffuse mononuclear inflammatory infiltrate can be seen in CCC-SED (C). APT: aerobic physical training, CSA: cross-sectional area, CCC: chronic Chagas cardiomyopathy, CT: control, SED: sedentary. Bar=100 μm, 20x magnification.

Figure 4

Discussion

The present study investigated the effects of APT in an experimental model of CCC in Syrian hamsters by using in vivo high-resolution imaging techniques and CPET. The main findings of this study were that APT mitigated the progression of MPD, LV remodeling and LV systolic deterioration, in addition to improving the efficiency of CRF. Furthermore, APT ameliorated myocardial inflammation and fibrosis and improved the CSA of skeletal muscle.

In our study, the CCC-SED group presented worsening of perfusion defects over time. Progressive MPD as a pathophysiological mechanism of the disease has been observed previously both in experimental48,55 and clinical56,57 scenarios of CCC. Moreover, some works have hypothesized that myocardial perfusion abnormalities may precede LV systolic deterioration.19,58 Therefore, therapy aiming at improving myocardial perfusion may prevent the progression in cardiac damage. In our study, we did not observe improvements in MPD after exercise intervention; however, the perfusion defects did not increase significantly after the exercise in contrast to the infected sedentary group.

To the best of our knowledge, this is the first work using this strategy to treat MPD in CCC. A recent pilot study investigated the effects of aerobic exercise over MPD in patients with primary microvascular angina, a disease with a similar mechanism to myocardial perfusion disturbances.59 The authors observed a significant reduction in myocardial perfusion disturbances associated with improvements in VO2peak and quality of life. The exercise also promoted benefits in myocardial perfusion in coronary artery disease60,61 and heart failure62,63 patients. The mechanisms by which exercise training promotes myocardial perfusion are probably multifactorial and several have been described such as improved endothelial function,6466 coronary vascular adaptations67 and enhanced collateralization.68 Moreover, reduction in inflammation and improvements in autonomic and neurohormonal balance may contribute to it.

Regarding other treatments for myocardial perfusion in CCC, Tanaka et al.55 have used dipyridamole, a coronary vasodilator agent, to improve MPD in female Syrian hamsters. The authors observed a significant MPD improvement in the treated groups compared to the control groups. However, the treatment did not interrupt the progressive LV dysfunction. According to the authors, despite improvements in perfusion, the disease progressed because the treatment had no benefits on myocardial inflammation, which remained similar in the two infected groups. Recently, Tanaka et al.17 investigated the same animal model with CCC treated with pentoxifylline. The authors reported that this treatment reduced the inflammation and MPD but did not prevent the progression of LV systolic dysfunction. They hypothesized that maybe the period of intervention (six months after the infection) was not enough to improve LV systolic dysfunction, but did reduce inflammation and MPD as they occur in the early stages of the disease, and precede the LV systolic dysfunction. Another study, using verapamil (calcium channel blocker) plus aspirin (non-steroidal anti-inflammatory drug), has demonstrated significant improvements in MPD and quality of life in CCC patients.69 Unfortunately, the authors did not assess the systolic function or inflammation after the intervention. The beneficial effects of verapamil in CCC have also been demonstrated in T. cruzi infected mice.9,70

Chronic T. cruzi infection in humans generally leads to a more aggressive cardiovascular damage, with higher amount of fibrosis and more severe ventricular remodeling, in males than in females.71 In animals, peak parasitemia and disease progression seem more homogeneous in females.55,72 As several reports10,17,21,43,48,55 have successfully used female Syrian hamsters when investigating CCC, we chose this murine model to study the disease. Our results are in accordance with previous research10,43 in which Syrian hamsters developed the disease resembling human CCC. LV dysfunction, a marker of disease severity, was observed in the first assessment seven months after the parasitic infection, when the LVEF was already reduced. Similar findings were described by Ribeiro et al.,73 where LVEF and LV end-systolic diameter were deteriorated at six months of disease onset and progressed later in this same animal model. However, we observed that the exercise training interrupted LV dysfunction progression. Only few clinical trials have investigated the LV function and morphology after exercise.31,74 None of the above-mentioned studies documented improvements in heart function or morphology after the exercise. However, the studies were small, with different profiles of patients and, therefore, more studies with more patients and longer follow-up periods are necessary to investigate whether exercise training may improve or interrupt cardiac deterioration in CCC.

