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. 2025 Aug 16;5(4):mtsi.v5i4.2025.733. [Article in French] doi: 10.48327/mtsi.v5i4.2025.733

Utilisation du matériel génétique extrait des tests de diagnostic rapide du paludisme en PCR lors du Grand Magal de Touba au Sénégal

Use of genetic material extracted from rapid malaria diagnostic tests using PCR during the Grand Magal of Touba in Senegal

Coumba DIOUF 1,2,3, Ihssane OUADDANE 2,3, Georges DIATTA 1, Mamadou Lamine Bara GOUMBALA 3, Abdourahmane SOW 4, Déguène FAM 4, Mbayang FAYE 4, Philippe GAUTRET 2,3, Cheikh SOKHNA 1,2,3,*
PMCID: PMC12948358  PMID: 41768944

Abstract

Introduction

The Grand Magal of Touba (GMT), a religious event, attracts between four and five million pilgrims and poses a significant risk of infectious disease transmission, including malaria. Rapid diagnostic tests (RDTs) are commonly used during the event. This study aimed to validate the use of genetic material extracted from RDTs for retrospective diagnostic testing by PCR.

Methods

Two types of RDTs were collected from eight health facilities in the Mbacke department in 2022 and 2023 during the GMT: Bioline™ Malaria Ag P.f/Pan (Abbott, USA) and ParaHIT® (Arkray, India) which detects Plasmodium falciparum. Real-time PCR (qPCR) was performed after opening the RDTs and extracting DNA/RNA to confirm the visual reading of the antigen tests. The performance of the collected RDTs was calculated relative to the PCR results, which were considered the reference standard.

Results

A total of 2,381 RDTs were collected, 213 of which (8.9%) were positive according to the test readings (135 according to Bioline™ tests, and 78 according to ParaHIT). According to qPCR, 194 samples (8.1%) were positive for P. falciparum. There were false positives in 39 (2.5%) Bioline™ Jests and 57 (7.2%) ParaHIT tests, as well as false negatives in 68 (4.3%) Bioline™ tests and 9 (1.1%) ParaHIT® tests. The Bioline™ and ParaHIT® tests were 97.3% and 92.5% specific, respectively. Their positive predictive values were 71.1% and 26.9%, respectively, and their negative predictive values were 95.3% and 98.7%, respectively.

Conclusion

Genetic material extracted from RDT cassettes can be used for subsequent PCR diagnosis with increased specificity and sensitivity.

Key Words: Malaria, RDT, sensitivity, specificity, Grand Magal of Touba, Mbacke, Touba, Senegal, Sub-Saharan Africa

Introduction

Le Grand Magal de Touba (GMT) est un événement religieux organisé par la communauté mouride, une confrérie musulmane du Sénégal, célébré le 18 Safar de chaque année selon le calendrier musulman. Il attire entre quatre et cinq millions de pèlerins et présente un risque de transmission de maladies infectieuses, dont la propagation peut être favorisée par la densité de population des participants et la surpopulation des sites les plus fréquentés [3]. Une étude menée de 2018 à 2021 au centre de santé de Mbacké pendant le GMT a montré que sur un total de 141 patients, 45 (31,9%) ont été testés positifs pour au moins un pathogène sanguin, dont 21,3% pour Plasmodium falciparum, 5,7% pour Borrelia spp. et 5% pour le virus de la dengue [1]. Dans une nouvelle étude, il nous a paru intéressant de vérifier s’il était possible d’utiliser le matériel génétique des tests de diagnostic rapide (TDR) pour confirmer a posteriori par PCR le résultat de la lecture initiale.

