Skip to main content
Problems of Endocrinology logoLink to Problems of Endocrinology
. 2024 Nov 5;70(5):106–114. [Article in Russian] doi: 10.14341/probl13397

Роль лептина в развитии патологии эндометрия: литературный обзор

The role of leptin in endometrium disorders: literature review

Иевлева К Д 1,, Данусевич И Н 1,, Сутурина Л В 1,
PMCID: PMC11610639  PMID: 39509642

Abstract

Leptin is not only the main regulator of energy balance, but also it affects the reproductive and immune systems. Leptin and its receptors are expressed in the endometrium and are actively involved in the embryo implantation. According to numerous studies, expression and level changes of leptin are associated with the inflammatory and autoimmune diseases, including endometriosis and chronic endometritis. Hyperplastic and inflammatory diseases of the uterus are accompanied by a violation of the receptivity of the endometrium due to the dysregulation of many factors involved in proliferation, vascularization and decidualization of cells. Activity of most of these factors is due to the leptin action, however, there are no studies of the direct effect of leptin in the pathogenesis of disorders of the endometrium in hyperplastic and inflammatory diseases.

Thus, the purpose of this literature review was to describe the putative molecular mechanisms of the effect of leptin on the development of endometrial pathology.

Literature search was carried out from 03/20/2023 to 05/11/2023 using scientific literature databases: NCBI PubMed, Google Scholar (foreign sources), Cyberleninka, Elibrary (domestic sources): references for the period 1995-2023 were analyzed. The following keywords were used for the search: leptin, endometrial dysfunction, endometrial receptivity, inflammation, pelvic inflammatory disease.

Введение

Лептин представляет собой полипептидный гормон длинной 16 кДа, кодирующийся геном LEP и в большинстве случаев продуцируемый в жировой ткани. Главная роль лептина в организме — регуляция энергетического баланса через влияние на клеточный метаболизм и аппетит [1][2]. Рецепторы к лептину по строению гомологичны первому классу семейства цитокиновых рецепторов [3]. Существует 6 изоформ рецептора к лептину [4], но непосредственно сигнальную функцию выполняет длинная изоформа OBR1 [3], которая экспрессируется в гипоталамусе [5], а также в периферических органах и тканях [5][6]. Так, например, OBR экспрессируется на адипоцитах, иммунных клетках, в тканях яичника и эндометрия [7].

Помимо регуляции энергетического гомеостаза, лептин необходим для инициации пубертатного периода и оказывает влияние на функционирование гипоталамо-гипофизарно-яичниковой системы [8]. При этом лептин воздействует на органы и ткани не только через центральные механизмы, но и напрямую, участвуя в регуляции метаболизма, репродуктивной функции и гемопоэза [9–11]. Так, например, в жировой ткани лептин стимулирует окисление липидов и регулирует клеточный гомеостаз триглицеридов [12]. В яичниках прямое воздействие лептина стимулирует выработку стероидных гормонов, а присутствие лептина в эндометрии необходимо для нормальной реализации процессов имплантации [13][14]. Кроме того, лептин обеспечивает активность иммунной системы, стимулирует пролиферацию иммунных клеток, а также участвует в развитии воспаления [15–17].

В многочисленных исследованиях показана ассоциация уровня лептина с развитием различных хронических воспалительных заболеваний, в том числе аутоиммунных, а также с наличием заболеваний репродуктивной системы (синдром поликистозных яичников (СПКЯ), эндометриоз, хронический эндометрит), в патогенезе которых также играет роль воспаление [18–21].

Таким образом, лептин является гормоном, который играет важную роль не только в регуляции метаболизма, но также необходим для нормального функционирования иммунной системы и адекватного воспалительного ответа. Кроме того, лептин является активным участником регуляции репродуктивной функции, что позволяет предположить его роль в развитии патологии эндометрия. Целью настоящего литературного обзора явилось описать предполагаемые молекулярные механизмы влияния лептина на развитие патологии эндометрия.

Литературный поиск проводился в период с 20.03.2023 по 11.05.2023 с использованием баз научной литературы: NCBI PubMed, Google Scholar (зарубежные источники), Киберленинка, Elibrary (отечественные источники), анализировались литературные источники за период 1995–2023 гг. Для поиска использовались следующие ключевые слова: лептин, эндометриальная дисфункция, эндометриальная рецептивность, воспаление, воспалительные заболевания органов малого таза.

Нормальный уровень лептина у женщин репродуктивного возраста

Концентрация лептина в крови человека зависит не только от количества жировой ткани, но и от пола. Так, у женщин с нормальной массой тела (18,5 ≤ индекс массы тела (ИМТ)≤ 5 кг/м2) уровень лептина в сыворотке крови составляет 23,5±1,5 нг/мл с пределами колебаний 4,7–46 нг/мл, а у мужчин с нормальной массой тела — 9±0,83 нг/мл (2,65–20,7 нг/мл) [22]. Имеющиеся различия объясняются уровнем стероидных гормонов, так как эстрогены стимулируют секрецию лептина из жировой ткани, тогда как андрогены, наоборот ингибируют [23].

В течение менструального цикла концентрация лептина изменяется в пределах от 14,9 нг/мл в раннюю фолликулярную фазу до 20,4 нг/мл в середине лютеиновой фазы с максимальным уровнем в период пика лютеинизирующего гормона (ЛГ) 21,7 нг/мл [24][25]. Имеются исследования, указывающие на синхронизацию ночной концентрации лептина с пиками ЛГ у нормально менструирующих женщин [26][27], что совпадает с результатами исследований на животных. Так, сывороточная концентрация лептина, а также уровень его экспрессии в жировой ткани, повышается в период овуляции у самок крыс [28]. Данная синхронизация концентраций лептина, ЛГ и эстрадиола лучше всего устанавливается при определении в ночные часы, что, предположительно, подтверждает гипотезу о том, что лептин регулирует колебания уровней ЛГ и эстрадиола. Максимальный уровень концентрации лептина ассоциирован с пиками концентрации эстрадиола, прогестерона, тестостерона, ЛГ при овуляции и низкими концентрациями фолликулостимулирующего гормона (ФСГ) [27][29].

Таким образом, у женщин уровень лептина выше, чем у мужчин, и зависит от фазы менструального цикла. Кроме того, уровень лептина коррелирует с концентрациями ЛГ, эстрадиола, прогестерона и тестостерона, что подтверждает его влияние на регуляцию репродуктивной функции у женщин.

Физиологическое действие лептина на эндометрий

Впервые влияние лептина на репродуктивную функцию установили в исследованиях на мышах с делецией гена лептина (ob/ob), где выявили, что отсутствие продукции лептина обуславливало развитие у животных бесплодия, которое корректировалось введением экзогенного лептина [30]. Лептин может воздействовать на репродуктивную функцию через центральные механизмы (соматотропный релизинг-фактор) и периферические механизмы (прямое воздействие на яичники и эндометрий) [31].

