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. 2019 Aug 20;39(8):964–971. [Article in Chinese] doi: 10.12122/j.issn.1673-4254.2019.08.14

脑络欣通对神经干细胞增殖分化及β-tubulin Ⅲ/GFAP的影响

Effect of Naoluo Xintong on proliferation and differentiation of neural stem cells and β-tubulin Ⅲ/GFAP

何 玲 1, 石 晓倩 2, 徐 伟 3, 谭 辉 1, 王 键 1,*
PMCID: PMC6765604  PMID: 31511218

Abstract

目的

观察脑络欣通对β-tubulinⅢ/GFAP及神经干细胞(NSCs)增殖分化的影响。

方法

将NSCs细胞株分为空白模型(MC)组、10%脑络欣通含药血清(NLXT组)、10%脑络欣通含药血清+抑制剂Y27632组(Y-27632组)。采用MTT法检测NSCs细胞活性,Transwell小室观察NSCs迁移,免疫印迹法观察β-TubulinⅢ、GFAP、MAP-2蛋白表达。免疫荧光标记DCX、NEUN、β-TubulinⅢ表达。

结果

与MC组比较,1 d和3 d NLXT组、Y-27632组迁移细胞数增多(P < 0.05);7 d后NLXT组、Y-27632组细胞存活率及迁移细胞数显著增多(P < 0.01)。与MC组比较,第3天、第7天NLXT组和Y-27632组β-tubulinⅢ、MAP2、GFAP蛋白表达显著升高(P < 0.01或P < 0.05)。NLXT组、Y-27632组脑组织β-tubulinⅢ/GFAP、BrdU/DCX、BrdU/NEUN标记细胞数目较MC组明显增多。

结论

脑络欣通通过调节β-tubulinⅢ/GFAP促进NSCs增殖、分化。

Keywords: 微管蛋白, 胶质纤维酸性蛋白, 神经干细胞, 脑络欣通


中风病是世界范围内主要的致残原因[1-2]。神经干细胞(NSCs)在神经发育和修复受损神经组织中发挥重要作用[3-6]。脑缺血病变后内源性NSCs的再生是机体实现自身修复的潜力。NSCs在脑缺血后增殖分化的速度与抑制其再生有关[7-9]。当NSCs向损伤灶局部迁移时,其量及有效分化程度却明显不足,甚至失去迁移能力[10-11]。因此,对于缺血性中风NSCs增殖分化及其干预研究有重要意义。中药复方治疗缺血性中风病有较好疗效,中医药在治疗缺血性中风凸显重要作用[12-13]。脑络欣通具有促进NSCs增殖的作用。脑络欣通可诱导NSCs分化成神经元、星形胶质细胞和少突胶质细胞,同时,脑络欣通能改善NSCs增殖的微环境[14-18]。既往研究主要集中在脑络欣通对NSCs增殖、分化作用,而对NSCs增殖分化的特征性标志物及分化程度研究较少,且缺乏脑络欣通对NSCs分化过程的动态观察研究。而缺血性中风在疾病不同时期NSCs的增殖分化程度不同,故本文着重以脑络欣通对NSCs的不同时间节点观察,并动态观察缺血后内源性NSCs分化为神经元细胞和胶质细胞的共同标记物β-微管蛋白Ⅲ(β-tubulinⅢ)/胶质纤维酸性蛋白(GFAP)的变化,以期更好了解脑络欣通的作用靶点。

1. 材料和方法

1.1. 材料

1.1.1. 细胞和分组

C17.2小鼠永生化NSCs细胞株(ATCC,zs100493)。将NSCs细胞株分为空白模型组(MC)、10%脑络欣通含药血清组(NLXT)、10%脑络欣通含药血清+Y27632组(以下简称Y-27632组)。

1.1.2. 药物

含药血清:取10只大鼠并标记为NLXT组,中药材由安徽广印堂中药股份有限公司提供。按NLXT原方比例分别称取黄芪30 g(批号:160902),川芎10 g(批号:160901),三七6 g(批号:160901),天麻10 g(批号:160801),当归10 g(批号:160803),红花10 g(批号:160801),蜈蚣2条(批号:160801)。将称取的药材(除去蜈蚣)加入砂罐中,常规煎煮得出煎煮液。将煎煮液低速离心取上清液过滤,再用旋转蒸发仪浓缩至1 mL含生药1 g。NLXT组按8.54g/(kg·d)灌胃共给药3 d,并于第3天最后一次灌胃后取血清备用。