Furthermore, in the histopathological analysis we noticed that the infected sedentary animals showed a higher extent of inflammatory infiltrates with clusters of mononuclear inflammatory cells and areas with extensive fibrosis when compared to other animals. The role of inflammation and fibrosis triggering perfusion abnormalities was already reported by other researchers. Bilate et al.43 found a statistically significant correlation between myocarditis and interstitial fibrosis. The authors suggested that the cardiac inflammatory infiltrate was likely responsible for this progressive tissue injury, and consequent remodeling and extensive fibrosis. In addition, Oliveira et al.48 reported that these perfusion disturbances may be localized in regions with viable myocardium and reduced perfusion secondary to inflammation. Therefore, we demonstrated that APT performed at moderate intensity five times a week for eight weeks were able to ameliorate inflammation and fibrosis. Myocardial inflammation is the main histopathological characteristic of CCC, and therapies targeting it have demonstrated promising benefits on the cardiac function.1,75

Cardiac fibrosis is considered an independent predictor of adverse outcome in this cardiomyopathy.76 Fibrosis also plays an important role in the impairment of cardiac performance and heart dilation.77 Ramírez et al.21 reported heart dilation (mainly in the apex) and mural thrombosis in Syrian hamsters with CCC. In our study, we observed diastolic dilation in the CCC-APT group over time. However, we hypothesized that this increase was a physiological adaptation to exercise, since no difference was observed in LVEF or fibrosis between this group and uninfected animals. The amount of type I collagen was higher in the CCC-SED group, but we did not notice statistically significant difference between the groups with Chagas disease that underwent exercise.

CCC patients may also present skeletal muscle abnormalities.20 In our study we analyzed samples from gastrocnemius muscle; the CCC-SED group presented atrophy and in the CCC-APT group, muscle atrophy was normalized after exercise training. Although some previous researches2025,7881 have investigated skeletal muscle abnormalities after T. cruzi infection, just a small number have analyzed the chronic phase and none have evaluated the muscle CSA in the chronic phase after APT. Concerning experimental studies, Silva et al.80 observed myositis with mononuclear exudate and fibrosis in the diaphragm, intercostal and psoas muscles of rabbits after six months of infection.80 Weaver et al.22 evaluated the quadriceps muscle of mice in the early (2 – 4 months) and late (9 – 10 months) chronic phase. The authors reported few T. cruzi parasites in the muscle, inflammation, necrotizing vasculitis, vascular fibrosis, endomysium fibrosis and gait abnormalities (including avoidance of weight-bearing on any limb, foot dragging, and even paresis).22 Ramírez et al.21 evaluated the skeletal muscle (muscle not specified) of Syrian hamsters and reported focal myositis and necrosis. Souza et al.78 noticed an upregulated expression of chemokines and that the number of inflammatory cells remained elevated in skeletal muscle (muscle not specified) of mice at all time points evaluated from acute to chronic phases. The reports in human biopsy studies of CCC showed capillary damage and smaller skeletal muscle CSA (vastus lateralis muscle);23 inflammation, muscle fiber disorganization and atrophy (biceps muscle);20 denervated atrophic muscle fibers (gastrocnemius muscle);24 capillary occlusion, higher percentage of muscle fibers with lower oxidative capacity and enhanced percentage of fibers with more glycolytic capacity (vastus lateralis muscle).25

Regardless of the well-established benefits of aerobic exercise in cardiac patients,45,82 only a few clinical studies have investigated APT in the treatment of Chagas cardiomyopathy.30 Lima et al.32 observed improvements in cardiorespiratory fitness (increases in VO2peak, exercise time and six-minute walk test distance) and no adverse effects of exercise in the treated patients. Articles from PEACH study29,31,35,83 addressed the effects of exercise training in patients with Chagas cardiomyopathy. The studies observed major improvements in CRF in patients with LV dysfunction and heart failure. Moreover, the continued beneficial effects of the exercise were still noticed at three48 and six31 months of follow-up. The exercise performed for six months also improved cutaneous vascular responsiveness to reactive hyperemia.35