Лептин и его рецепторы экспрессируются в клетках яичников и матки, при этом наибольшая экспрессия матричной рибонуклиеновой кислоты (мРНК) рецепторов к лептину обнаружена в яичниках [32], а именно в гранулезных клетках и в клетках теки [33], где они участвуют в стимуляции продукции стероидов клетками [13]. Так, лептин в низкой концентрации стимулирует, а в высокой концентрации ингибирует экспрессию ферментов, участвующих в синтезе прогестерона [34]. Также низкие дозы лептина стимулируют секрецию прогестерона, тогда как высокие концентрации, наоборот, ингибируют этот процесс [35]. Таким образом, через регуляцию выработки гормонов яичников лептин может оказывать влияние на функциональное состояние эндометрия.

Рецепторы к лептину экспрессируются непосредственно в эндометриальных клетках. Обнаружено, что снижение экспрессии данных рецепторов приводит к снижению фертильности [36] за счет их участия в регуляции процессов имплантации [37].

Уровень экспрессии лептина в эндометрии зависит от фазы менструального цикла. В исследовании эндометрия здоровых женщин репродуктивного возраста Kitawaki et al. (2000 г.) установили экспрессию рецептора к лептину, но не самого гена лептина в клетках слизистой оболочки матки. При этом наименьший уровень экспрессии лептиновых рецепторов регистрировали в середину секреторной фазы менструального цикла [36]. Однако в другом исследовании показано, что экспрессия лептина в эндометрии регистрируется только в стадию инвазии бластоцисты в эндометрий в преимплантационный период [38].

Kaplanoğlu et al. (2019 г.) провели in vitro исследование кокультивирования эмбриональных и эндометриальных клеток, по результатам которого обнаружили увеличение экспрессии рецепторов к лептину на поверхности эндометриальных клеток [39], что подтверждает необходимость присутствия лептина для реализации имплантации. В исследовании на мышах с недостаточностью лептина и бесплодием введение рекомбинантного лептина в течение восьми дней приводило к наступлению беременности. При этом беременность не наступала, если лептин прекращали вводить через 0,5–3,5 дня после спаривания, но регистрировалась, если лептин прекращали вводить через 6,5–14,5 дней после спаривания [40]. Исходя из того, что у мышей имплантация происходит на пятый день после спаривания, можно сделать вывод, что лептин необходим для этой стадии беременности [38]. Кроме того, к нарушению процессов имплантации приводило блокирование рецепторов к лептину на третий день беременности [41].

Дальнейшие исследования механизмов влияния лептина на процесс имплантации обнаружили, что лептин способен стимулировать пролиферацию и апоптоз эндометриальных эпителиальных клеток, влиять на эндометриальную рецептивность, иммунную систему матки и децидуализацию клеток эндометрия [42–44].

Так, Tanaka et al. (2008 г.) в исследовании in vitro на эндометриальных эпителиальных клетках установили, что инкубация клеточной культуры с лептином в концентрации, соответствующей физиологической норме, обуславливала пролиферацию эндометриальных клеток. Кроме того, лептин стимулировал экспрессию рецепторов к эстрогенам и прогестерону, а также функционального Fas-антигена, который является активатором клеточного апоптоза [42]. В эксперименте на человеческих эндометриальных клетках установили, что лептин влияет на децидуализацию стимулированных эпителиальных клеток эндометрия путем ингибирования секреции в них пролактина. Авторы предположили, что высокие концентрации лептина могут ингибировать апоптоз в ткани эндометрия, что в свою очередь будет тормозить децидуализацию ткани и может приводить к развитию бесплодия [43].

Yang et al. обнаружили, что лептин стимулирует экспрессию αv- и β3-интегрина в мышиных эпителиальных клетках матки, что обуславливает его действие на рецептивность эндометрия [44]. Стимулируя выработку β3-интегрина, лептин повышает адгезию бластоцисты к эндометрию [44]. Установлено, что в клетках эндометрия лептин дозозависимо стимулирует экспрессию β3-интегрина, а также матричной металлопротеиназы (MMP) 9, связывающегося с гепарином EGF-подобного фактора роста (HB-EGF) и интерлейкина (IL) 1β, остеопонтина и фактора ингибирования лейкемии (LIF), которые являются важными факторами рецептивности эндометрия [46].

Благодаря своим провоспалительным свойствам лептин также стимулирует экспрессию некоторых цитокинов: IL-6 и IL-8, регулирующего роста онкогена α (GROα), моноцитарного хемоаттрактантного белка 1 (MCP-1) и макрофагального воспалительного белка 3α (MIP3α) в эндометриальных эпителиальных и стромальных клетках [40]. Данные провоспалительные цитокины в свою очередь принимают участие в процессе имплантации эмбриона.

Таким образом, главной функцией лептина в эндометрии является регуляция процесса имплантации, которую лептин обеспечивает через влияние на факторы рецептивности эндометрия.

Влияние лептина на иммунный ответ и развитие воспаления

Так как для лептина установлена ассоциация с развитием заболеваний, в патогенезе которых участвует воспаление [16], в том числе заболевания репродуктивной системы [19], а также нарушение иммунного ответа [21], ниже нами представлены имеющие сведения о влиянии лептина на данные процессы.

Лептин обладает плейотропным действием на клетки иммунной системы. В моноцитах и макрофагах лептин стимулирует фагоцитарную активность, пролиферацию моноцитов, оксидативный стресс, хемотаксис и индуцирование провоспалительных цитокинов (фактор некроза опухоли α (TNF-α), IL-6, IL-12), приводящие к воспалительной инфильтрации [16]. В нейтрофилах лептин оказывает стимулирующее воздействие на выработку свободных радикалов, а также поддерживает секрецию IL-1β, внутриклеточной молекулы адгезии 1 (ICAM-1) и хемокинов, которые обеспечивают процесс хемотаксиса [17]. В эозинофилах и базофилах лептин является активатором хемотаксиса, выброса цитокинов и клеточного выживания [47]. В клетках натуральных киллерах данный адипокин активирует созревание, дифференцировку, активацию и цитотоксичность, а также секрецию IL-2, IL-12, фактора роста клеток киллеров и перфорина [48].

Лептин может действовать как провоспалительный цитокин благодаря структурной схожести с IL-6. В этом случае лептин повышает экспрессию TNF-α и IL-6 [49]. Провоспалительные цитокины в свою очередь также способны регулировать уровень лептина. В исследовании in vitro на клеточной линии мышиных адипоцитов 3T3-L1 установили, что TNF-α и IL-1β зависимо от дозы и времени снижали продукцию и секрецию лептина клетками [50]. Однако в другом исследовании TNF-α снижал экспрессию лептина в клетках 3T3-L1 и жировой ткани мышей, кроме того, уровень мРНК лептина была значимо ниже у мышей с недостаточностью TNF-α в сравнении с обычными мышами [51][52]. По результатам острого эксперимента установили, что IL-1β может индуцировать повышение уровня лептина в плазме и экспрессию его гена в жировой ткани [50][53], а также в клетках эндометрия. При этом в другом исследовании на клетках 3T3-L1 инкубация с IL-1β приводила к снижению экспрессии гена лептина [54].

