Skip to main content
Chinese Journal of Burns logoLink to Chinese Journal of Burns
. 2021 Jun 20;37(6):519–523. [Article in Chinese] doi: 10.3760/cma.j.cn501120-20210118-00025

严重烧创伤感染及其并发症的免疫新认识

New understanding on the immunity for severe infections and complications in burns and trauma

Yongming Yao 1,*, Yingyi Luan 1
PMCID: PMC11917321  PMID: 34139832

Abstract

The mechanisms of burn/trauma related infection are complicated, involving uncontrolled inflammation, immune disorder, coagulation abnormality, and pathophysiological changes of multiple systems or organs. Although active management of primary diseases, application of antibiotics, and organ support treatment are the basis for the management of burn/trauma related infection, immune modulation opens up a new direction for the intervention of burn/trauma related infection and the relevant complications. In-depth understanding of inflammation-immune response and its regulatory mechanisms, and exploring new early warning biomarkers and immune interventional strategies are of great significance for improving the level of treatment of clinical burn/trauma related infections and improving the prognosis of patients.

Keywords: Burns, Infection, Immunomodulation, Therapeutic uses, Complication


细菌性感染是严重烧创伤患者死亡的重要原因之一, 防治感染仍然是临床救治的关键所在。烧伤后皮肤屏障破坏和血液供应异常, 患者可能出现低血容量性休克和机体高代谢状态, 引起强烈的炎症反应, 其特征为多种炎症细胞因子、组胺、趋化因子、补体和自由基的大量产生与释放, 进而造成血管扩张和组织水肿。需要指出的是, 机体并非总是处于炎症激活状态, 抗炎反应和免疫抑制也是烧伤感染的重要特征, 表现为抗炎细胞因子的诱生和免疫细胞功能障碍, 可引发一系列严重并发症, 如脓毒症、脓毒性休克、弥散性血管内凝血、MODS, 甚至死亡。因此, 深入了解烧创伤后免疫紊乱过程及其调控机制, 明确特定免疫细胞在器官功能障碍中的作用, 将有助于调理炎症免疫反应, 恢复内环境稳定, 防止组织及器官的继发性损伤, 最终达到降低烧创伤患者伤残率和病死率的目的。

1. 烧创伤后炎症免疫反应及其调控机制

近年来, 尽管抗菌药物合理使用、早期积极液体复苏及集束化管理、器官功能辅助支持治疗等方面取得长足进步, 但脓毒症和脓毒性休克仍然是烧创伤感染导致重症患者死亡的主要原因, 病死率居高不下。烧创伤脓毒症的发病初期有大量促炎性细胞因子释放, 包括TNF-α、γ干扰素、IL-6等, 随着脓毒症病程进一步发展, 脓毒症后期免疫抑制特别是细胞免疫功能低下成为烧创伤脓毒症的显著特征。烧创伤应激状态下, 由于损伤或感染刺激造成中性粒细胞募集和迁移功能障碍、巨噬细胞表型分化及其调控异常、树突状细胞(DC)和T细胞免疫功能失调等[1-4]

免疫细胞死亡方式是目前细胞免疫功能障碍的研究热点, 包括细胞凋亡、铁死亡和焦亡等。自然杀伤细胞和自然杀伤T细胞在烧创伤感染后相继被激活, 诱导Ⅱ型干扰素和TNF-α合成, 自然杀伤细胞通过释放细胞毒性颗粒诱导细胞程序性死亡[5]。脂质过氧化可诱导T细胞铁死亡, 创伤后T细胞铁死亡与肾功能衰竭有关[6]。炎症小体是由细胞质传感器、细胞凋亡相关斑点样蛋白和前胱天蛋白酶1组成的三体复合物, 在感染或代谢应激时被激活, 通过活化胱天蛋白酶1, 引发促炎性细胞死亡, 即细胞焦亡;同时伴随特异性细胞因子IL-1β、IL-18或Ⅰ型干扰素的成熟和释放, 将危险信号从受损或死亡的细胞传播出去并调节免疫细胞特别是中性粒细胞的招募[7-8], 在调控固有免疫系统防御能力方面发挥重要作用。此外, 脓毒症时内质网应激与自噬反应均可调节细胞存活能力, 以应对烧创伤和感染打击, 共同维持细胞功能的稳态[9-12]。随着单细胞测序技术的应用, 烧创伤脓毒症时免疫细胞亚群、起源、分布及功能不断被阐明, 但不同细胞死亡方式之间的关联性和信号调节机制尚待进一步探索。

