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. 2017 Jun;35(3):286–290. [Article in Chinese] doi: 10.7518/hxkq.2017.03.011

复发性阿弗他溃疡患者可溶性程序性死亡受体1及可溶性程序性死亡配体1表达与免疫功能的相关性

Soluble programmed death-1 and soluble programmed death ligand 1 protein expression and immune status in patients with recurrent aphthous ulcer

江 南 1, 罗 亮 1, 刘 莉 1, 孙 小琴 1, 姜 星 1, 蔡 扬 1,
Editor: 李 彩1
PMCID: PMC7030441  PMID: 28675014

Abstract

目的

了解复发性阿弗他溃疡(RAU)患者血清中可溶性程序性死亡受体-1(sPD-1)、可溶性程序性死亡配体-1(sPD-L1)蛋白表达与患者免疫功能状态的相关性,探讨sPD-1/sPD-L1在RAU免疫发病机制中的作用及意义。

方法

研究对象为30例RAU患者(轻型18例,重型5例,疱疹型7例)及18例健康人(对照组)。采用流式细胞术检测RAU患者外周血细胞免疫指标(CD3+、CD4+、CD8+、CD19+、CD16++56+),散射比浊法检测RAU患者体液免疫指标(IgG、IgA、IgM、C3、C4),酶联免疫吸附测定RAU患者及健康人血清中sPD-1、sPD-L1蛋白表达,并对sPD-1、sPD-L1表达水平与RAU患者免疫功能状况及临床特征的相关性进行分析。

结果

与正常值相比,RAU患者CD4+水平降低,IgM水平增高,差异有统计学意义(P<0.05)。RAU患者的sPD-1及sPD-L1蛋白表达水平高于对照组(P<0.05);进一步分析表明,轻型、重型RAU患者的sPD-1及sPD-L1蛋白表达水平高于对照组(P<0.05),而疱疹型RAU患者与对照组无统计学差异(P>0.05)。RAU患者sPD-1表达量与CD19+、C4存在正相关关系(r1=0.389,P1=0.034;r2=0.382,P2=0.037)。

结论

RAU患者以细胞免疫功能低下为主,同时伴有体液免疫功能的紊乱;RAU患者sPD-1、sPD-L1蛋白高表达在一定程度上通过影响PD-1/PD-L1信号通路参与RAU免疫机制的调节,可能在RAU的免疫发病机制中起着一定作用。

Keywords: 复发性阿弗他溃疡, 可溶性程序性死亡受体1, 可溶性程序性死亡配体1, 免疫


复发性阿弗他溃疡(recurrent aphthous ulcer,RAU)是最常见的口腔黏膜疾病,临床表现为口腔黏膜上周期性复发性的溃疡性损害。RAU的发病与遗传、免疫、环境、感染等多种因素有关,其中免疫因素被认为与该病的发生尤为密切[1],但具体发病机制目前仍不清楚。程序性死亡受体1(programmed death-1,PD-1)为免疫抑制分子,属于CD28家族成员的Ⅰ型跨膜蛋白,主要表达于外周CD4+、CD8+ T细胞、自然杀伤细胞(natural killer cell,NK)、巨噬细胞、B细胞及其树突状细胞表面,PD-1在无功能的T细胞上也呈高表达[2]。PD-1可抑制B细胞受体的刺激性信号,从而降低B细胞活化[3]。程序性死亡配体1(programmed death ligand 1,PD-L1)是PD-1的配体,属于B7超家族成员,广泛表达于活化的T细胞、B细胞,以及树突状细胞、巨噬细胞、间充质干细胞和培养的骨髓来源的肥大细胞[4]。PD-L1的生物学作用为通过与PD-1分子结合,并活化其胞内段ITIM基序,传递正向信号,负性调节T细胞的活化和功能。PD-1/PD-L1是目前免疫学分子领域研究的热点,其可以协助激活T细胞,又可以通过负性协同刺激信号下调免疫反应。近期研究表明,PD-1、PD-L1除了膜结合型外,还存在可溶性形式,即:可溶性PD-1(soluble programmed death-1,sPD-1)和可溶性PD-L1(soluble programmed death ligand 1,sPD-L1)。研究发现,sPD-1能高亲和力结合PD-L1,阻断PD-L1/PD-1的相互作用,从而增强T细胞的免疫效应[5];sPD-L1则可与T细胞表面PD-1受体相结合负性调控T淋巴细胞免疫应答,抑制T细胞增殖[6]。它们在多种免疫性疾病发生、发展中发挥重要的调节作用。目前已有新药CT-011和MDX-1106通过阻断PD-1而实现了对PD-L1/PD-1相互作用的抑制,从而增强T细胞的免疫效应来达到抗肿瘤的效果[7]