В исследованиях на экспериментальных моделях животных было выявлено, что лептин оказывает стимулирующее действие на развитие аутореактивности. Так, у мышей ob/ob и мышей с делецией рецептора к лептину (db/db) наблюдали резистентность к развитию индуцированных аутоиммунных заболеваний [15][55]. При этом в животной модели спонтанной аутореактивности обнаружили, что у самок мышей с нормальной массой тела и сахарным диабетом первого типа (СД1) повышенный уровень лептина предшествовал развитию заболевания. Кроме того, внутрибрюшинное введение рекомбинантного лептина животным ускоряло аутоиммунную деструкцию β-клеток поджелудочной железы, продуцирующих инсулин, и значительно повышало продукцию интерферона γ (INFγ) в периферических Т-клетках. Эти результаты показывают, что лептин может способствовать провоспалительным клеточным ответам и непосредственно влиять на развитие аутоиммунных заболеваний [56].

Роль лептина в развитии аутоиммунной патологии также подтверждена в многочисленных клинических исследованиях. Так, повышение периферической секреции лептина у человека ассоциировано с развитием таких заболеваний, имеющих в своей основе аутоиммунные механизмы, как эндометриоз, неалкогольный гепатит, хроническое воспаление легких, гломерулонефрит, синдром Бехчета, болезнь Грейвса, СД1 и ревматоидный артрит [15]. Однако результаты исследования взаимосвязи уровня лептина и перечисленных заболеваний у людей крайне противоречивы. Во многих исследованиях указывается отсутствие повышения лептина у пациентов с хроническими воспалительными аутоиммунными заболеваниями [57][58]. Интересно, что снижение потребляемых калорий или голодание приводит к снижению симптомов воспаления при некоторых аутоиммунных состояниях [59]. Однако стоит отметить, что данные улучшения могут быть связаны не только со снижением уровня вырабатываемого лептина, но и с изменениями уровня других гормонов [15].

Таким образом, основная роль лептина в регуляции иммунной системы заключается в способности повышать активность иммунитета и клеточной пролиферации и снижать апоптоз клеток киллеров. Кроме того, лептин является провоспалительным цитокином, активно участвующим в развитии воспаления, а повышение его уровня ассоциировано с развитием аутоиммунных заболеваний.

Роль лептина в развитии воспалительных и пролиферативных заболеваний эндометрия

К настоящему моменту накоплено небольшое количество данных о роли лептина в патогенезе хронических воспалительных и гиперпластических заболеваний матки. В нашем исследовании мы установили, что у женщин с хроническим эндометритом наблюдаются более низкие концентрации сывороточного лептина. Однако это характерно для женщин без СПКЯ, тогда как у женщин с СПКЯ и хроническим эндометритом такой зависимости не прослеживается [19]. По данным Масякиной и соавт. (2015 г.), гиперлептинемия может являться фактором развития миомы матки, аденомиоза и гиперплазии эндометрия [60].

Наибольшее количество исследований, направленных на установление роли лептина в развитии воспалительных и гиперпластических заболеваний матки, связаны с изучением уровня данного гормона у пациенток с различными формами эндометриоза. Matarese et al. (2000 г.) выявили повышенный уровень лептина в сыворотке крови и в перитонеальной жидкости у женщин с эндометриозом органов малого таза по сравнению со здоровыми женщинами [21]. Также показано, что уровень лептина в перитонеальной жидкости коррелирует со стадией эндометриоза и ассоциированной с ним болью [61]. Кроме того, высокий уровень лептина наблюдается у женщин с эндометриозом, у которых могут наблюдаться проблемы с имплантацией [43].

При исследовании эктопической эндометриальной ткани выявили повышенную экспрессию лептина в ее клетках [62]. Кроме того, в исследовании с участием бесплодных женщин с эндометриомой яичника установили, что экспрессия рецептора к лептину была выше в тканях яичника с эндометриомой у бесплодных пациенток по сравнению с экспрессией рецептора к лептину в тканях нормального яичника у здоровых женщин. Также у женщин с эндометриомой наблюдали положительную корреляцию между уровнем лептина и экспрессией рецептора к нему и высокую концентрацию лептина в содержимом эндометриомы [63]. В другом исследовании у женщин с эндометриозом установили более высокий уровень сывороточного лептина по сравнению со здоровыми женщинами, при этом не вывили статистически значимых различий концентрации лептина в перитонеальной жидкости. Однако у женщин с эндометриомой яичника наблюдали более низкие значения сывороточного и перитонеального лептина в сравнении с пациентками без эндометриомы [64].

Таким образом, к настоящему моменту данные о роли лептина в развитии гиперпластических и воспалительных заболеваний матки фрагментарны и противоречивы, что может быть обусловлено как использованием различных дизайнов и методов выявления такой зависимости, так и сложностью установления механизмов влияния лептина на развитие рассматриваемой патологии.

Возможные механизмы нарушения функционирования эндометрия, обусловленные действием лептина

В регуляции функциональной активности эндометрия ключевую роль играют маточные натуральные киллеры (uNK), которые обеспечивают процессы ангиогенеза и децидуализации в ткани эндометрия, тем самым способствуя имплантации эмбриона и нормальному течению беременности. Giuliani et al. (2014 г.) выявили, что у женщин c привычным невынашиванием беременности и бесплодием с неустановленной причиной (в том числе у женщин с эндометриозом) наблюдается повышенное содержание в эндометрии цитотоксичных uNK [65].

В норме uNK вырабатывают васкулярно-эндотелиальные факторы роста (VEGF) A и С, являющиеся главным активатором ангиогенеза в эндометрии. Кроме того, uNK вырабатывают такие провоспалительные цитокины, как IFN-γ и TNF-α, которые также способствуют ремоделированию эндометрия [66–68].

Perdu et al. (2016 г.) установили, что у женщин с ожирением по сравнению со здоровыми женщинами с нормальной массой тела наблюдается значимое снижение количества uNK в эндометрии. При этом в uNK, выделенных от женщин с ожирением, обнаружили повышенную экспрессию различных белков, связывающих инсулиноподобный фактор роста (IGFBPs) и тканевого ингибитора металлопротеиназ (TIMP), а также матричных металлопротеиназ (MMPs), которые ингибируют процессы развития трофобласта и ремоделирования сосудов [69]. Однако авторы не установили механизм снижения количества uNK в матке женщин с ожирением. Одним из возможных механизмов может быть влияние повышенной концентрации лептина, которая наблюдается при ожирении, так как лептин способен увеличивать экспрессию MMPs. Так, лептин опосредовано стимулирует экспрессию MMP-2 и 9, которые принимают активное участие в имплантации [70]. Кроме того, в NK лептин активирует созревание, дифференцировку, активацию и цитотоксичность, а также секрецию IL-2, IL-12, фактора роста клеток киллеров и перфорина [48]. Однако на настоящий момент отсутствуют данные о проявлении данных свойств лептина непосредственно на uNK.

Wu et al. (2007 г.) установили, что аномальная экспрессия лептина в эктопических эндометриальных клетках может возникать вследствие пролонгированного гипоксического стресса в перитонеальной полости под действием фактора, индуцированного гипоксией 1α (HIF-1α), который активирует промотор гена лептина [71]. Кроме того, HIF-1α стимулирует индуцированный гипоксией ангиогенез через активацию VEGF [72]. Установлено, что лептин коэкспрессируется с VEGF и стимулирует необходимые ангиогенные факторы, которые в дальнейшем повышают экспрессию VEGF. Так лептин обеспечивает процессы неоваскуляризации и модулирует ангиогенную активность VEGF в этих тканях [73][74]. Стоит отметить, что оптимальный уровень VEGFA необходим для регуляции эндометриальной рецептивности [75]. Роль лептина в развитии эндометриоза может быть объяснена его ангиогенными свойствами, однако описанные выше исследования проводились на эндотелиальных клетках сосудов, но не на клетках эндометрия.