2. 烧创伤感染的新型生物标志物及其预警价值

严重烧创伤感染后, 尤其是脓毒症和脓毒性休克一旦被确定, 抗生素治疗每延迟1 h, 患者存活率将下降7.6%[13]。因此, 尽早明确脓毒症患者的感染原因和预后分层是临床治疗的关键。生物标志物, 如降钙素原、C反应蛋白(CRP)和IL-6, 是具有潜在诊断价值或预后评估的临床工具;但迄今为止, 还没有单一的生物标志物显示出足够的敏感性和特异性。鉴于脓毒症患者群体的异质性, 采用多种新型生物标志物有助于评估烧创伤脓毒症的动态变化和干预效果, 并最终改善患者治疗结局。

2.1. 基于脓毒症临床表型的预警价值

脓毒症是严重烧伤感染最常见和最严重的并发症之一。临床资料表明, 30%的烧伤患儿会并发脓毒症[14]。脓毒症具有复杂的临床和生物学特征, 这些特征以不同的组合聚集成不同的亚群或表型, 有学者通过分析住院6 h内出现脓毒症的20 189例患者资料, 得出与宿主反应模式和临床结局相关的4类脓毒症表型(α、β、γ及δ表型), 这些表型在人口统计学、实验室指标和器官功能障碍方面存在差异[9]。其中, γ和δ表型脓毒症的炎症和凝血相关分子含量较α和β表型脓毒症明显增加, δ表型脓毒症中凝血标志物水平明显高于其他表型脓毒症[15]。内皮功能障碍的一些标志分子(如细胞黏附分子1、E选择素)在γ表型脓毒症中表达最强, 血管细胞黏附分子在δ表型脓毒症中表达最强。肾损伤相关标志物在β和δ表型脓毒症中表达最强[15]。进一步研究显示, α表型脓毒症患者病死率最低, δ表型脓毒症患者ICU入住率较高且28、365 d病死率最高[15]。脓毒症的不同临床表型与宿主炎症免疫反应模式相关, 可预测脓毒症患者不同治疗结局。

新近有学者基于29种宿主mRNA的血液HostDxTM Sepsis测试将机器学习算法与床旁快速检测平台相结合, 30 min内即可快速诊断急性感染和脓毒症, 并预测疾病严重程度[16]。此测试应用快速多重PCR分析, 基于数字检测和独特转录物定量的NanoString® nCounter分析系统标准, 成功地标记区分病毒感染和细菌感染的7个基因亚群, 其中IFI27JUPLAX1在病毒感染中表达更高, HK3TNIP1GPAA1CTSB在细菌感染中表达更高[17]。在一项队列研究中, InSepTM测试预测的脓毒症患者30 d病死率的受试者操作特征曲线下面积平均值为0.88, 将实验室参数和/或临床评分包括乳酸水平和序贯器官衰竭评分的受试者操作特征曲线下面积提高了10%。因此, 通过不同的临床表型, 可以诊断或预测脓毒症, 并区分细菌还是病毒感染, 以确定最有可能受益于特定免疫调节策略的患者亚群。脓毒症是一种异质性综合征, 确定特定的临床表型可使脓毒症患者得到精准治疗和处置。