本研究通过了解RAU患者血清中sPD-1、sPD-L1蛋白表达情况,并分析其与RAU患者免疫功能状态的相关性,探讨sPD-1/sPD-L1在RAU免疫发病机制中的作用及意义。

1. 材料和方法

1.1. 研究对象

病例选自2012年9月—2013年9月间就诊于贵州医科大学附属医院口腔内科黏膜病专科门诊初诊为RAU的患者30例(RAU组)。其中,男性14例,女性16例;年龄16~72岁,平均年龄(44.03±1.58)岁。按RAU的临床分型标准[1],其中轻型18例,重型5例,疱疹型7例。纳入标准:1)符合RAU临床诊断(参考卫生部规划教材《口腔黏膜病学》 第 4 版);2)溃疡频繁发作病史半年以上(溃疡复发频率每月至少 1 次);3)本次溃疡发作不超过 72 h,并未进行过局部及全身治疗。排除标准:1)患者1 个月内使用过抗生素,3个月内使用过免疫制剂;2)伴有全身系统性疾病(糖尿病、心血管疾病、肝炎、精神病等)或免疫性疾病者;3)有牙龈炎、牙周炎或其他口腔黏膜疾病者;4)月经期、妊娠期妇女。

对照组18例,均为来自于贵州医科大学附属医院体检中心的年龄、性别与RAU组匹配的健康人。

所有的研究对象均被告知研究内容并签署知情同意书。

1.2. 主要设备及试剂

流式细胞仪、6色TBNK检测试剂盒(BD公司,美国),特定蛋白分析系统(Beckman Coulter公司,美国),酶标仪(BIO-RAD公司,美国 ),免疫球蛋白G/A/M检测试剂盒、补体C3/C4 检测试剂盒(贝克曼库尔特实验系统苏州有限公司),人sPD-1、sPD-L1酶联免疫吸附测定(enzyme linked immunosorbent assay,ELISA)试剂盒(上海创祥生物科技有限公司)。

1.3. 实验方法

1.3.1. 免疫检测

采集RAU组患者空腹状态下清晨9点前外周静脉血两管,一管抗凝血(3 mL)送至贵州医科大学附属医院中心实验室,采用流式细胞术检测患者外周血细胞免疫指标(CD3+、CD4+、CD8+、CD19+、CD16++56+);另一管非抗凝血(5 mL)送至贵州医科大学附属医院微生物免疫实验室,采用散射比浊法检测患者体液免疫指标(IgG、IgA、IgM、C3、C4),收集上清夜−80 °C冻存备用,都由相应实验室完成。以实验室标准值为正常对照。

1.3.2. sPD-1、sPD-L1蛋白表达

采用ELISA检测RAU组患者及对照组健康人血清中sPD-1和sPD-L1水平,按照说明书进行操作。sPD-1、sPD-L1标准品的浓度依次为0、15、30、60、120、240 pg·mL−1。以空白孔调零,利用酶标仪读取450 nm吸光度(A)值,根据绘制的标准曲线计算待测血清中sPD-1和sPD-L1的浓度。

1.4. 统计学处理

采用SPSS 19.0软件进行统计学分析,资料统计描述用均数±标准差或中位数(四分位间距)表示,两组之间差异比较采用独立样本t检验或秩和检验,sPD-1、sPD-L1表达水平与RAU患者免疫功能状况及临床特征的相关性分析采用Pearson或Spearman相关分析,P<0.05认为差异有统计学意义。

2. 结果

2.1. 免疫检测结果

流式细胞术检测结果表明,RAU组患者CD4+水平低于正常值,差异具有统计学意义(P<0.05)(表1);散射比浊法检测结果表明,RAU患者IgM水平高于正常值,差异具有统计学意义(P<0.05)(表2)。

表 1. RAU患者细胞免疫检测结果.