Эндометриоз считается воспалительным заболеванием, при развитии которого наблюдают повышение уровней IL-6, IL-8, TNF-α в перитонеальной жидкости и в сыворотке крови пациенток [76][77]. Повышенная концентрация провоспалительных цитокинов наблюдается также в эндометриальной ткани женщин, страдающих хроническим эндометритом [78][79]. Наличие данных изменений может быть связано с повышенным уровнем лептина у таких пациенток, который обуславливает избыточную экспрессию и секрецию данных цитокинов [49].

Установлено, что индукцию HIF-1α в эндометриальных эпителиальных клетках может вызывать комбинация таких провоспалительных факторов, как IL-1β, TNFα и липополисахариды (ЛПС), которые принимают активное участие в патогенезе хронического эндометрита [80]. В свою очередь лептин обладает провоспалительными свойствами и повышает секрецию TNF-α, IL-6 и IL-12 [49]. Исходя из данных, что рецепторы к лептину экспрессируются в клетках эндометрия [7] и участвуют в процессе имплантации [38], в том числе за счет модулирования экспрессии провоспалительных цитокинов [46], можно предположить, что лептин способен участвовать в патогенезе развития хронического эндометрита. К настоящему моменту отсутствуют исследования, напрямую указывающие на наличие такого механизма. Предположительная схема патогенетического действия повышенного уровня лептина на рецептивность эндометрия представлена на рисунке 1.

graphic file with name problendo-70-13397-g001.jpg

Рисунок 1. Предположительный механизм влияния повышенной концентрации лептина на рецептивность эндометрия у женщин с воспалительными и гиперплазивными заболеваниями матки.

Примечание: IL-1β — интерлейкин 1β; TNFα — фактор некроза опухоли α; uNK-клетки — маточные натуральные киллеры; MMP2 — металлопротеиназа 2; MMP9 — металлопротеиназа 9; пунктирными стрелками показаны предположительные пути воздействия лептина на клетки и ткани слизистой оболочки матки.

В нашем предыдущем исследовании мы установили, что у женщин более низкая сывороточная концентрация лептина являлась протективным фактором по отношению к развитию хронического эндометрита. Однако мы не проводили исследований по установлению молекулярных механизмов выявленной зависимости [19].

Таким образом, в нарушении функции эндометрия при гиперпластических и воспалительных заболеваниях эндометрия принимают участие большое количество различных иммунных, ангиогенных и провоспалительных факторов, дисрегуляция которых может быть обусловлена различными механизмами, в том числе аномальной экспрессией, продукцией и активностью лептина. Однако в большинстве исследований прямая роль лептина в регуляции данных факторов установлена для клеток и тканей, находящихся за пределами матки, что требует проведения дополнительных исследований.

Заключение

Лептин представляет собой гормон жировой ткани, основной функцией которого является регуляция энергетического обмена и пищевого поведения. При этом за последние десятилетия накоплены данные об его активном участии в регуляции других функций организма, в том числе репродуктивной. Рецепторы к лептину и сам лептин активно экспрессируются в тканях яичника и эндометрия [32][33], оказывая влияние на выработку стероидных гормонов [13], овуляцию и рецептивность эндометрия [14].

Нормальный уровень лептина в организме женщины зависит не только от количества жировой ткани, но и от стадии менструального цикла, что указывает на зависимость продукции лептина от уровня гипофизарных и половых гормонов [24][25]. Показано, что уровень лептина в сыворотке крови коррелирует с сывороточными концентрациями эстрадиола, прогестерона, тестостерона и ЛГ [26][27].

Уровень лептина и его рецептора в эндометрии также зависит от стадии менструального цикла [36], а его адекватная экспрессия обуславливает процесс имплантации эмбриона [38] в результате регуляции пролиферации, апоптоза и децидуализации эндометриальных клеток, а также участия в функционировании иммунной системы матки [42–44].

В многочисленных исследованиях показана ассоциация уровня лептина с развитием различных хронических воспалительных заболеваний [15], в том числе заболеваний органов малого таза (хронический эндометрит, эндометриоз) [19][21]. Это может быть обусловлено тем, что лептин за счет сродства к IL-6 обладает провоспалительными свойствами [49], а также является активным стимулятором функции лейкоцитов, в том числе натуральных киллеров [16][48].

Известно, что в регуляции функциональной активности эндометрия и имплантации эмбриона ключевую роль играют uNK. У женщин с ожирением наблюдают сниженное количество uNK в эндометрии. При этом данные клетки обладают повышенной цитотоксичностью [65]. Одним из механизмов развития данного состояния может быть повышенный уровень лептина, наблюдающийся при ожирении. В результате может происходить дисрегуляция таких важных факторов имплантации как MMPs, IGFBPs и VEGF, которые обеспечивают процессы децидуализации и неоваскуляризации эндометрия [70][73][74] а также гиперпродукция провоспалительных цитокинов IL-6, IL-12, TNF-α [49].

Несмотря на установленную роль лептина в регуляции процесса имплантации, к настоящему моменту отсутствуют исследования, подтверждающие патогенетическое значение изменений экспрессии и продукции лептина и его рецептора в развитии воспалительных и гиперпластических заболеваний эндометрия. В большинстве исследований установлена ассоциация изменения уровня лептина с наличием заболевания, но не механизмы его воздействия на развитие патологии [19][21][60]. Кроме того, отсутствуют данные о роли лептина в функционировании uNK, а также экспрессии VEGF и провоспалительных цитокинов непосредственно в эндометрии как здоровых женщин, так и женщин с воспалительными и гиперпластическими заболеваниями матки.

Таким образом, согласно имеющимся данным лептин является активным участником регуляции репродуктивной функции у женщин за счет его роли в реализации процесса имплантации эмбриона. Несмотря на установленную ассоциацию уровня лептина с наличием воспалительных и гиперпластических заболеваний эндометрия, на настоящий момент отсутствуют данные о его патогенетической роли в развитии данной патологии. Это обуславливает необходимость проведения дополнительных исследований, направленных на установление роли лептина в регуляции факторов рецептивности эндометрия как в норме, так и при патологических состояниях.

Дополнительная информация

Источники финансирования. Работа выполнена в рамках государственной бюджетной темы №121022500180-6 «Патофизиологические механизмы и генетико-метаболические предикторы сохранения репродуктивного здоровья и долголетия в различных возрастных, гендерных и этнических группах».

Конфликт интересов. Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.

Участие авторов. Иевлева К.Д. — концепция и написание рукописи; Данусевич И.Н. — концепция и редактирование рукописи; Сутурина Л.В. — концепция и редактирование рукописи. Все авторы одобрили финальную версию статьи перед публикацией, выразили согласие нести ответственность за все аспекты работы, подразумевающую надлежащее изучение и решение вопросов, связанных с точностью или добросовестностью любой части работы.

Biographies

Иевлева Ксения Дмитриевна - к.м.н.