2.2. 人组织激肽释放酶结合蛋白

人组织激肽释放酶结合蛋白是一种内源性蛋白质, 可产生多种生物学效应, 包括促进血管扩张和抑制血管生成、炎症、氧化应激和凋亡。TNF-α通过激活内皮细胞表面的还原型烟酰胺腺嘌呤二核苷酸磷酸(NADPH)氧化酶促进氧自由基的产生。人组织激肽释放酶结合蛋白可抑制内皮细胞微小RNA(miRNA)-34a刺激内皮型NOS(eNOS)合成, eNOS通过一氧化氮降低细胞内超氧化物水平, 从而降低NADPH氧化酶活性[18]。临床资料证实, 脓毒症早期外周循环中人组织激肽释放酶结合蛋白生成减少, 并伴有抗凝血酶水平降低, IL-1、IL-1β、CRP水平升高, 而人组织激肽释放酶结合蛋白水平持续下降与脓毒症及脓毒性休克的严重程度或不良预后相关[19]。一项小儿烧伤脓毒症试验显示人组织激肽释放酶结合蛋白可影响内皮细胞凋亡过程[20]。人组织激肽释放酶结合蛋白通过其在血管生成、凋亡反应和氧化应激中的“双刃剑”效应, 避免脓毒症后血管和器官损伤, 可能有助于烧伤脓毒症的辅助诊断和严重程度评估。

2.3. 钙防卫蛋白

钙防卫蛋白是一种由钙粒蛋白A(S100A8)和钙粒蛋白B(S100A9)亚单位组成的异二聚体钙结合蛋白。钙防卫蛋白在细胞周期进程、增殖、分化和存活等过程中发挥重要作用, 并参与调节钙稳态、细胞骨架重建和细胞迁移, 抑制微生物生长。有研究评估了血清钙防卫蛋白水平在创伤脓毒症患者中的诊断价值, 得出钙防卫蛋白预测脓毒症的曲线下面积值高达0.901, 且具有高敏感度和特异度[21-22]。此外, 血清钙防卫蛋白水平增加与细菌感染有关, 其在鉴别脓毒症细菌感染方面的准确率高于降钙素原[23]。因此, 钙防卫蛋白也被确定为细菌感染的特异性标志物, 且其预测重症监护患者30 d病死率效果优于降钙素原, 但需要更多证据进一步明确钙防卫蛋白对创伤脓毒症患者的早期辅助诊断和抗感染治疗指导价值。

2.4. miRNA

近年来, 大量基础和临床观察证实, 多发伤、烧伤感染后循环miRNA-125a、miRNA-193b、miRNA-155、miRNA-143和miRNA-495可调节促炎性细胞因子和抗炎细胞因子的增加或减少[24-26], miRNA-193b和miRNA-125b可预测脓毒症患者28 d病死率[19]。有学者分析了30例多发伤患者入院后和伤后24 h内循环miRNA水平, 得出miRNA-125a和miRNA-374b水平明显降低者更容易发展为肺炎, 说明miRNA分析可以辅助筛查/预测创伤患者医院获得性感染风险[27]。此外, miRNA-125a和miRNA-374b水平降低可促进IL-10的mRNA表达, 通过免疫抑制增加患者对感染的易感性。一项多发伤的队列研究证实创伤后24 h患者IL-10 mRNA水平升高与菌血症的发生有关[27]。因此, 更好地了解细胞和病毒miRNA的作用机制, 以及它们与免疫和炎症级联反应的相互作用, 可为miRNA水平分析制订一个最佳的标准化策略, miRNA将有望指导烧创伤脓毒症患者的诊断、预后和治疗。

