Abstract
为提高对谱系转换(lineage switch, LS)这一现象的认识,回顾性分析1例KMT2A重排急性淋巴细胞白血病(ALL)复发后出现LS的病例资料,并对相关文献进行复习。患者,女,23岁,诊断ALL(KMT2A::AFF1阳性),巩固化疗期间复发,予以含有贝林妥欧单抗方案的化疗再次缓解后,桥接异基因造血干细胞移植,移植后2个月余广泛髓外复发,髓外肿物病理免疫组化显示,CD19表达部分缺失,并出现MPO表达,但仍保留KMT2A重排;行靶向CD19的嵌合抗原受体T细胞治疗后,再次髓外复发时,CD19表达完全缺失,MPO阳性,诊断为髓系肉瘤。最终患者放弃治疗,返回当地。抗原靶向免疫疗法后,LS作为一种耐药和适应性机制,需引起临床重视。
Abstract
To enhance the understanding of lineage switch(LS), we retrospectively analyzed the clinical data of a patient with KMT2A-rearranged acute lymphoblastic leukemia(ALL)who underwent a LS at relapse and reviewed the relevant literature. The patient, a 23-year-old woman, was initially diagnosed with ALL(KMT2A::AFF1-positive). She experienced a relapse during consolidation chemotherapy and achieved a second remission following chemotherapy containing blinatumomab, subsequently bridging to allogeneic stem cell transplantation. Approximately 2 months after transplantation, extensive extramedullary relapse occurred. Immunohistochemical analysis of the extramedullary mass revealed a partial loss of CD19 expression and emergence of MPO expression, whereas the KMT2A rearrangement was retained. After receiving CD19-CAR-T therapy, the patient experienced another extramedullary relapse, at which time complete loss of CD19 expression and positivity for MPO were observed, leading to a diagnosis of myeloid sarcoma. Ultimately, the family opted to discontinue treatment and the patient was discharged to receive care locally. Following antigen-targeted immunotherapy, LS, as a potential mechanism of drug resistance and adaptation, warrants increased clinical attention.
KMT2A重排(KMT2Ar)作为早期白血病发生的独特驱动因素,可导致原始细胞同时具有髓系和淋系的免疫表型特征,故曾被称为混合谱系白血病(mixed lineage leukemia, MLL)基因,可出现在急性髓系白血病(AML)、急性淋巴细胞白血病(ALL)或混合表型急性白血病(MPAL)中。伴KMT2Ar的ALL化疗耐药、复发率高,预后差,5年总生存率不足20%[1]。靶向免疫治疗及细胞治疗,彻底改变了复发/难治性ALL的治疗格局。但这种高强度淋系靶向治疗后,部分患者发生淋系向髓系白血病的谱系转换(lineage switch, LS),作为一种耐药和适应性机制[2],成为新的治疗挑战。现报道1例KMT2Ar ALL靶向免疫治疗后出现LS的诊疗经过并进行文献复习,提高对此现象的认识。
病例资料
患者,女,23岁,行骨髓穿刺确诊为KMT2A::AFF1融合基因阳性ALL。初诊时,骨髓流式细胞术免疫分型显示:74%的异常细胞群表达HLA-DR、CD15、CD19、CD22、CD38、CD58、CD123、cCD79a及TdT。经长春地辛、伊达比星、环磷酰胺、培门冬酶、泼尼松组成的VICLP方案诱导化疗后达到完全缓解(CR),随后接受巩固治疗。于第2个疗程巩固治疗后出现复发。复发后,予以长春地辛、盐酸米托蒽醌、环磷酰胺、泼尼松组成的VMCP联合贝林妥欧单抗方案进行再诱导化疗,再次获得CR。此后桥接其父为供者的半相合外周血造血干细胞移植。+17 d粒系植入,+30 d血小板植入。移植后1个月复查骨髓,提示完全分子生物学缓解及完全供者型植入。移植后2个月余,患者出现广泛髓外复发,临床表现为腮腺肿物、多发皮肤硬性结节、左侧眶周肿物。皮肤结节活检病理示:真皮层及皮下脂肪组织见形态相对一致的异型淋巴样细胞浸润,细胞中等大小,胞质稀少,部分可见单个核仁。免疫组化示:CD3(−)、CD20(−)、CD19(少部分+)、PAX-5(−)、CD79a(−)、CD34(−)、CD99(−)、CD10(−)、TDT(−)、CD117(−)、CD38(部分+)、CD138(−)、MPO(+)、CD33(−)、Lysozyme(少部分+)、CD4(+),CD56(−)、CD123(−)、Ki-67(约90%+)、P53(90%+)、Bcl-2(弥漫+)、Bcl-6(−)、c-myc(80%+)、CD7(−);原位杂交结果:EBER(−)。