664003, Иркутск, ул. Тимирязева, 16

Данусевич Ирина Николаевна - д.м.н.

Иркутск

Suturina Larisa Victorovna - professor, Doc. of Med. Sc.

Irkutsk

Footnotes

The authors declare that there are no conflicts of interest present.

Contributor Information

Иевлева К. Д., Email: asiy91@mail.ru.

Данусевич И. Н., Email: irinaemails@gmail.com.

Сутурина Л. В., Email: lsuturina@mail.ru.

References

  1. Kelesidis Theodore. Narrative Review: The Role of Leptin in Human Physiology: Emerging Clinical Applications. Annals of Internal Medicine. 2013 Apr;152(2):93. doi: 10.7326/0003-4819-152-2-201001190-00008. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
  2. Zhang Faming, Chen Yanyun, Heiman Mark, DiMarchi Richard. Leptin: Structure, Function and Biology. Vitamins & Hormones. 2005. Aug, pp. 345–372. [DOI] [PubMed]
  3. Tartaglia LA, Dembski M, Weng X, et al. Identification and expression cloning of a leptin receptor, OB-R. Cell. 1995;83:1263-1271. doi: https://doi.org/ 10.1016/0092-8674(95)90151-50 [DOI] [PubMed]
  4. Guan Xiao-Ming, Hess J.Fred, Yu Hong, Hey Patricia J, van der Ploeg Lex H.T. Differential expression of mRNA for leptin receptor isoforms in the rat brain. Molecular and Cellular Endocrinology. 2002 Jul;133(1):1–7. doi: 10.1016/s0303-7207(97)00138-x. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
  5. Ghilardi N, Ziegler S, Wiestner A, Stoffel R, Heim M H, Skoda R C. Defective STAT signaling by the leptin receptor in diabetic mice. Proceedings of the National Academy of Sciences. 2002 Jul;93(13):6231–6235. doi: 10.1073/pnas.93.13.6231. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
  6. Hoggard Nigel, Mercer Julian G., Rayner D.Vernon, Moar Kim, Trayhurn Paul, Williams Lynda M.. Localization of Leptin Receptor mRNA Splice Variants in Murine Peripheral Tissues by RT-PCR andin SituHybridization. Biochemical and Biophysical Research Communications. 2002 Oct;232(2):383–387. doi: 10.1006/bbrc.1997.6245. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
  7. LEPR leptin receptor [Internet]. National Library of Medicine. c2022 – [cited 16 May 2023]. Available from: https://www.ncbi.nlm.nih.gov/gene/3953
  8. Shalitin S, Phillip M. Role of obesity and leptin in the pubertal process and pubertal growth—a review. International Journal of Obesity. 2003 Jul;27(8):869–874. doi: 10.1038/sj.ijo.0802328. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
  9. Shimabukuro M, Ohneda M, Lee Y, Unger R H. Role of nitric oxide in obesity-induced beta cell disease. Journal of Clinical Investigation. 2008 Feb;100(2):290–295. doi: 10.1172/jci119534. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
  10. Mikhail AA, Beck EX, Shafer A, et al. Leptin stimulates fetal and adult erythroid and myeloid development. Blood. 1997;89(5):1507-12 [PubMed]
  11. Bjørbæk Christian, Uotani Shigeo, da Silva Barbara, Flier Jeffrey S.. Divergent Signaling Capacities of the Long and Short Isoforms of the Leptin Receptor. Journal of Biological Chemistry. 2002 Jul;272(51):32686–32695. doi: 10.1074/jbc.272.51.32686. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
  12. Reidy Shannon P, Weber Jean-Michel. Leptin: an essential regulator of lipid metabolism. Comparative Biochemistry and Physiology Part A: Molecular & Integrative Physiology. 2002 Jul;125(3):285–298. doi: 10.1016/s1095-6433(00)00159-8. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
  13. Hausman Gary J., Barb C. Richard, Lents Clay A.. Leptin and reproductive function. Biochimie. 2012 Mar;94(10):2075–2081. doi: 10.1016/j.biochi.2012.02.022. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
  14. González Rubén René, Caballero-Campo Pedro, Jasper Melinda, Mercader Amparo, Devoto Luigi, Pellicer Antonio, Simon Carlos. Leptin and Leptin Receptor Are Expressed in the Human Endometrium and Endometrial Leptin Secretion Is Regulated by the Human Blastocyst1 . The Journal of Clinical Endocrinology & Metabolism. 2014 Jan;85(12):4883–4888. doi: 10.1210/jcem.85.12.7060. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
  15. Cava Antonio La, Matarese Giuseppe. The weight of leptin in immunity. Nature Reviews Immunology. 2004 Apr;4(5):371–379. doi: 10.1038/nri1350. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
  16. Pérez-Pérez Antonio, Sánchez-Jiménez Flora, Vilariño-García Teresa, Sánchez-Margalet Víctor. Role of Leptin in Inflammation and Vice Versa. International Journal of Molecular Sciences. 2020 Aug;21(16):5887. doi: 10.3390/ijms21165887. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
  17. Zarkesh-Esfahani Hamid, Pockley Alan G., Wu Zida, Hellewell Paul G., Weetman Anthony P., Ross Richard J. M.. Leptin Indirectly Activates Human Neutrophils via Induction of TNF-α. The Journal of Immunology. 2014 Apr;172(3):1809–1814. doi: 10.4049/jimmunol.172.3.1809. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
  18. Ievleva K. D., Danusevich I. N., Suturina L. V.. Role of leptin and nuclear receptor PPARγ in PCOS pathogenesis. Problems of Endocrinology. 2021 Jan;66(6):74–80. doi: 10.14341/probl12620. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
  19. Sharifulin E. M., Igumnov I. A., Krusko O. V., Atalyan A. V., Suturina L. V.. Features of Chronic Endometritis in Women of Reproductive Age with Polycystic Ovary Syndrome. Acta Biomedica Scientifica (East Siberian Biomedical Journal) 2021 Jan;5(6):27–36. doi: 10.29413/abs.2020-5.6.3. [DOI] [Google Scholar]
  20. Peng Yuanyuan, Yang Hongyue, Song Jiahui, Feng Di, Na Zhijing, Jiang Hongyu, Meng Yaxin, Shi Bei, Li Da. Elevated Serum Leptin Levels as a Predictive Marker for Polycystic Ovary Syndrome. Frontiers in Endocrinology. 2022 Mar;13 doi: 10.3389/fendo.2022.845165. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
  21. Matarese Giuseppe, Alviggi Carlo, Sanna Veronica, Howard Jane K., Lord Graham M., Carravetta Carlo, Fontana Silvia, Lechler Robert I., Bloom Stephen R., De Placido Giuseppe. Increased Leptin Levels in Serum and Peritoneal Fluid of Patients with Pelvic Endometriosis1. The Journal of Clinical Endocrinology & Metabolism. 2014 Jan;85(7):2483–2487. doi: 10.1210/jcem.85.7.6703. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