3. 烧创伤感染及其并发症的免疫调理新策略

烧伤创面的坏死组织为细菌提供了良好的培养基。创面是感染的主要来源, 积极及早处理创面(包括切痂、植皮、局部外用药物)是预防感染的关键, 充分有效地进行液体复苏、强有力的重要器官支持治疗均有助于防止严重并发症的发生与发展。例如, 大面积深度烧伤会导致局部血管阻塞, 而早期局部应用抑菌或杀菌制剂有一定预防作用。局部干细胞疗法可能促血管生成和发挥抗炎作用, 从而促进烧伤创面愈合, 通过降低炎症级联反应的严重程度, 以降低感染的风险。同时, 给予合理的营养支持和代谢调理, 对于烧伤感染的防治有重要意义。除了上述局部感染处理措施, 烧创伤感染后脓毒症等严重并发症的针对性免疫调理日益受到关注与重视。

3.1. 胸腺肽α1

胸腺肽α1于1972年首次被描述, 主要用于治疗一些免疫缺陷、恶性肿瘤和感染等疾病[25]。胸腺肽α1通过Toll样受体9识别病毒, 激活浆细胞样DC, 激活干扰素调节因子7和α/γ干扰素依赖性通路, 抵抗病毒感染;同时, 胸腺肽α1可活化巨噬细胞, 并增强巨噬细胞杀菌能力[28]。近年来, 胸腺肽α1逐渐被应用于脓毒症的临床治疗。据报道, 脓毒症患者采用胸腺肽α1治疗可缩短机械通气时间和住ICU时间, 降低脓毒症患者28 d病死率和老年患者院内病死率[29-30]。一项多中心随机对照试验中, 胸腺肽α1治疗组脓毒症患者28 d全因病死率较安慰剂对照组明显降低, 这项临床研究进一步证实胸腺肽α1可以有效地改善脓毒症患者的临床结局[31]。目前虽然胸腺肽α1已经应用于脓毒症的临床治疗, 但仍需要大样本、多中心临床研究进一步验证其在治疗脓毒症中的有效性。有关胸腺肽α1治疗脓毒症的使用剂量、时机、疗程及受益人群等重要临床问题亟待深入探讨和明确。

3.2. Ig

Ig可减轻感染患者内皮细胞损伤, 促进血小板计数升高, 改善患者出血倾向。然而, Ig静脉应用对免疫系统具有多样性作用, 在脓毒症和脓毒性休克治疗中的有效性一直存在争议。近年来, 多项大样本临床试验探讨了静脉注射Ig(IVIg)在脓毒症治疗中的作用, 但研究显示IVIgG治疗并不能降低脓毒症患者28 d病死率[32-33]。一项关于IVIgG和富含IgM的Ig复合制剂(IVIgGM)对脓毒症疗效的临床研究的荟萃分析中, 10项研究显示IVIgG治疗可以降低患者病死率[34], 7项研究显示IVIgGM也可以降低患者病死率[34], 但对高质量研究进行亚组分析证实IVIgG并不能降低患者病死率[34]。因此, 脓毒症患者采用IVIgG治疗效果不佳, 且IVIgGM治疗脓毒症的确切疗效仍需要高质量临床试验进行验证。

3.2. 抗程序性死亡配体1(PD-L1)/程序性死亡受体1(PD-1)抗体

烧创伤和感染诱发脓毒症可导致宿主免疫反应广泛激活和功能障碍。积极处理原发病、迅速识别感染并发症和有效抗生素治疗仍然是脓毒症早期处理的基础, 但新型免疫调理措施为脓毒症干预提供了新思路。近期, 一项Ⅰ期随机临床试验纳入绝对淋巴细胞计数≤1.1×109/L的脓毒症免疫低下患者24例, 给予高剂量抗PD-L1抗体治疗, 结果显示患者单核细胞人类白细胞抗原-DR表达明显上调, 并且这种增加可持续28 d以上, 证实了抗PD-L1抗体在脓毒症治疗应用中的安全性[35]。另一项多中心、随机临床研究, 对抗PD-1抗体及其对脓毒症免疫生物标志物的影响进行了安全性和药代动力学评估, 证明了抗PD-1抗体在脓毒症治疗中的安全性[36]。上述2项初步研究证实了抗PD-L1抗体和抗PD-1抗体在脓毒症免疫抑制患者中治疗的安全性, 但还需Ⅱ期和Ⅲ期临床试验进一步验证其安全性和有效性。