Tab 1 Cellular immune test results in patients with RAU

指标 RAU组 正常值 t P
CD3+ 67.41±10.75 70.85±6.23 −1.753 0.09
CD4+ 32.40±6.92 38.46±5.77 −4.797 0.000*
CD8+ 28.61±10.26 30.4±5.59 −0.958 0.346
CD19+ 10.24±4.34 9.42±3.04 1.034 0.310
CD16++56+ 20.23±10.75 22.37±7.90 −1.088 0.285

注:*RAU组与正常值相比,P<0.05。

表 2. RAU患者体液免疫检测结果.

Tab 2 Humoral immune test results in patients with RAU

指标 RAU组 正常值 t P
IgG 14.85±5.38 12.87±1.35 2.016 0.053
IgA 2.41±0.77 2.35±0.34 0.430 0.670
IgM 1.81±1.06 1.08±0.24 3.752 0.001*
C3 1.05±0.31 1.14±0.27 −1.653 0.109
C4 0.29±0.22 0.27±0.03 0.614 0.544

注:*RAU组与正常值相比,P<0.05。

2.2. sPD-1、sPD-L1蛋白的表达情况

ELISA检测结果(图1)表明,对照组sPD-1、sPD-L1分布较为集中,未见极端值,整体呈正态性分布趋势;RAU组sPD-1、sPD-L1整体呈非正态性分布,其中30例中有3例(2例轻型、1例疱疹型)升高趋势较为明显,RAU患者外周血血清中sPD-1、sPD-L1表达水平较对照组总体上表现为升高趋势,但个体之间存在着差异。秩和检验分析表明,RAU患者的sPD-1及sPD-L1蛋白表达水平高于对照组,差异有统计学意义(Z1=−2.794,P1=0.005;Z2=−2.834,P2=0.005)。

图 1. RAU患者血清中sPD-1、sPD-L1蛋白的表达.

图 1

Fig 1 Expression of sPD-1, sPD-L1 protein in patients with RAU

进一步分析RAU不同临床类型间的sPD-1及sPD-L1的表达,结果显示轻型、重型RAU患者的sPD-1及sPD-L1蛋白表达水平高于对照组,差异具有统计学意义(P<0.05),而疱疹型RAU患者与对照组无统计学差异(P>0.05)(表3)。

表 3. 不同临床类型RAU患者血清中sPD-1及sPD-L1蛋白的表达水平.

Tab 3 Expression level of sPD-1, sPD-L1 protein in RAU patients with different clinical features

组别 n sPD-1 sPD-L1
对照组 18 17.65(0.00~26.10) 22.79(1.19~28.29)
轻型RAU 18 32.25(22.74~41.52)* 33.49(24.08~38.49)*
重型RAU 5 35.89(32.63~39.93)* 32.31(30.64~38.29)*
疱疹型RAU 7 28.02(24.66~38.87) 31.34(16.13~35.02)

注:括号前为中位数,括号内为四分位间距。*与对照组相比,P<0.05。

pg·mL−1

2.3. RAU患者sPD-1、sPD-L1表达量与免疫指标的相关性分析

Spearman相关分析表明,RAU患者sPD-1表达量与CD19+、C4存在正相关关系(r1=0.389,P1=0.034;r2=0.382,P2=0.037);但sPD-L1表达量与细胞免疫和体液免疫指标均无相关关系(表4)。

表 4. RAU患者sPD-1、sPD-L1与免疫指标的相关性分析.

Tab 4 The correlate analysis between the expression of sPD-1, sPD-L1 and the immune system of RAU patients

指标 sPD-1
sPD-L1
r P r P
CD3+ 0.099 0.602 0.085 0.657
CD4+ 0.141 0.458 0.018 0.924
CD8+ 0.001 0.994 −0.028 0.883
CD19+ 0.389 0.034 0.051 0.789
CD16++56+ −0.234 0.214 −0.067 0.726
lgG −0.034 0.859 0.017 0.927
lgA −0.136 0.473 0.096 0.613
lgM −0.043 0.822 −0.224 0.234
C3 0.168 0.375 −0.262 0.161
C4 0.382 0.037 0.150 0.429