荧光原位杂交(FISH)检测显示皮肤结节中XY信号表达率为1%,KMT2Ar阳性率为98%,证实该异型淋巴细胞来源于患者且携带与初诊白血病一致的KMT2Ar;而非来源于供者、在EB病毒刺激下引起的移植后淋巴增殖性疾病。腮腺肿物穿刺与皮肤结节活检病理形态、免疫组化及FISH结果一致。后续予以靶向CD19的嵌合抗原受体T细胞(CAR-T细胞)治疗,上述髓外肿物曾一过性消退。CAR-T细胞治疗后1个月再次出现髓外复发。再次皮肤活检病理示:纤维组织间见异常细胞增生,细胞中等大小,胞质少,核呈椭圆或略不规则,染色质细腻,部分可见小核仁。免疫组化:Bcl-2(90%+)、CD3(−)、CD7(−)、CD10(−)、CD13(−)、CD19(−)、CD20(−)、CD22(−)、CD33(<5%+)、CD34(−)、CD38(90%+)、CD79a(−)、CD99(+)、CD117(−)、CD138(−)、C-myc(90%+)、Ki-67(90%+)、MPO(部分弱+)、PAX5(−)、TdT(−),符合髓系肉瘤诊断。此后尝试CD38单克隆抗体治疗2次,疗效不佳。拟申请menin抑制剂临床试验但须等待入组。最终患者放弃积极治疗,返回当地。
讨论及文献复习
1. LS的定义:目前关于LS的较大规模研究主要来自国际协作项目EVOLVE[3]。该项目汇集了来自8个国家、43个机构或团体的75例LS病例,并依据严格标准对“LS”进行定义,即在保留原始细胞遗传学或分子标志的同时,出现从一种谱系向另一种谱系的形态学及免疫表型转换,最常见为B-ALL向AML的转化。
2. KMT2Ar急性白血病患者是发生LS的高危人群:以往基于FAB谱系分型标准,白血病复发时LS的发生率初步估计约为6.7%。然而,随着1984年以来免疫表型检测技术的发展及当前WHO采用的更严格的谱系判定标准,这一数据可能被高估。多数LS是从ALL转为AML,但也有AML转为ALL的个案报道[4]–[5]。此类现象最常见于携带KMT2Ar的年轻患者。Lamble等[6]报道,在接受CAR-T细胞治疗的163例B-ALL患者中,有12例发生了LS,其中75%携带KMT2Ar。除KMT2Ar外,研究亦发现其他细胞遗传学和分子异常与免疫治疗后LS相关,如BCR::ABL1[7]、TCF3::ZNF384融合基因或ZNF384重排[8]、DUX4重排[9]、PAX5 P80R突变[9]、CRLF2重排[10]、TP53突变[11]等。这些亚型在初诊、治疗期间或复发时易表达髓系标志物,因此有必要加强对这些患者群体的LS监测。
3. LS时髓外复发的特点:Aldoss等[2]和He等[12]报道2例KMT2A::AFF1易位的ALL患者复发后,接受靶向治疗后,分别发生胸部皮下髓系肉瘤和乳腺的髓系肉瘤。EVOLVE项目[3]报道的LS最常在骨髓中被发现(65.7%),亦可见孤立性中枢神经系统浸润(4.3%)、非中枢神经系统髓外病变(5.7%)或骨髓合并髓外病变受累(22.9%),即高达32.9%的患者LS时出现髓外病变。髓外逃逸和CD19抗原丢失是ALL患者接受贝林妥欧单抗治疗后复发的特征模式[2]。
4. 发生LS的机制:LS的确切机制尚未完全阐明,目前认为可能涉及多种生物学通路。现有解释主要基于以下几种假说:
第一,“谱系可塑性”假说。髓系与淋系细胞均起源于共同的双潜能B/巨噬祖细胞。LS后的白血病细胞与原始克隆之间存在明确的克隆相关性。通过比较诊断时与治疗后样本的免疫球蛋白重链基因重排、细胞遗传学或分子特征,可证实两者的同源性。复发时细胞可能获得新的遗传学异常,但仍保留原有的TCR/IGH重排或分子标志。Coorens等[13]报道了1例3岁B-ALL女性患儿,在化疗期间,经历2次与初诊白血病表型一致的复发后,经抗CD19 CAR-T细胞及贝林妥欧单抗治疗获得短期缓解。然而,7个月后进展为AML,且对后续治疗耐药。研究者通过对6个时间点的8份骨髓或外周血样本进行全基因组测序,分析各类变异发现,AML克隆源于初诊ALL,但并非由最近一次复发的淋系克隆直接转化,而是从白血病遗传多样性背景中预先存在的谱系演化而来。该结果提示,具备LS潜能的癌细胞可能以隐匿状态持续存在,在耐受治疗的同时不断累积突变,反映出白血病克隆群体内存在高度的遗传异质性与适应性进化潜能。
第二,治疗压力下表观遗传学改变及微环境调节因子介导的细胞重编程。Wölfl等[14]报道1例ALL患儿在异基因造血干细胞移植后早期复发,接受贝林妥欧单抗治疗仅11 d后转化为AML;而停药观察7 d后,白血病表型竟自发逆转为原来的CD19⁺淋巴细胞表型。该案例揭示了早期祖细胞在免疫压力下具有高度的可塑性。CD19靶向治疗初期常伴随强烈的细胞因子释放。研究显示炎症因子(特别是IL-6)可能促使淋系克隆向髓系分化[12],[14]–[17]。Janssens等[18]研究揭示KMT2A致癌融合蛋白(癌蛋白)通过表观遗传学机制,使KMT2Ar白血病能够逃逸靶向治疗。他们通过对1例接受淋系靶向治疗后发生淋系到髓系LS的样本进行分析发现,在癌蛋白表达水平降低时,其靶基因网络发生改变,癌蛋白会转向非常规调控程序并促使细胞倾向髓系分化。单纯CD19丢失并不足以导致LS,这进一步支持KMT2Ar背景下存在更复杂的表观遗传细胞重编程机制。
第三,治疗诱导的克隆选择。多项研究表明,部分白血病在初诊时即存在双谱系或混合表型的原始细胞群[4]。KMT2Ar婴儿ALL中已观察到显著的克隆异质性[19]–[20],诱导治疗结束时高MRD患者,其白血病细胞更常共表达髓系标志物,提示ALL样诱导方案可能筛选出具有“AML样”特征的亚克隆[21]。CD19靶向药物如贝林妥欧单抗或CAR-T细胞治疗,可有效清除CD19⁺淋系克隆,从而使得原本占比较低的髓系表型或双表型亚克隆获得增殖优势,最终表现为LS[14],[22]。