Méthode

Pour notre étude, deux types de TDR utilisés pour le diagnostic du paludisme ont été collectées dans huit structures sanitaires du département de Mbacké pendant cinq jours au cours du GMT: le ParaHIT® (Akray Healthcare, Inde) et le Bioline™ Malaria Ag P. f/Pan (Abbott, États-Unis), qui détectent uniquement la protéine HRP2 de P. falciparum. Les acides nucléiques (ADN/ARN) ont été extraits des TDR à l’aide de l’instrument KingFisher™ Flex pour effectuer des tests de PCR quantitative en temps réel ciblant l’ARNr 18S de P. falciparum. Tous les essais de PCR quantitative en temps réel ont été réalisés à l’aide d’un thermocycleur C1000 Touch™ (Bio-Rad, Hercules, CA, USA) en utilisant la trousse LightCycler® 480 Probes Master kit (Roche Diagnostics, France) conformément aux recommandations du fabricant. Des contrôles négatifs (mélange PCR) et positifs (ADN de souches bactériennes) ont été inclus dans chaque série. Un seuil de cycle (CT) 35 a été utilisé pour les résultats positifs après amplification. La sensibilité, la spécificité, la valeur prédictive positive (VPP) et la valeur prédictive négative (VPN) des TDR du paludisme ont été calculées par rapport à la PCR considérée comme test de référence.

Résultats

Nous avons collecté 2 381 TDR, dont 1 586 testés par Bioline™ Malaria Ag P. f/Pan et 795 par des tests ParaHIT®. Leur lecture a révélé 213 (8,95%) échantillons positifs (135 pour Bioline™ Malaria Ag P. f/Pan et 78 pour ParaHIT®). En qPCR, 194 (8,15%) étaient positifs (164 pour Bioline™ Malaria Ag P. f/Pan et 30 pour ParaHIT® pour P. falciparum) (Tableau I). Les TDR ParaHIT® sont plus sensibles que les Bioline™ Malaria Ag P. f/Pan, mais leur spécificité est légèrement plus faible. Bien que la VPN des deux tests reste correcte, leur VPP est faible, voire médiocre pour le TDR ParaHIT® (Tableau I).

Tableau I.

Sensibilité, spécificité, valeur prédictive positive et valeur prédictive négative des deux types de TDR P. falciparum utilisés

Variables étudiées Bioline™ P. falciparum ParaHIT® P. falciparum
Vrais positifs 96 21
Faux positifs 39 57
Vrais négatifs 1 383 708
Faux négatifs 68 9
Sensibilité 58,5% 26,9%
Spécificité 97,3% 92,6%
Valeur prédictive positive 71,1% 26,9%
Valeur prédictive negative 95,3% 98,7%

Discussion

Les TDR présentent de nombreux avantages, tels que la rapidité des résultats (5-20 minutes maximum), la facilité d’interprétation et le faible coût. En outre, les TDR du paludisme ont permis de prendre en charge rapidement les patients fébriles, en fournissant un diagnostic probable du paludisme, de sorte que le traitement antipaludique a pu être administré à temps.

Des faux positifs du TDR de P. falciparum peuvent être causés par d’autres infections (dengue, toxoplasmose, hépatite C,…) ou des maladies autoimmunes. Des faux négatifs peuvent être dus à des infections pauci-parasitaires, des souches de P. falciparum ne sécrétant pas d’HRP2, d’autres espèces plasmodiales, à des erreurs de procédure ou à des tests altérés [2].

Notre étude présente certaines limites. Le délai entre la réalisation des TDR et l’analyse par PCR est long mais il peut être raccourci à l’aide d’une logistique appropriée. Bien que non formellement validée, la technique de récupération des antigènes est confortée par la cohérence des résultats. La différence des résultats des deux TDR entre eux, alors que leurs performances sont similaires, peut s’expliquer par des recrutements de patients et des conditions épidémiologiques du paludisme différents selon les centres de santé.

Néanmoins, l’approche consistant à rechercher directement l’ADN parasitaire par PCR dans le sang collecté sur le TDR lui-même, est originale et incite à réaliser de nombreux tests diagnostiques de fièvres non palustres.

Éthique

Le protocole a été approuvé par le Comité national d’éthique pour la recherche en santé au Sénégal (SEN17/62), et réalisé conformément aux bonnes pratiques cliniques recommandées par la déclaration d’Helsinki et ses amendements.