  22. Isidori Andrea M., Strollo Felice, Morè Michele, Caprio Massimiliano, Aversa Antonio, Moretti Costanzo, Frajese Gaetano, Riondino Giuseppe, Fabbri Andrea. Leptin and Aging: Correlation with Endocrine Changes in Male and Female Healthy Adult Populations of Different Body Weights. The Journal of Clinical Endocrinology & Metabolism. 2014 Jan;85(5):1954–1962. doi: 10.1210/jcem.85.5.6572. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
  23. Wauters M, Considine RV, Van Gaal LF. Human leptin: from an adipocyte hormone to an endocrine mediator. European Journal of Endocrinology. 2005 Jan;143(3):293–311. doi: 10.1530/eje.0.1430293. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
  24. Riad-Gabriel M., Jinagouda S., Sharma A, Boyadjian R, Saad M.. Changes in plasma leptin during the menstrual cycle. European Journal of Endocrinology. 2005 Jan;139(5):528–531. doi: 10.1530/eje.0.1390528. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
  25. Ahrens Katherine, Mumford Sunni L., Schliep Karen C., Kissell Kerri A., Perkins Neil J., Wactawski-Wende Jean, Schisterman Enrique F.. Serum leptin levels and reproductive function during the menstrual cycle. American Journal of Obstetrics and Gynecology. 2013 Nov;210(3):248.e1–248.e9. doi: 10.1016/j.ajog.2013.11.009. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
  26. Licinio Julio, Negrão André B., Mantzoros Christos, Kaklamani Virginia, Wong Ma-Li, Bongiorno Peter B., Mulla Abeda, Cearnal Laura, Veldhuis Johannes D., Flier Jeffrey S., McCann Samuel M., Gold Philip W.. Synchronicity of frequently sampled, 24-h concentrations of circulating leptin, luteinizing hormone, and estradiol in healthy women. Proceedings of the National Academy of Sciences. 2002 Jul;95(5):2541–2546. doi: 10.1073/pnas.95.5.2541. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
  27. Sir-Petermann T., Piwonka V., Pérez F., Maliqueo M., Recabarren S.E., Wildt L.. Are circulating leptin and luteinizing hormone synchronized in patients with polycystic ovary syndrome? Human Reproduction. 2002 Jul;14(6):1435–1439. doi: 10.1093/humrep/14.6.1435. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
  28. Fungfuang Wirasak, Nakada Tomoaki, Nakao Nobuhiro, Terada Misao, Yokosuka Makoto, Gizurarson Sveinbjorn, Hau Jann, Moon Changjong, Saito Toru R.. Serum leptin concentrations, leptin mRNA expression, and food intake during the estrous cycle in rats. Laboratory Animal Research. 2013 Apr;29(1):1. doi: 10.5625/lar.2013.29.1.1. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
  29. Licinio Julio, Negrão André B., Mantzoros Christos, Kaklamani Virginia, Wong Ma-Li, Bongiorno Peter B., Mulla Abeda, Cearnal Laura, Veldhuis Johannes D., Flier Jeffrey S., McCann Samuel M., Gold Philip W.. Synchronicity of frequently sampled, 24-h concentrations of circulating leptin, luteinizing hormone, and estradiol in healthy women. Proceedings of the National Academy of Sciences. 2002 Jul;95(5):2541–2546. doi: 10.1073/pnas.95.5.2541. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
  30. Zhao Y, Kreger DO, Brannian JD. Leptin concentrations in serum and follicular fluid during gonadotropin stimulation cycles. J Soc Gynecol Invest. 1998;5Sl:50A [PubMed]
  31. Childs Gwen V, Odle Angela K, MacNicol Melanie C, MacNicol Angus M. The Importance of Leptin to Reproduction. Endocrinology. 2020 Nov;162(2) doi: 10.1210/endocr/bqaa204. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
  32. Cioffi Joseph A., Shafer Alan W., Zupancic Thomas J., Smith-Gbur Julie, Mikhail Adel, Platika Doros, Snodgrass H. Ralph. Novel B219/OB receptor isoforms: Possible role of leptin in hematopoiesis and reproduction. Nature Medicine. 2004 Aug;2(5):585–589. doi: 10.1038/nm0596-585. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
  33. Karlsson Cecilia, Lindell Kajsa, Svensson Eva, Bergh Christina, Lind Peter, Billig Håkan, Carlsson Lena M. S., Carlsson Björn. Expression of Functional Leptin Receptors in the Human Ovary1. The Journal of Clinical Endocrinology & Metabolism. 2014 Jan;82(12):4144–4148. doi: 10.1210/jcem.82.12.4446. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
  34. Bilbao MG, Di Yorio MP, Faletti AG. Different levels of leptin regulate different target enzymes involved in progesterone synthesis. Fertil. Steril. 2013;99:1460-1466. doi: https://doi.org/ 10.1016/j.fertnstert.2012.12.01 [DOI] [PubMed]
  35. Galvão António, Tramontano Angela, Rebordão Maria Rosa, Amaral Ana, Bravo Pedro Pinto, Szóstek Anna, Skarzynski Dariusz, Mollo Antonio, Ferreira-Dias Graça. Opposing Roles of Leptin and Ghrelin in the Equine Corpus Luteum Regulation: AnIn VitroStudy. Mediators of Inflammation. 2014 Jul;2014:1–13. doi: 10.1155/2014/682193. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
  36. Kitawaki Jo, Koshiba Hisato, Ishihara Hiroaki, Kusuki Izumi, Tsukamoto Katsumi, Honjo Hideo. Expression of Leptin Receptor in Human Endometrium and Fluctuation during the Menstrual Cycle. The Journal of Clinical Endocrinology & Metabolism. 2014 Jan;85(5):1946–1950. doi: 10.1210/jcem.85.5.6567. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
  37. González Rubén René, Caballero-Campo Pedro, Jasper Melinda, Mercader Amparo, Devoto Luigi, Pellicer Antonio, Simon Carlos. Leptin and Leptin Receptor Are Expressed in the Human Endometrium and Endometrial Leptin Secretion Is Regulated by the Human Blastocyst1 . The Journal of Clinical Endocrinology & Metabolism. 2014 Jan;85(12):4883–4888. doi: 10.1210/jcem.85.12.7060. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
  38. Cervero Ana, Horcajadas José Antonio, MartÍn Julio, Pellicer Antonio, Simón Carlos. The Leptin System during Human Endometrial Receptivity and Preimplantation Development. The Journal of Clinical Endocrinology & Metabolism. 2004 May;89(5):2442–2451. doi: 10.1210/jc.2003-032127. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
  39. KAPLANOĞLU İSKENDER, KAPLANOĞLU GÜLNÜR TAKE, ÇINAR ÖZGÜR, GÖKTAŞ GÜLESER, DİLBAZ SERDAR, SEYMEN CEMİLE MERVE. Is leptin receptor expression triggered in case of embryo transfer to endometrium co-culture? TURKISH JOURNAL OF MEDICAL SCIENCES. 2019. Mar, [DOI] [PMC free article] [PubMed]
  40. Malik N. M., Carter N. D., Murray J. F., Scaramuzzi R. J., Wilson C. A., Stock M. J.. Leptin Requirement for Conception, Implantation, and Gestation in the Mouse. Endocrinology. 2014 Jan;142(12):5198–5202. doi: 10.1210/endo.142.12.8535. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