5. LS与混合白血病的关系:Bełdzińska-Gądek等[23]共汇总了106例发生LS的患者,多数病例(80例,75.5%)为ALL向AML转换,18例(17.0%)为AML向ALL转换,其余为MPAL转为ALL/AML,或ALL/AML转为MPAL,4例患者(3.8%)经历了2次LS(转换路径分别为:B-ALL→AML→MPAL;T-ALL→AML→T-ALL;B-ALL→AML→B-ALL;B-ALL→MPAL→AML)。其中49例患者(46.2%)携带KMT2Ar,3例携带TCF3::ZNF384重排。36例患者(34.0%)为携带KMT2Ar的B-ALL,其中2例转换为髓系肉瘤。EVOLVE项目[3]还报道了10例谱系漂移(表现为表型不完全或暂时性改变),“谱系漂移”适用于以下情况:细胞表面抗原表达发生演变,导致与先前表型相比出现显著变化,但不足以支持疾病重新分类(例如,CD19丢失但保留CD22,并获得CD33,但未出现其他髓系标志物)。我们报道的此例患者,第一次髓外复发时,皮肤病理及腮腺组织活检病理:MPO阳性,CD38阳性,CD117阴性,CD33阴性,CD19少部分阳性。从免疫组化可以看出,此患者B-ALL的表型正在丢失,AML的表型正在显现,髓系特征性的MPO阳性,但CD117及CD33阴性,CD13未做,但因受限于病理免疫组化有限的标记,无足够的证据把这一中间状态归为MPAL,只能归为急性未分化型白血病(AUL)。
6. LS后的治疗:LS后的患者预后极差,治疗方案多样且缺乏统一标准,治疗效果通常有限、短暂或不完全,这可能与持续治疗所导致的内在或获得性化疗耐药有关。EVOLVE项目[3]数据显示,在70例B-ALL转为AML或MPAL的LS患者中,确诊后的中位总生存期仅为4.8个月。值得关注的是,其中8例存活患者中有7例为KMT2Ar白血病,提示即使在这一高危亚群中挽救性治疗仍可能带来生存获益。目前LS的治疗策略较为多样,主要包括化疗联合靶向药物,如吉妥珠单抗[24]、维奈克拉[24]、达雷妥尤单抗[25]、奥加伊妥珠单抗[24]、menin抑制剂[26]、DOT1L抑制剂[27]等均有相关病例报道。CPX-351在LS患者中的作用仍需进一步研究来明确。Fms样酪氨酸激酶3受体(FLT3)在AML中常因突变激活,在KMT2Ar ALL中也可见野生型FLT3过度表达。基于此,Niswander等[28]开发了单价FLT3 CAR-T细胞及双特异性CD19×FLT3 CAR-T细胞。临床前研究表明,尽管LS后FLT3表面抗原密度下降,FLT3 CAR-T细胞在KMT2Ar ALL和AML的患者来源异基因移植模型中均展现出显著的白血病抑制活性。这些结果提示,FLT3 CAR-T细胞可能尤其适用于具有LS高风险的KMT2Ar ALL患者。多数长期存活的个案报道显示,患者在诱导缓解后接受了巩固性造血干细胞移植[24],提示移植可能是实现治愈的关键环节。
移植策略的优化主要包括以下几种:移植前强化疗或新型治疗方法(免疫治疗、DOT1L抑制剂、menin抑制剂、HDAC抑制剂等)用于难治/复发患者的移植前治疗,争取达CR或MRD阴性,加强预处理,移植后增强移植物抗白血病(GVL)效应或新型疗法抢先治疗或维持等,最大程度提高移植疗效,减少移植后复发[29]。需注意的是,使用吉妥珠单抗或奥加伊妥珠单抗等药物后桥接移植时,应警惕肝窦阻塞综合征等风险。
LS是白血病治疗过程中的罕见事件,其机制尚未完全阐明,且目前缺乏标准治疗方案,患者预后普遍较差。尽管抗原靶向免疫疗法已显著提升了急性白血病的治疗水平,但髓外逃逸、靶向抗原丢失,甚至出现LS作为新的复发模式已经显现。所有接受抗原靶向免疫治疗的患者均面临LS风险,特定基因组亚型(如KMT2Ar等)的患者风险尤为突出。随着免疫治疗逐渐向一线推进,这类免疫治疗后出现LS的病例数量可能会进一步增加。在免疫治疗后,除常规多参数流式细胞术监测外,建议采用包括细胞遗传学与二代测序在内的多模式MRD追踪策略,以提高LS的检出与确诊率。推荐在白血病初诊、进展或发生LS等关键节点进行系统的基因测序与细胞遗传学分析,并建立纵向样本库,从而深入理解LS的生物学机制。目前,LS后的治疗仍具有挑战,靶向药物、去甲基化治疗等可能带来一定疗效,而异基因造血干细胞移植被认为是目前实现治愈的重要途径。
Footnotes
利益冲突 所有作者声明不存在利益冲突
作者贡献声明 乔卓青:酝酿和设计研究方案、实施研究、采集数据、分析/解释数据、起草文章;石艳萍:实施研究、采集数据、起草文章;胡亮钉:酝酿和设计研究方案、论文审阅、指导研究
References
- 1.Lee BJ, Griffin SP, Doh J, et al. CD19-directed immunotherapy use in KMT2A-rearranged acute leukemia: A case report and literature review of increased lymphoid to myeloid lineage switch[J] Am J Hematol. 2022;97(12):E439–E443. doi: 10.1002/ajh.26713. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
- 2.Aldoss I, Song JY. Extramedullary relapse of KMT2A(MLL)-rearranged acute lymphoblastic leukemia with lineage switch following blinatumomab[J] Blood. 2018;131(22):2507. doi: 10.1182/blood-2018-02-834911. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