4. 问题与展望

严重烧创伤患者由于生理屏障的损伤, 大量坏死组织的存在, 免疫功能明显减弱, 容易发生感染, 若未得到及时有效的处理可进一步诱发脓毒症、脓毒性休克甚至死亡。在烧创伤感染及并发症的发病过程中, 机体并非总是处于失控炎症反应状态, 免疫功能受抑同样贯穿于感染的发生与发展进程。积极处理创面、早期液体复苏、合理应用抗菌药物、重要器官支持等措施已成为烧伤感染防治的基础, 替代疗法包括微生物治疗、光疗法、干细胞治疗和纳米技术等新方法、新手段亦不断开发应用。随着对烧创伤感染发病机制研究的逐渐深入, 针对脓毒症这种异质性综合征进行临床分型, 结合系统生物学整合研究策略, 从多个层次、不同水平深刻揭示烧创伤感染的炎症免疫紊乱本质及其网络效应, 明确新型预警生物标志物及其预后判断价值, 并结合特定临床表型和靶向分子, 探寻机体免疫功能精准调控新方案, 这对于降低严重烧创伤感染及其并发症的发生率和病死率具有重要意义。

Funding Statement

国家自然科学基金重点项目(81730057);国家自然科学基金面上项目(81873943);军事医学创新工程重点项目(18CXZ026、BLJ18J006)

Key Program of National Natural Science Foundation of China (81730057); General Program of National Natural Science Foundation of China (81873943); Military Medical Innovation Program of PLA (18CXZ026, BLJ18J006)