  41. Ramos M. P., Rueda B. R., Leavis P. C., Gonzalez R. R.. Leptin Serves as an Upstream Activator of an Obligatory Signaling Cascade in the Embryo-Implantation Process. Endocrinology. 2004 Nov;146(2):694–701. doi: 10.1210/en.2004-1186. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
  42. TanakaLeptin regulates the proliferation and apoptosis of human endometrial epithelial cells. International Journal of Molecular Medicine. 2008. Oct, [DOI] [PubMed]
  43. Tanaka Tetsuji, Utsunomiya Tomoko, Bai Tao, Nakajima Satoko, Umesaki Naohiko. Leptin inhibits decidualization and enhances cell viability of normal human endometrial stromal cells. International Journal of Molecular Medicine. 2014. Mar, [DOI] [PubMed]
  44. Yang Yong-Jun, Cao Yu-Jing, Bo Shu-Min, Peng Sha, Liu Wei-Min, Duan En-Kui. Leptin-directed embryo implantation: Leptin regulates adhesion and outgrowth of mouse blastocysts and receptivity of endometrial epithelial cells. Animal Reproduction Science. 2005 Jul;92(1-2):155–167. doi: 10.1016/j.anireprosci.2005.05.019. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
  45. Altmäe Signe, Reimand Jüri, Hovatta Outi, Zhang Pu, Kere Juha, Laisk Triin, Saare Merli, Peters Maire, Vilo Jaak, Stavreus-Evers Anneli, Salumets Andres. Research Resource: Interactome of Human Embryo Implantation: Identification of Gene Expression Pathways, Regulation, and Integrated Regulatory Networks. Molecular Endocrinology. 2011 Nov;26(1):203–217. doi: 10.1210/me.2011-1196. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
  46. Fukuda Junichiro, Nasu Kaei, Sun Bing, Shang Sujie, Kawano Yasushi, Miyakawa Isao. Effects of leptin on the production of cytokines by cultured human endometrial stromal and epithelial cells. Fertility and Sterility. 2003 Sep;80:783–787. doi: 10.1016/s0015-0282(03)00776-3. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
  47. CONUS S, BRUNO A, SIMON H. Leptin is an eosinophil survival factor. Journal of Allergy and Clinical Immunology. 2005 Oct;116(6):1228–1234. doi: 10.1016/j.jaci.2005.09.003. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
  48. Zhao Yueran, Sun Rui, You Li, Gao Chunyi, Tian Zhigang. Expression of leptin receptors and response to leptin stimulation of human natural killer cell lines. Biochemical and Biophysical Research Communications. 2003 Feb;300(2):247–252. doi: 10.1016/s0006-291x(02)02838-3. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
  49. La Cava Antonio. Leptin in inflammation and autoimmunity. Cytokine. 2017 Aug;98:51–58. doi: 10.1016/j.cyto.2016.10.011. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
  50. Bruun Jens M, Pedersen Steen B, Kristensen Kurt, Richelsen Bjørn. Effects of pro-inflammatory cytokines and chemokines on leptin production in human adipose tissue in vitro. Molecular and Cellular Endocrinology. 2002 Oct;190(1-2):91–99. doi: 10.1016/s0303-7207(02)00007-2. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
  51. Kirchgessner TG, Uysal KT, Wiesbrock SM, et al. Tumor necrosis factor-alpha contributes to obesity-related hyperleptinemia by regulating leptin release from adipocytes. J Clin Invest. 1997;100:2777-2782. doi: https://doi.org/ 10.1172/JCI11982 [DOI] [PMC free article] [PubMed]
  52. Langhans W., Hrupka B.. Interleukins and tumor necrosis factor as inhibitors of food intake. Neuropeptides. 2002 Jul;33(5):415–424. doi: 10.1054/npep.1999.0048. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
  53. Grunfeld C, Zhao C, Fuller J, Pollack A, Moser A, Friedman J, Feingold K R. Endotoxin and cytokines induce expression of leptin, the ob gene product, in hamsters. Journal of Clinical Investigation. 2008 Feb;97(9):2152–2157. doi: 10.1172/jci118653. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
  54. Granowitz Eric V.. Transforming Growth Factor-β Enhances and Pro-inflammatory Cytokines Inhibit OB Gene Expression in 3T3-L1 Adipocytes. Biochemical and Biophysical Research Communications. 2002 Sep;240(2):382–385. doi: 10.1006/bbrc.1997.7663. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
  55. Busso Nathalie, So Alexander, Chobaz-Péclat Véronique, Morard Carole, Martinez-Soria Eduardo, Talabot-Ayer Dominique, Gabay Cem. Leptin Signaling Deficiency Impairs Humoral and Cellular Immune Responses and Attenuates Experimental Arthritis. The Journal of Immunology. 2014 Apr;168(2):875–882. doi: 10.4049/jimmunol.168.2.875. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
  56. Matarese Giuseppe, Sanna Veronica, Lechler Robert I., Sarvetnick Nora, Fontana Silvia, Zappacosta Serafino, La Cava Antonio. Leptin Accelerates Autoimmune Diabetes in Female NOD Mice. Diabetes. 2007 Mar;51(5):1356–1361. doi: 10.2337/diabetes.51.5.1356. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
  57. Hoppin Alison G., Kaplan Lee M., Zurakowski David, Leichtner Alan M., Bousvaros Athos. Serum Leptin in Children and Young Adults with Inflammatory Bowel Disease. Journal of Pediatric Gastroenterology &amp Nutrition. 2003 Apr;26(5):500–505. doi: 10.1097/00005176-199805000-00003. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
  58. TAKABATAKE NORIAKI, NAKAMURA HIDENORI, ABE SHUICHI, HINO TOSHIHIKO, SAITO HIROSHI, YUKI HIDEKI, KATO SHUICHI, TOMOIKE HITONOBU. Circulating Leptin in Patients with Chronic Obstructive Pulmonary Disease. American Journal of Respiratory and Critical Care Medicine. 2013 Apr;159(4):1215–1219. doi: 10.1164/ajrccm.159.4.9806134. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
  59. Beach RS, Gershwin ME, Hurley LS. Nutritional factors and autoimmunity. III. Zinc deprivation versus restricted food intake in MRL/1 mice – the distinction between interacting dietary influences. J Immunol. 1982;129(6):2686-2692 [PubMed]
  60. Masyakina A.V., Kudrina E.A. Diagnostika i lechenie dobrokachestvennykh giperplasticheskikh zabolevanii matki u zhenshchin s endrokrinno-obmennymi narusheniyami // Arkhiv akusherstva i ginekologii im. V.F. Snegireva. — 2015. — №March. — S. 20-24.
  61. Bedaiwy Mohamed A., Falcone Tommaso, Goldberg Jeffrey M., Sharma Rakesh K., Nelson David R., Agarwal Ashok. Peritoneal fluid leptin is associated with chronic pelvic pain but not infertility in endometriosis patients*. Human Reproduction. 2005 Nov;21(3):788–791. doi: 10.1093/humrep/dei376. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
  62. Wu M.-H.. Increased leptin expression in endometriosis cells is associated with endometrial stromal cell proliferation and leptin gene up-regulation. Molecular Human Reproduction. 2002 Jul;8(5):456–464. doi: 10.1093/molehr/8.5.456. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