1.1.3. 主要试剂和仪器

Transwell小室(Corning,Cat. No:3422,Lot.No:26117004),胎牛血清(MRC,Cat.No:CCS30009.02,Lot.No:S171204F),NSCs成神经元诱导分化培养基(Cyagen,Cat.No:MUXNX-90081,Lot.No:T171206G001),DMEM(Hyclone,Cat.No:SH30022.01,Lot.No:AC13298765),DMEM/F12(Hyclone,Cat.No:SH30023.01,Lot.No:AC11256314),DMSO(Solarbio,Cat.No:D8370,Lot.No:11773002),MTT(Solarbio,Cat. No:D8370,Lot.No:1172103),山羊抗兔-FITC二抗(Zsbio,Cat.No:ZF-0311,Lot.No:1345863),TRITC二抗(Zsbio,Cat.No:ZF-0313,Lot.No:133502),β-Actin(Zsbio,Cat.No:TA-09,Lot.No:18AV0403),甘氨酸(Solarbio,Cat.No:G8200,Lot.No:109J063),Tris(Solarbio,Cat.No:G8060,Lot.No:117W074),Tween-20(Solarbio,Cat.No:T8200,Lot.No:822I0424),预染蛋白Marker(Thermo,Cat.No:26616G8060,Lot.No:610351),PVDF膜(Millipore Cat.No:IPVH00010,Lot.No:R7JA4305G),ECL超敏反光试剂盒(Millipore Cat.No:34094,Lot.No:SF249607),GFAP小鼠抗小鼠(Bioss,Cat.No:bsm-33065M,Lot.No:AH03084346),β-tubulin Ⅲ兔抗小鼠(Bioss,Cat.No:bs-2670R,Lot.No:AG09273217),Brdu诱导剂(Sigma,Cat.No:B5002,Lot.No:11D037),Brdu小鼠抗小鼠(Bioss,Cat.No:bsm-0917M,Lot.No:AG08255316),双皮质素(DCX)兔抗小小鼠(Bioss,Cat.No:bsm-33065M,Lot.No:AG08255429),NeuN兔抗小鼠(Bioss,Cat.No:bs-10394R,Lot.No:AG07113117)。

1.2. 实验方法

1.2.1. NSCs特征性标志蛋白巢蛋白(Nestin)鉴定

将细胞悬液培养并予血清封闭。加一抗和相应种属二抗室温孵育50 min;细胞核复染并避光室温孵育。封片并镜检拍照。

1.2.2. NSCs细胞活性测定及细胞迁移观察

采用MTT法检测NSCs细胞活性。Transwell小室观察NSCs迁移。光学显微镜下观察并随机拍照5个视野,计算每视野的侵袭细胞数,计算平均值。视野中显示的细胞即为穿过transwell小室底膜的细胞。

1.2.3. 免疫印迹法观察β-TubulinⅢ、GFAP、MAP-2蛋白表达

收集细胞并提取细胞蛋白;蛋白上样与电泳(电泳浓缩胶和分离胶的配方见表 1);转膜并封闭液封闭。4 ℃一抗孵育和二抗孵育;凝胶成像系统扫描并计算条带灰度值,以β-TubulinⅢ、GFAP、MAP-2与β-actin灰度值比值为相对表达量。

1.

电泳浓缩胶与分离胶的比例

Electrophoretic concentrated gel and separation gel ratio

Dormulation content Concentrated gel (2 mL) 10% separation gel (5 mL) 6% separation gel (5 mL)
Double distilled water 1.4 μL 1.9 μL 2.6 μL
30% acrylamide mixture 330 μL 1.7 μL 1.0 μL
1.0 mol Tris (PH6.8) 250 μL 1.3 mL 1.3 μL
10% SDS 20 μL 50 μL 50 μL
10% AP 20 μL 50 μL 50 μL
TEMED 2 μL 2 μL 4 μL

1.2.4. 免疫荧光标记DCX、NEUN、β-TubulinⅢ表达

显色剂DAPI染核,呈蓝色;显色剂FITC标记DCX、NEUN、β-TubulinⅢ,呈绿色;显色剂TRITC标记Brdu、GFAP,呈红色。

1.2.5. 统计学分析

采用SPSS 22.0软件分析,数据用均数±标准差表示。组间比较用单因素方差分析。P < 0.05具有统计学差异。

2. 结果

2.1. NSCs特征性标志蛋白Nestin鉴定

荧光显微镜下观察发现,当细胞出现明显的绿色荧光和染细胞核的蓝色荧光,说明C17.2细胞株复苏、传代成功(图 1)。

1.

1

C17.2细胞株复苏传代后nestin染色

Nestin staining of resuscitated of C17.2 cell line (Original magnificatio: ×100). A, B, C: Fluorescent staining of the cells before induction; D, E, F: Fluorescent staining of the cells at 1 day of induction.