Footnotes

利益冲突  所有作者均声明不存在利益冲突

References

  • 1.Pundlik J, Perna R, Arenivas A. Mild TBI in interdisciplinary neurorehabilitation: treatment challenges and insights. NeuroRehabilitation. 2020;46(2):227–241. doi: 10.3233/NRE-192971. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
  • 2.Crouser ED, Parrillo JE, Martin GS, et al. Monocyte distribution width enhances early sepsis detection in the emergency department beyond SIRS and qSOFA. J Intensive Care. 2020;8:33. doi: 10.1186/s40560-020-00446-3. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
  • 3.Hashem HE, Abdel Halim RM, El Masry SA, et al. The utility of neutrophil CD64 and presepsin as diagnostic, prognostic, and monitoring biomarkers in neonatal sepsis. Int J Microbiol. 2020;2020:8814892. doi: 10.1155/2020/8814892. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
  • 4.Chaturvedi V, Marsh RA, Zoref-Lorenz A, et al. T-cell activation profiles distinguish hemophagocytic lymphohistiocytosis and early sepsis. Blood. 2021;137(17):2337–2346. doi: 10.1182/blood.2020009499. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
  • 5.Lelubre C, Vincent JL. Mechanisms and treatment of organ failure in sepsis. Nat Rev Nephrol. 2018;14(7):417–427. doi: 10.1038/s41581-018-0005-7. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
  • 6.Yang CX, Sun P, Deng MH, et al. Gasdermin D protects against noninfectious liver injury by regulating apoptosis and necroptosis. Cell Death Dis. 2019;10(7):481. doi: 10.1038/s41419-019-1719-6. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
  • 7.Del Campo JA, Gallego P, Grande L. Role of inflammatory response in liver diseases: therapeutic strategies. World J Hepatol. 2018;10(1):1–7. doi: 10.4254/wjh.v10.i1.1. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
  • 8.Latz E, Xiao TS, Stutz A. Activation and regulation of the inflammasomes. Nat Rev Immunol. 2013;13(6):397–411. doi: 10.1038/nri3452. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
  • 9.Stanojcic M, Chen P, Harrison RA, et al. Leukocyte infiltration and activation of the NLRP3 inflammasome in white adipose tissue following thermal injury. Crit Care Med. 2014;42(6):1357–1364. doi: 10.1097/CCM.0000000000000209. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
  • 10.Dubois V, Gheeraert C, Vankrunkelsven W, et al. Endoplasmic reticulum stress actively suppresses hepatic molecular identity in damaged liver. Mol Syst Biol. 2020;16(5):e9156. doi: 10.15252/msb.20199156. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
  • 11.Zhong JK, Tan Y, Lu JH, et al. Therapeutic contribution of melatonin to the treatment of septic cardiomyopathy: a novel mechanism linking Ripk3-modified mitochondrial performance and endoplasmic reticulum function. Redox Biol. 2019;26:101287. doi: 10.1016/j.redox.2019.101287. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
  • 12.Li M, Zhang Y, Wang JX. Endoplasmic reticulum stress regulates cell injury in lipopolysaccharide-induced nerve cells. J Int Med Res. 2020;48(9):300060520949762. doi: 10.1177/0300060520949762. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
  • 13.Vinaik R, Abdullahi A, Barayan D, et al. NLRP3 inflammasome activity is required for wound healing after burns. Transl Res. 2020;217:47–60. doi: 10.1016/j.trsl.2019.11.002. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
  • 14.Sheridan RL. Sepsis in pediatric burn patients. Pediatr Crit Care Med. 2005;6(3 Suppl):S112–119. doi: 10.1097/01.PCC.0000161577.27849.BE. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
  • 15.Seymour CW, Kennedy JN, Wang S, et al. Derivation, validation, and potential treatment implications of novel clinical phenotypes for sepsis. JAMA. 2019;321(20):2003–2017. doi: 10.1001/jama.2019.5791. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
  • 16.Ducharme J, Self WH, Osborn TM, et al. A multi-mRNA host-response molecular blood test for the diagnosis and prognosis of acute infections and sepsis: proceedings from a clinical advisory panel. J Pers Med. 2020;10(4):266. doi: 10.3390/jpm10040266. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
  • 17.Sweeney TE, Wong HR, Khatri P. Robust classification of bacterial and viral infections via integrated host gene expression diagnostics. Sci Transl Med. 2016;8(346):346r. doi: 10.1126/scitranslmed.aaf7165. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
  • 18.Mierzchała-Pasierb M, Lipińska-Gediga M. Sepsis diagnosis and monitoring-procalcitonin as standard, but what next? Anaesthesiol Intensive Ther. 2019;51(4):299–305. doi: 10.5114/ait.2019.88104. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
  • 19.Lin WC, Lu SL, Lin CF, et al. Plasma kallistatin levels in patients with severe community-acquired pneumonia. Crit Care. 2013;17(1):R27. doi: 10.1186/cc12507. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