- 3.Silbert SK, Rankin AW, Hoang CN, et al. Project EVOLVE: an international analysis of postimmunotherapy lineage switch, an emergent form of relapse in leukemia[J] Blood. 2025;146(4):437–455. doi: 10.1182/blood.2024026655. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
- 4.Rossi JG, Bernasconi AR, Alonso CN, et al. Lineage switch in childhood acute leukemia: an unusual event with poor outcome[J] Am J Hematol. 2012;87(9):890–897. doi: 10.1002/ajh.23266. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
- 5.Dorantes-Acosta E, Arreguin-Gonzalez F, Rodriguez-Osorio CA, et al. Acute myelogenous leukemia switch lineage upon relapse to acute lymphoblastic leukemia: a case report[J] Cases J. 2009;2:154. doi: 10.1186/1757-1626-2-154. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
- 6.Lamble AJ, Myers RM, Taraseviciute A, et al. Preinfusion factors impacting relapse immunophenotype following CD19 CAR T cells[J] Blood Adv. 2023;7(4):575–585. doi: 10.1182/bloodadvances.2022007423. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
- 7.Nagel I, Bartels M, Duell J, et al. Hematopoietic stem cell involvement in BCR-ABL1-positive ALL as a potential mechanism of resistance to blinatumomab therapy[J] Blood. 2017;130(18):2027–2031. doi: 10.1182/blood-2017-05-782888. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
- 8.Oberley MJ, Gaynon PS, Bhojwani D, et al. Myeloid lineage switch following chimeric antigen receptor T-cell therapy in a patient with TCF3-ZNF384 fusion-positive B-lymphoblastic leukemia[J] Pediatr Blood Cancer. 2018;65(9):e27265. doi: 10.1002/pbc.27265. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
- 9.Lucero OM, Parker K, Funk T, et al. Phenotype switch in acute lymphoblastic leukaemia associated with 3 years of persistent CAR T cell directed-CD19 selective pressure[J] Br J Haematol. 2019;186(2):333–336. doi: 10.1111/bjh.15812. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
- 10.Silbert SK, Scanlon S, Wang HW, et al. CRLF2-rearranged B-cell ALL with extramedullary lineage switch to AML following CD19-targeted therapy[J] J Immunother Cancer. 2024;12(10):e009499. doi: 10.1136/jitc-2024-009499. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
- 11.Zhou T, Curry CV, Khanlari M, et al. Genetics and pathologic landscape of lineage switch of acute leukemia during therapy[J] Blood Cancer J. 2024;14(1):19. doi: 10.1038/s41408-024-00983-2. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
- 12.He RR, Nayer Z, Hogan M, et al. Immunotherapy- (Blinatumomab-) Related Lineage Switch of KMT2A/AFF1 Rearranged B-Lymphoblastic Leukemia into Acute Myeloid Leukemia/Myeloid Sarcoma and Subsequently into B/Myeloid Mixed Phenotype Acute Leukemia[J] Case Rep Hematol. 2019;2019:7394619. doi: 10.1155/2019/7394619. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