2.2. 脑络欣通对NSCs活性、迁移的影响

MTT检测结果显示,与MC组比较,第7天NLXT组和Y-27632组细胞存活率明显升高(P < 0.05,图 2)。transwell法观察NSCs迁移结果显示,与MC组比较,第1天和第3天NLXT组、Y-27632组迁移细胞数增多(P < 0.05);第7天NLXT组、Y-27632组迁移细胞数显著增多(P < 0.01,图 3)。

2.

2

脑络欣通对NSCs活性的影响

Effect of NLXT on the activity of NSCs. P < 0.05 vs MC group.

3.

3

脑络欣通对NSCs迁移的影响

Effect of Naoluo Xintong on the migration of NSCs. A, B, C: Number of migrated cells on day 1, 3, and 7, respectively (× 100); D: Comparison of the number of migrated cells. P < 0.05, △△P < 0.01 vs MC group.

2.3. 脑络欣通对β-tubulinⅢ、MAP-2和GFAP影响

第1天β-tubulinⅢ、MAP-2和GFAP在各组间比较差异无统计学意义(P>0.05)。与MC组比较,第3天、第7天NLXT组和Y-27632组β-tubulinⅢ、MAP2、GFAP蛋白表达显著升高(P < 0.01或P < 0.05,图 4~6)。

4.

4

β-tubulinⅢ的表达

Expression of β-tubulin Ⅲ protein in the cells detected by Western blotting on day 1 (A), 3(B), and 7(C) with quantitative analysis (D). P < 0.05, △△P < 0.01 vs MC.

6.

6

GFAP的表达

Expression of GFAP protein in the cells detected by Western blotting on day 1 (A), 3(B), and 7(C) with quantitative analysis (D). △△P < 0.01 vs MC.

5.

5

MAP-2的表达

Expression of MAP-2 protein in the cells detected by Western blotting on day 1(A), 3 (B), and 7(C) with quantitative analysis (D). △△P < 0.01 vs MC.

2.4. 脑络欣通能够增加β-tubulinⅢ/GFAP、BrdU/DCX表达

免疫荧光标记β-tubulinⅢ/GFAP表达观察发现,β- tubulinⅢ阳性反应呈绿色,GFAP呈红色,MC组中星形胶质细胞少量表达。NLXT组在第1天, 第3天和第7天β-tubulinⅢ阳性细胞明显增多,Y-27632组β-tubulinⅢ和GFAP阳性细胞明显增多,第7天达到最高峰且分布均匀(图 7)。神经元新生特异性标记BrdU/DCX免疫荧光显示:MC组见极少量BrdU/DCX标记阳性细胞;NLXT组有少量标记阳性细胞,双染散在细胞数目有限,第1天, 第3天与第7天比较未出现增多;Y-27632组BrdU/DCX标记阳性细胞增多,且第7天阳性细胞数比第1天,第3天明显增多(图 8)。

7.

7

β-tubulinⅢ/GFAP阳性细胞表达

Expression of β-tubulinIII/GFAP in the NSCs detected by immunofluorescence assay on day 1 (A), 3 (B), and 7 (C) (× 200).

8.

8

BrdU/DCX阳性细胞表达

Expression of BrdU/DCX in the NSCs detected by immunofluorescence assay on day 1 (A), 3 (B), and 7 (C) (×200).

2.5. 脑络欣通对脑组织BrdU/NEUN标记的影响

BrdU/NEUN免疫荧光标记为分化成熟神经元特异性标记,MC组BrdU/NEUN标记阳性细胞呈富集性,分布均匀;NLXT组标记细胞数目较空白组明显增多,且逐渐分布规律;Y-27632组与空白组、NLXT组比较,BrdU/NEUN标记阳性细胞数目呈进一步增多,分化明显,分布均匀,细胞形态完好(图 9)。

9.

9

BrdU/NEUN阳性细胞表达

Expression of BrdU/NEUN in the NSCs detected by immunofluorescence assay on day 1 (A), 3 (B), and 7(C) (×200).