Financement

Cette étude est soutenue par l’Institut hospitalo-universitaire (IHU) Méditerranée Infection, l’Agence nationale de la recherche française dans le cadre du programme des Investissements d’avenir, référence ANR-10-IAHU-03.

Contribution des auteurs

C. D. a contribué à la conception expérimentale, a rédigé le manuscrit et a réalisé la technique qPCR. I. O. a contribué à la conception expérimentale. G. D. a collecté des échantillons et révisé le manuscrit. M. G. a réalisé la technique qPCR. A. S., D. F. et M. F. ont réalisé la dissection des TDR. P. G. a rédigé le projet original, a contribué à la conception expérimentale, a révisé le manuscrit et a coordonné le travail. C. S. a rédigé le projet original, a contribué à la conception expérimentale et a coordonné le travail.

Conflits d’intérêts

Les auteurs ne déclarent aucun conflit d’intérêts.

Contributor Information

Coumba DIOUF, Email: dioufcoumba339@gmail.com.

Ihssane OUADDANE, Email: ouaddaneihssane@gmail.com.

Georges DIATTA, Email: georges.diatta@ird.fr.

Mamadou Lamine Bara GOUMBALA, Email: serignebara215@gmail.com.

Abdourahmane SOW, Email: dourahmane1998@gmail.com.

Déguène FAM, Email: deguene1998@gmail.com.

Mbayang FAYE, Email: fayem936@gmail.com.

Philippe GAUTRET, Email: Philippe.GAUTRET@ap-hm.fr.

Références / References

  • 1.Goumballa N, Sambou M, Samba DF, Bassene H, Bedotto M, Aidara A, Dieng M, Hoang VT, Parola P, Sokhna C, Gautret P. PCR investigation of infections in patients consulting at a healthcare centre over a four-year period during the Grand Magal of Touba. Travel Med Infect Dis. 2023 Mar-Apr;52:102515. doi: 10.1016/j.tmaid.2022.102515. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
  • 2.Martianez-Vendrell X, Skjefte M, Sikka R, Gupta H. Factors Affecting the Performance of HRP2-Based Malaria Rapid Diagnostic Tests. Trop Med Infect Dis. 2022 Sep 25;7(10):265. doi: 10.3390/tropicalmed7100265. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
  • 3.Sokhna C, Goumballa N, Hoang VT, Mboup BM, Dieng M, Sylla AB, Diallo A, Raoult D, Parola P, Gautret P. Senegal’s Grand Magal of Touba: Syndromic Surveillance during the 2016 Mass Gathering. Am J Trop Med Hyg. 2020 Feb;102(2):476–482. doi: 10.4269/ajtmh.19-0240. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
Med Trop Sante Int. 2025 Aug 16;5(4):mtsi.v5i4.2025.733.

Use of genetic material extracted from rapid malaria diagnostic tests using PCR during the Grand Magal of Touba in Senegal

Introduction

The Grand Magal of Touba (GMT) is an annual religious event organized by the Mouride community, a Muslim brotherhood in Senegal. It is celebrated on the 18th day of Safar according to the Islamic calendar. The event attracts between four and five million pilgrims, which poses a risk of infectious disease transmission due to the density of participants and overcrowding at popular sites [3]. From 2018 to 2021, a study was conducted at the Mbacke health center during the GMT. Out of 141 patients, 45 (31.9%) tested positive for at least one blood pathogen: 21.3% for Plasmodium falciparum, 5.7% for Borrelia spp., and 5% for the dengue virus [1]. In a new study, we investigated whether polymerase chain reaction (PCR) could be used to confirm initial results from rapid diagnostic tests (RDTs) retrospectively.