  • 20.Dai YF, Zhao XF. Therapeutic effects of simvastatin combined with kallistatin treatment for pediatric burn patients with sepsis. Exp Ther Med. 2018;15(3):3080–3087. doi: 10.3892/etm.2018.5791. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
  • 21.Bartáková E, Štefan M, Stráníková A, et al. Calprotectin and calgranulin C serum levels in bacterial sepsis. Diagn Microbiol Infect Dis. 2019;93(3):219–226. doi: 10.1016/j.diagmicrobio.2018.10.006. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
  • 22.Ahmed AI, Soliman RA, Samir S. Cell free DNA and procalcitonin as early markers of complications in ICU patients with multiple trauma and major surgery. Clin Lab. 2016;62(12):2395–2404. doi: 10.7754/Clin.Lab.2016.160615. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
  • 23.Jonsson N, Nilsen T, Gille-Johnson P, et al. Calprotectin as an early biomarker of bacterial infections in critically ill patients: an exploratory cohort assessment. Crit Care Resusc. 2017;19(3):205–213. [PubMed] [Google Scholar]
  • 24.Sharma A, Chandran R, Barry ES, et al. Identification of serum microRNA signatures for diagnosis of mild traumatic brain injury in a closed head injury model. PLoS One. 2014;9(11):e112019. doi: 10.1371/journal.pone.0112019. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
  • 25.He FY, Zhang CJ, Huang QH. Long noncoding RNA nuclear enriched abundant transcript 1/miRNA-124 axis correlates with increased disease risk, elevated inflammation, deteriorative disease condition, and predicts decreased survival of sepsis. Medicine (Baltimore) 2019;98(32):e16470. doi: 10.1097/MD.0000000000016470. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
  • 26.Muñoz B, Suárez-Sánchez R, Hernández-Hernández O, et al. From traditional biochemical signals to molecular markers for detection of sepsis after burn injuries. Burns. 2019;45(1):16–31. doi: 10.1016/j.burns.2018.04.016. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
  • 27.Owen HC, Torrance HDT, Jones TF, et al. Epigenetic regulatory pathways involving microRNAs may modulate the host immune response following major trauma. J Trauma Acute Care Surg. 2015;79(5):766–772. doi: 10.1097/TA.0000000000000850. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
  • 28.Romani L, Bistoni F, Montagnoli C, et al. Thymosin alpha1: an endogenous regulator of inflammation, immunity, and tolerance. Ann N Y Acad Sci. 2007;1112:326–338. doi: 10.1196/annals.1415.002. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
  • 29.陈 江. 胸腺肽----α1对脓毒性休克患者细胞免疫功能的影响. 中国危重病急救医学. 2007;19(3):153–155. doi: 10.3760/j.issn:1003-0603.2007.03.008. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
  • 30.樊 举兵, 夏 明成, 滕 晓琨. 胸腺肽α1对老年脓毒血症患者免疫功能的影响. 医学分子生物学杂志. 2014;11(6):347–349. doi: 10.3870/j.issn.1672-8009.2014.06.007. [DOI] [Google Scholar]
  • 31.Wu JF, Zhou LX, Liu JY, et al. The efficacy of thymosin alpha 1 for severe sepsis (ETASS): a multicenter, single-blind, randomized and controlled trial. Crit Care. 2013;17(1):R8. doi: 10.1186/cc11932. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
  • 32.Werdan K, Pilz G, Müller-Werdan U, et al. Immunoglobulin G treatment of postcardiac surgery patients with score-identified severe systemic inflammatory response syndrome--the ESSICS study. Crit Care Med. 2008;36(3):716–723. doi: 10.1097/01.CCM.0B013E3181611F62F. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
  • 33.Laupland KB, Kirkpatrick AW, Delaney A. Polyclonal intravenous immunoglobulin for the treatment of severe sepsis and septic shock in critically ill adults: a systematic review and meta-analysis. Crit Care Med. 2007;35(12):2686–2692. [PubMed] [Google Scholar]
  • 34.Hentrich M, Fehnle K, Ostermann H, et al. IgMA-enriched immunoglobulin in neutropenic patients with sepsis syndrome and septic shock: a randomized, controlled, multiple-center trial. Crit Care Med. 2006;34(5):1319–1325. doi: 10.1097/01.CCM.0000215452.84291.C6. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
  • 35.Hotchkiss RS, Colston E, Yende S, et al. Immune checkpoint inhibition in sepsis: a Phase 1b randomized, placebo-controlled, single ascending dose study of antiprogrammed cell death-ligand 1 antibody (BMS-936559) Crit Care Med. 2019;47(5):632–642. doi: 10.1097/CCM.0000000000003685. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
  • 36.Hotchkiss RS, Colston E, Yende S, et al. Immune checkpoint inhibition in sepsis: a Phase 1b randomized study to evaluate the safety, tolerability, pharmacokinetics, and pharmacodynamics of nivolumab. Intensive Care Med. 2019;45(10):1360–1371. doi: 10.1007/s00134-019-05704-z. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]

Articles from Chinese Journal of Burns are provided here courtesy of Chinese Medical Association

RESOURCES