- 13.Coorens T, Collord G, Treger TD, et al. Clonal origin of KMT2A wild-type lineage-switch leukemia following CAR-T cell and blinatumomab therapy[J] Nat Cancer. 2023;4(8):1095–1101. doi: 10.1038/s43018-023-00604-0. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
- 14.Wölfl M, Rasche M, Eyrich M, et al. Spontaneous reversion of a lineage switch following an initial blinatumomab-induced ALL-to-AML switch in MLL-rearranged infant ALL[J] Blood Adv. 2018;2(12):1382–1385. doi: 10.1182/bloodadvances.2018018093. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
- 15.Gardner R, Wu D, Cherian S, et al. Acquisition of a CD19-negative myeloid phenotype allows immune escape of MLL-rearranged B-ALL from CD19 CAR-T-cell therapy[J] Blood. 2016;127(20):2406–2410. doi: 10.1182/blood-2015-08-665547. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
- 16.Clesham K, Rao V, Bartram J, et al. Blinatumomab for infant acute lymphoblastic leukemia[J] Blood. 2020;135(17):1501–1504. doi: 10.1182/blood.2019004008. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
- 17.Cohen A, Petsche D, Grunberger T, et al. Interleukin 6 induces myeloid differentiation of a human biphenotypic leukemic cell line[J] Leuk Res. 1992;16(8):751–760. doi: 10.1016/0145-2126(92)90153-x. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
- 18.Janssens DH, Duran M, Otto DJ, et al. KMT2A oncoproteins induce epigenetic resistance to targeted therapies[J] bioRxiv. 2024 doi: 10.1101/2023.12.29.573681. [DOI] [Google Scholar]
- 19.Bardini M, Woll PS, Corral L, et al. Clonal variegation and dynamic competition of leukemia-initiating cells in infant acute lymphoblastic leukemia with MLL rearrangement[J] Leukemia. 2015;29(1):38–50. doi: 10.1038/leu.2014.154. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
- 20.Agraz-Doblas A, Bueno C, Bashford-Rogers R, et al. Unraveling the cellular origin and clinical prognostic markers of infant B-cell acute lymphoblastic leukemia using genome-wide analysis[J] Haematologica. 2019;104(6):1176–1188. doi: 10.3324/haematol.2018.206375. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
- 21.Stutterheim J, van der Sluis IM, de Lorenzo P, et al. Clinical Implications of Minimal Residual Disease Detection in Infants With KMT2A-Rearranged Acute Lymphoblastic Leukemia Treated on the Interfant-06 Protocol[J] J Clin Oncol. 2021;39(6):652–662. doi: 10.1200/JCO.20.02333. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