  63. Zendron Carolina, Gonçalves Helder F, Cavalcante Fernanda S, Pereira Thiago RD, Evangelista Alessandra, Ramos Cristiane F, Oliveira Marco Aurelio P. Increased expression of the leptin receptor in human ovaries affected by endometrioma and detection of high levels of leptin in the ovarian endometriomal fluid. Journal of Ovarian Research. 2014 Jan;7(1):2. doi: 10.1186/1757-2215-7-2. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
  64. Gonçalves Helder F., Zendron Carolina, Cavalcante Fernanda S., Aiceles Verônica, Oliveira Marco Aurélio P., Manaia Jorge Henrique M., Babinski Márcio A., Ramos Cristiane F.. Leptin, its receptor and aromatase expression in deep infiltrating endometriosis. Journal of Ovarian Research. 2015 Aug;8(1) doi: 10.1186/s13048-015-0180-0. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
  65. Giuliani Emma, Parkin Kirstin L., Lessey Bruce A., Young Steven L., Fazleabas Asgerally T.. Characterization of Uterine NK Cells in Women with Infertility or Recurrent Pregnancy Loss and Associated Endometriosis. American Journal of Reproductive Immunology. 2014 May;72(3):262–269. doi: 10.1111/aji.12259. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
  66. Kim Minah, Park Hyeung Ju, Seol Jae Won, Jang Jeon Yeob, Cho Young‐Suk, Kim Kyu Rae, Choi Youngsok, Lydon John P., DeMayo Francesco J., Shibuya Masabumi, Ferrara Napoleone, Sung Hoon‐Ki, Nagy Andras, Alitalo Kari, Koh Gou Young. VEGF‐A regulated by progesterone governs uterine angiogenesis and vascular remodelling during pregnancy. EMBO Molecular Medicine. 2013 Jul;5(9):1415–1430. doi: 10.1002/emmm.201302618. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
  67. Xiong Shiqiu, Sharkey Andrew M., Kennedy Philippa R., Gardner Lucy, Farrell Lydia E., Chazara Olympe, Bauer Julien, Hiby Susan E., Colucci Francesco, Moffett Ashley. Maternal uterine NK cell–activating receptor KIR2DS1 enhances placentation. Journal of Clinical Investigation. 2013 Sep;123(10):4264–4272. doi: 10.1172/jci68991. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
  68. Kieckbusch Jens, Gaynor Louise M., Moffett Ashley, Colucci Francesco. MHC-dependent inhibition of uterine NK cells impedes fetal growth and decidual vascular remodelling. Nature Communications. 2014 Feb;5(1) doi: 10.1038/ncomms4359. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
  69. Perdu Sofie, Castellana Barbara, Kim Yoona, Chan Kathy, DeLuca Lauren, Beristain Alexander G.. Maternal obesity drives functional alterations in uterine NK cells. JCI Insight. 2016 Jul;1(11) doi: 10.1172/jci.insight.85560. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
  70. Olea-Flores Monserrat, Zuñiga-Eulogio Miriam, Tacuba-Saavedra Arvey, Bueno-Salgado Magdalena, Sánchez-Carvajal Andrea, Vargas-Santiago Yovani, Mendoza-Catalán Miguel A., Pérez Salazar Eduardo, García-Hernández Alejandra, Padilla-Benavides Teresita, Navarro-Tito Napoleón. Leptin Promotes Expression of EMT-Related Transcription Factors and Invasion in a Src and FAK-Dependent Pathway in MCF10A Mammary Epithelial Cells. Cells. 2019 Sep;8(10):1133. doi: 10.3390/cells8101133. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
  71. Wu Meng-Hsing, Chen Ko-Fan, Lin Shih-Chieh, Lgu Chun-Wun, Tsai Shaw-Jenq. Aberrant Expression of Leptin in Human Endometriotic Stromal Cells Is Induced by Elevated Levels of Hypoxia Inducible Factor-1α. The American Journal of Pathology. 2007 Jan;170(2):590–598. doi: 10.2353/ajpath.2007.060477. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
  72. Forsythe Jo A., Jiang Bing-Hua, Iyer Narayan V., Agani Faton, Leung Sandra W., Koos Robert D., Semenza Gregg L.. Activation of Vascular Endothelial Growth Factor Gene Transcription by Hypoxia-Inducible Factor 1. Molecular and Cellular Biology. 2015 Oct;16(9):4604–4613. doi: 10.1128/mcb.16.9.4604. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
  73. Nwadozi Emmanuel, Ng Andrew, Strömberg Anna, Liu Hsin-yi, Olsson Karl, Gustafsson Thomas, Haas Tara L.. Leptin is a physiological regulator of skeletal muscle angiogenesis and is locally produced by PDGFRα and PDGFRβ expressing perivascular cells. Angiogenesis. 2018 Aug;22(1):103–115. doi: 10.1007/s10456-018-9641-6. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
  74. Cao Renhai, Brakenhielm Ebba, Wahlestedt Claes, Thyberg Johan, Cao Yihai. Leptin induces vascular permeability and synergistically stimulates angiogenesis with FGF-2 and VEGF. Proceedings of the National Academy of Sciences. 2002 Jul;98(11):6390–6395. doi: 10.1073/pnas.101564798. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
  75. Guo Xi, Yi Hong, Li Tin Chiu, Wang Yu, Wang Huilin, Chen Xiaoyan. Role of Vascular Endothelial Growth Factor (VEGF) in Human Embryo Implantation: Clinical Implications. Biomolecules. 2021 Feb;11(2):253. doi: 10.3390/biom11020253. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
  76. Giudice Linda C, Kao Lee C. Endometriosis. The Lancet. 2004 Nov;364(9447):1789–1799. doi: 10.1016/s0140-6736(04)17403-5. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
  77. Halme J, Hammond MG, Hulka JF, et al. Retrograde menstruation in healthy women and in patients with endometriosis. Obstet Gynecol. 1984;64:151-154 [PubMed]
  78. Danusevich Irina, Lazareva Lyudmila, Nemchenko Uliana, Kolesnikova Lyubov. Endometrial Cytokines in Women with Reproductive Disorders. International Journal of Biomedicine. 2021 Dec;11(4):526–531. doi: 10.21103/article11(4)_oa20. [DOI] [Google Scholar]
  79. Danusevich Irina, Sharifulin Eldar, Nemchenko Uliana, Kolesnikova Lyubov. Features of the Immune System Functioning with Persistence of Infectious Agents in Women with Chronic Endometrial Inflammation and Reproductive Disorders. International Journal of Biomedicine. 2020 Dec;10(4):362–368. doi: 10.21103/article10(4)_oa6. [DOI] [Google Scholar]
  80. Hashimoto Yoshiko, Tsuzuki-Nakao Tomoko, Kida Naoko, Matsuo Yoshiyuki, Maruyama Tetsuo, Okada Hidetaka, Hirota Kiichi. Inflammatory Cytokine-Induced HIF-1 Activation Promotes Epithelial–Mesenchymal Transition in Endometrial Epithelial Cells. Biomedicines. 2023 Jan;11(1):210. doi: 10.3390/biomedicines11010210. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]

Articles from Problems of Endocrinology are provided here courtesy of Russian Association of Endocrinologists

RESOURCES