3. 讨论

脑缺血中风发生后脑组织可自发诱导NSCs增殖和分化,NSCs对损伤脑组织进行修复,脑组织缺血缺氧早期NSCs标志蛋白Nestin蛋白表达升高预示NSCs的激活,修复脑损伤[19-20]。因此,Nestin蛋白表达水平可作为判断中枢神经系统修复能力的指标,Nestin可反映脑组织中NSCs变化。并且,NSCs在脑缺血早期可有效进行神经功能维持和恢复,显著降低脑组织损伤程度[21-23]。本实验结果显示,空白模型组中在第1天,第3天可见少量表达Nestin标记阳性细胞,细胞体形态及排列不规整;第7天时Nestin阳性细胞数目进一步增多,反应更加强烈。脑络欣通组和阻滞剂组,脑缺血第1天时Nestin表达开始明显增加,第3天时Nestin表达显著增强,第7天时Nestin表达进一步增强。说明脑缺血中风发生后会重塑NSCs再生,而脑络欣通能和抑制剂作用类似,可迅速促进NSCs的增殖,并进一步修复损伤细胞。

β微管蛋白在NSCs由圆形分化为有极性的神经元过程中发生变化。β微管蛋白具有七个同源体, 其中β-微管蛋白-Ⅲ具有神经元特异性, 它是原始神经上皮中所表达的最早的神经元标志物之一。GFAP是神经胶质细胞标记物。本实验采用β-tubulinⅢ/GFAP共同标记来观察脑缺血后内源性NSCs分化为神经元细胞和胶质细胞的变化,从而进一步观察脑络欣通对NSCs增殖、分化的影响。实验结果显示,第1天时β- tubulinⅢ和GFAP阳性细胞明显增多,第3天,第7天呈现逐渐减少趋势;脑络欣通组β-tubulinⅢ阳性细胞都明显增多,GFAP阳性细胞变化不明显。阻滞剂组GFAP阳性细胞从第1天到第7天逐渐减少,β-tubulinⅢ阳性细胞增多且分布较为规律,与时间呈现正相关性。DCX与神经元迁移和分化相关,采用免疫荧光标记DCX/BrdU反应神经再生过程中迁移的NSCs。BrdU/DCX免疫荧光标记为神经元新生特异性标记,通过观察BrdU/DCX免疫荧光标记阳性细胞变化,可反映脑缺血损伤后NSCs分化情况。实验结果显示空白模型组见极少量BrdU/ DCX标记阳性细胞,空白模型组有少量标记阳性细胞。脑络欣通组和阻滞剂组BrdU/DCX标记阳性细胞增多,且第7天比第1天和第3天明显增多,且分布规律,呈集中分布。BrdU标记具有增殖迁移和分化能力的神经细胞。采用免疫荧光标记NeuN/BrdU反应神经再生过程中由NSCs新分化而来的神经元细胞。BrdU/ NEUN免疫荧光标记为分化成熟神经元特异性标记,空白模型组标记阳性细胞数目明显减少,第3天减少最为明显;脑络欣通组和阻滞剂组标记阳性细胞数目较空白组明显增多,第7天增多明显且逐渐分布规律。以上研究结果均提示脑络欣通具有类Y-27632样作用,能推动轴突再生促进神经干细胞的增殖,诱导分化。

前期研究发现[24-26]脑络欣通临床上治疗脑血管疾病疗效显著[27-30]。元气充足,则气能摄血,血液贯通于脉络,使血液循环畅通,而血循脉道则血液上于脑窍,保证大脑组织血液和氧气供应充足。气旺以生新血使化生有源。因此,在治疗缺血性中风病气虚血瘀证时应予“益气活血通络”法[32]。遵从“益气活血通络”法拟定的中药复方“脑络欣通”,全方由黄芪、川芎、三七、蜈蚣等组成。黄芪具有补气之功效,补气主要是改善机体功能状态,补气则消除脉中之瘀;气旺以生血活血,从而改善脑部血液循环。川芎具有活血、通络止痛功效。川芎活血而顺畅,使得机体气血渗灌脉络。三七具有活血化瘀之功;三七佐以蜈蚣则血脉疏通。脑络欣通全方扶正祛邪、攻补兼施,活血中寓以补气,使气贯经脉以助血行,营血流畅经脉得养。本研究通过脑络欣通对NSCs增殖和分化观察发现,脑络欣通干预后,GFAP阳性细胞从第1天到第7天逐渐减少,β-tubulinⅢ阳性细胞增多且分布较为规律,与时间呈现正相关性。说明脑络欣通能够促进NSCs向神经元细胞和胶质细胞分化,修复损伤细胞。

Biography

何玲,讲师,E-mail: helingtc@126.com

Funding Statement

2018年度新安医学教育部重点实验室开放基金(2018xayx03);国家中医药管理局“新安王氏内科流派传承工作室”建设项目(国中医药人教函{2012}228号);安徽中医药大学校级探索性科研项目(2016ts003)

Contributor Information

何 玲 (Ling HE), Email: helingtc@126.com.

王 键 (Jian WANG), Email: wangjian6301@163.com.

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