- 22.Stutterheim J, Van der Sluis IM, Vrenken KS, et al. KMT2A-rearranged acute lymphoblastic leukemia in infants: current progress and challenges[J] Haematologica. 2025;110(9):1951–1961. doi: 10.3324/haematol.2024.285642. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
- 23.Bełdzińska-Gądek K, Zarzycka E, Pastuszak K, et al. Immune escape of B-cell lymphoblastic leukemic cells through a lineage switch to acute myeloid leukemia[J] Leuk Lymphoma. 2024;65(9):1292–1302. doi: 10.1080/10428194.2024.2351194. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
- 24.Brethon B, Lainey E, Caye-Eude A, et al. Case Report: Targeting 2 Antigens as a Promising Strategy in Mixed Phenotype Acute Leukemia: Combination of Blinatumomab With Gemtuzumab Ozogamicin in an Infant With a KMT2A-Rearranged Leukemia[J] Front Oncol. 2021;11:637951. doi: 10.3389/fonc.2021.637951. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
- 25.Marco-Ayala J, Vicente AI, Such E, et al. Lineage switch from B lymphoblastic leukemia with KMT2A-rearranged to mixed-phenotype acute leukemia under daratumumab[J] Blood Res. 2020;55(2):75. doi: 10.5045/br.2020.2020059. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
- 26.Du J, Chisholm KM, Tsuchiya K, et al. Lineage Switch in an Infant B-Lymphoblastic Leukemia With t(1;11) (p32;q23); KMT2A/EPS15, Following Blinatumomab Therapy[J] Pediatr Dev Pathol. 2021;24(4):378–382. doi: 10.1177/10935266211001308. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
- 27.Stein EM, Garcia-Manero G, Rizzieri DA, et al. The DOT1L inhibitor pinometostat reduces H3K79 methylation and has modest clinical activity in adult acute leukemia[J] Blood. 2018;131(24):2661–2669. doi: 10.1182/blood-2017-12-818948. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
- 28.Niswander LM, Graff ZT, Chien CD, et al. Potent preclinical activity of FLT3-directed chimeric antigen receptor T-cell immunotherapy against FLT3-mutant acute myeloid leukemia and KMT2A-rearranged acute lymphoblastic leukemia[J] Haematologica. 2023;108(2):457–471. doi: 10.3324/haematol.2022.281456. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
- 29.刘 竞, 黄 晓军. KMT2A重排急性白血病异基因造血干细胞移植进展[J] 中华血液学杂志. 2024;45(5):514–520. doi: 10.3760/cma.j.cn121090-20231026-00230. [DOI] [Google Scholar]; Liu J, Huang XJ. Progress of allogeneic hematopoietic stem cell transplantation in KMT2A-rearranged acute leukemia[J] Chin J Hematol. 2024;45(5):514–520. doi: 10.3760/cma.j.cn121090-20231026-00230. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