Method

For our study, we collected two types of RDTs used for malaria diagnosis from eight health facilities in the Mbacke department over five days during the GMT. The tests were ParaHIT® (Akray Healthcare, India) and Bioline™ Malaria Ag P.f/Pan (Abbott, USA), which detect only the histidine-rich protein 2 (HRP2) protein of P. falciparum. We extracted nucleic acids (DNA/RNA) from the RDTs using a KingFisher™ Flex instrument to perform real-time quantitative PCR tests targeting the 18S rRNA of P. falciparum. All real-time quantitative PCR assays were performed using a C1000 Touch™ thermocycler (Bio-Rad, Hercules, CA, USA) with the LightCycler® 480 Probes Master kit (Roche Diagnostics, France), following the manufacturer’s recommendations. Negative controls (PCR mix) and positive controls (DNA from bacterial strains) were included in each run. A cycle threshold (CT) of <35 was used for positive results after amplification. We calculated the sensitivity, specificity, positive predictive value (PPV), and negative predictive value (NPV) of malaria RDTs relative to PCR as the reference test.

Results

A total of 2,381 RDTs were collected, including 1,586 Bioline™ Malaria Ag P.f/Pan tests and 795 ParaHIT® tests. Testing revealed 213 positive samples (8.95%): 135 for the Bioline™ Malaria Ag P.f/Pan test and 78 for the ParaHIT® test. Of the samples tested by qPCR, 194 (8.15%) were positive (164 for the Bioline™ Malaria Ag P.f./Pan test and 30 for the ParaHIT®test for P.falciparum) (Table I). ParaHIT® RDTs are more sensitive than Bioline™ Malaria Ag P.f/Pan, but their specificity is slightly lower. While the NPV of both tests remains acceptable, the PPV is low for both tests and poor for the ParaHIT® RDT (Table I).

Table I.

Sensitivity, specificity, positive predictive value, and negative predictive value of the two types of P. falciparum RDTs used

Variables studied Bioline™ P. falciparum ParaHIT® P. falciparum
True positives 96 21
False positives 39 57
True negatives 1 383 708
False negatives 68 9
Sensitivity 58,5% 26,9%
Specificity 97,3% 92,6%
Positive predictive value 71,1% 26,9%
Negative predictive value 95,3% 98,7%

Discussion

RDTs have many advantages, such as rapid results (from 5 to 20 minutes maximum), ease of interpretation, and low cost. Additionally, malaria RDTs enable the rapid management of febrile patients by providing a probable malaria diagnosis, allowing for the timely administration of antimalarial treatment.

However, false positives for P. falciparum RDTs have been observed and may be caused by other infections, such as dengue, toxoplasmosis, or hepatitis C, etc. as well as autoimmune diseases. False negatives may be caused by low parasite infections, P. falciparum strains that do not secrete HRP2, other Plasmodium species, procedural errors, or altered tests [2].

Our study has certain limitations. The time between performing RDTs and PCR analysis is lengthy, though it could be reduced with better logistics. Although the antigen recovery technique has not been formally validated, it is supported by consistent results. Despite their similar performance, the difference in results between the two RDTs can be explained by differences in patient recruitment and malaria epidemiological conditions between health centers.

Nevertheless, directly searching for parasitic DNA in blood collected on the RDT itself using PCR is an original approach that encourages performing numerous diagnostic tests for non-malaria fevers.

Ethics

The protocol was approved by the National Ethics Committee for Health Research in Senegal (SEN17/62) and was conducted in accordance with good clinical practice, as recommended by the Declaration of Helsinki and its amendments.

Funding

This study is supported by the Institut Hospitalo-Universitaire (IHU) Méditerranée Infection and the French National Research Agency as part of the Investissements d’Avenir program (reference ANR-10-IAHU-03).

Authors’ contributions

C.D. contributed to the experimental design, wrote the manuscript, and performed the qPCR technique. I.O. contributed to the experimental design. G.D. collected samples and revised the manuscript. M.G. performed the qPCR technique. A.S., D.F., and M.F. performed the RDT dissection. P.G. wrote the original draft, contributed to the experimental design, revised the manuscript, and coordinated the work. C.S. also wrote the original draft, contributed to the experimental design, and coordinated the work.

Conflicts of interest

The authors declare no conflicts of interest.


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