Our study also detected positive effects of APT in CCC, with increase in exercise capacity in APT groups after eight weeks of training (moderate intensity, five days/week, 50 minutes). Regarding previous experimental studies, only six3638,8486 have investigated the effects of APT in other phases of Chagas disease and only one39 has addressed the role of aerobic exercise on established CCC. Schebeleski-Soares et al.86 conducted an 8-week treadmill exercise (moderate intensity, five days/week, progressive speed and duration) before T. cruzi infection in mice. Soares et al.37 performed an 8-week treadmill training (moderate intensity, five days/week, incremental speed and duration) before T. cruzi infection in mice. Novaes et al.85 administered a 9-week treadmill protocol (moderate intensity, five days/week, progressive inclination, speed and duration) to Wistar rats before T. cruzi infection. Novaes et al.84 also used the same protocol in a further investigation with Wistar rats (9-week treadmill exercise, moderate intensity, five days/week, progressive inclination, speed and duration) before T. cruzi infection. Lucchetti et al.36 performed a 9-week treadmill protocol (workload intensity defined by the maximal lactate steady state, five days/week, 60 minutes)87 before T. cruzi infection in mice. Pedra-Rezende et al.38 studied the chronic indeterminate form of Chagas disease and used a 4-week treadmill protocol 140 days postinfection (moderate intensity, five days/week, progressive increase in speed, 60 min). Finally, Preto et al.39 used an 8-week swimming protocol (low-intensity aerobic exercise, five days/week, 30 minutes/day) to treat mice with CCC.

Although all these studies have used aerobic exercise as a non-pharmacological option to treat the animals, currently, just Preto et al.39 observed the effects of APT on CCC and showed that exercise improved morphological and morphometric parameters of the right and left ventricle. In the untrained animals, the authors observed impaired cardiomyocyte contractile function, more inflammation and higher amount of collagen, LV hypertrophy, decrease in the CSA of cardiomyocytes, microvascular changes and worsening of exercise tolerance.39 Considering this scenario, our results add knowledge about the effects of aerobic exercise on myocardial perfusion and histopathological alterations on the heart, and show that APT was able to preserve the skeletal muscle CSA. We highlight that this was the first experimental study in Syrian hamsters that used aerobic exercise in the treatment of CCC aiming to mitigate MPD, inflammation and fibrosis in the cardiac tissue. This was also the first study to assess the integrity of skeletal muscle CSA of CCC animals after eight weeks of aerobic exercise.

As a limitation, we studied only resting perfusion defects and it may be expected that ischemic perfusion defects would add value in the interpretation. However, it would be necessary to use inotropic positive drugs in anesthetized animals, which may interfere with the results. Moreover, our group has previously shown the correlation between MPD and inflammation in viable myocardium.48,55 Despite the positive results regarding the effects of APT, maybe a longer period of follow-up and exercise training would show more significant results regarding MDP. Additionally, we did not include in this paper the quantitative data regarding skeletal muscle inflammation. Future studies using exercise training in the management of CCC are necessary to strengthen the knowledge available.

Finally, this study supports the hypothesis that both MPD and inflammation contribute to systolic function deterioration in CCC, and exercise is an important strategy to minimize it. Exercise training has become a robust recommendation for most of the cardiac diseases. However, current guidelines do not explicitly recommend cardiac rehabilitation for CCC patients.1,88 Our results provide the foundation for further studies aimed at investigating the benefits of exercise intervention in CCC.

Conclusion

Our study provides evidence that APT ameliorates cardiac dysfunction and MPD in a Syrian hamster model of CCC. Moreover, besides improving running performance, APT reduced inflammatory cell infiltration and fibrosis in the myocardium, indicating its potential as a therapeutic strategy for CCC. These findings highlight the importance of exercise training in mitigating the pathological progression of CCC and improving cardiac function. In addition to the significant findings related to cardiac alterations, it is noteworthy that we also observed skeletal muscle atrophy in hamsters with CCC and improvements in the muscle CSA after exercise training. Although these changes were not the focus of our investigation, they provided additional insights into the systemic complications associated with the disease. Therefore, a comprehensive understanding of the effects of APT on various pathophysiological dimensions of CCC remains an important aspect for future investigations.

Footnotes

Sources of funding: This study was partially funded by Fundação de Amparo à Pesquisa do Estado de Minas Gerais – FAPEMIG (grant: Demanda Universal 001/2022 APQ-01253-22); PROEX/CAPES (grant: 23038.002321/2020-79); Fundação de Amparo à Pesquisa do Estado de São Paulo - FAPESP (grant: 2016/25403-9).

Study association: This article is part of the thesis of master submitted by Thayrine R. Damasceno, from Universidade Federal de Minas Gerais.

Ethics approval and consent to participate: This study was approved by the Ethics Committee of the Universidade Federal de Minas Gerais under the protocol number 229/2019. All the procedures in this study were in accordance with the 1975 Helsinki Declaration, updated in 2013.


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