3. 讨论

RAU是最常见的口腔黏膜疾病,是一种局限口腔黏膜的溃疡性损害,患病率20%左右[1]。RAU具有周期性、复发性、自限性、灼痛明显等特点,给患者带来了很大的痛苦。RAU的病因及发病机制不明,推测其发生可能是机体在受到各种可疑致病因素如细菌、病毒或精神心理因素、激素的改变、生活不规律等的刺激下引发的异常免疫反应,致使口腔黏膜上皮局部发生免疫性的损伤、坏死而形成溃疡。目前认为RAU患者免疫调节失衡是其发生的重要原因。机体免疫中,T淋巴细胞亚群主管细胞免疫,是细胞免疫的主力军[8],其功能主要取决于T淋巴细胞总值(CD3+)及其亚群(CD4+、CD8+)的相对组成。在本研究中RAU患者以CD4+降低最为明显,提示在RAU的发作期,患者的细胞免疫功能处于低下状态,这与其他学者[9]的研究结果一致。免疫功能低下很可能会导致机体对外来致RAU的抗原或者是超抗原的抵御能力变弱。体液免疫是通过B淋巴细胞产生的特异性免疫球蛋白来实现的,免疫球蛋白(Ig)可分为五类,即IgG、IgA、IgM、IgD、IgE。其中,IgM在免疫球蛋白中相对分子质量最大,是初次体液免疫应答中抗感染的“先锋部队”,通过与补体结合,可起到溶解细菌和溶解血细胞的作用。C3、C4是补体系统中含量最多、最重要的一个组分。在本研究中,与正常值相比,RAU患者IgM升高,提示患者体液免疫功能处于增强状态。以上结果提示RAU发作期机体免疫状态是不正常的,不仅有细胞免疫的低下,而且还有体液免疫功能的增强。

协同刺激分子家族的新成员PD-1/PD-L1是目前免疫学分子领域中研究的热点,PD-1/PD-L1共刺激信号通过抑制下游细胞信号转导通路,导致细胞周期停滞在G0/G1期,抑制T细胞增殖和细胞因子分泌,负性调控免疫应答,在维持免疫耐受中起重要作用[10][11]。正常生理调节下适量的PD-1/PD-L1信号通路能抑制T细胞增殖及细胞因子产生,从而调节T、B细胞的相互作用,限制自身反应性T细胞效应功能和靶器官的损害[12],保护外周组织不受自身免疫对机体的攻击;但如果PD-1/PD-L1通路提供的负信号强度过强,又会过度地抑制T细胞的增殖、活化,从而导致细胞免疫功能缺陷。sPD-1与PD-L1或者sPD-L1与PD-1结合都能够影响PD-1/PD-L1信号通路,发挥免疫抑制作用。本研究结果显示,RAU患者血清中sPD-1、sPD-L1水平均高于正常。推测,一方面可能由于RAU患者体内异常升高的sPD-1过多的与PD-L1结合阻断了T淋巴细胞表面的PD-1与单核细胞、组织细胞等表面的PD-L1的结合,进而活化的CD4+T细胞逃避了PD-1/PD-L1的负性调控信号,导致T细胞持续活化、增殖,对自身抗原产生持续的免疫应答,发生自身组织损伤。另一方面可能由于RAU患者体内sPD-L1的异常增多与PD-1发生结合,使得抗原提呈细胞(antigen presenting cell,APC)细胞膜表面的PD-L1与T、B细胞表面的PD-1发生相互作用的频率、概率显著降低,进而活化T细胞不能及时获得足够强度的负性调控信号,导致T细胞过度活化增殖,对自身抗原引起持续的免疫反应,发生自身组织损伤[13]。本研究还进一步分析了RAU不同临床类型间的sPD-1及sPD-L1的表达,结果显示,轻型、重型RAU的sPD-1及sPD-L1蛋白表达水平都高于对照组(P<0.05),而RAU疱疹型与对照组差异无统计学意义,这可能与本研究疱疹型样本量小有关。对RAU患者细胞免疫和体液免疫与sPD-1水平的相关性进行分析,结果显示,sPD-1蛋白的高表达与RAU细胞免疫中CD19+、体液免疫中C4存在正相关关系(P<0.05)。加之上述免疫结果已经表明,RAU细胞免疫中CD4+细胞减少,RAU患者处于细胞免疫功能低下状态。这提示:sPD-1的高表达可能促使RAU患者的体液免疫功能增强。其原因可能是sPD-1能够参与血液循环,它们既能够影响邻近细胞又能够和远端细胞表面的受体相互结合,其发挥作用的广度和深度甚至超过了细胞膜表面的分子。研究[14][15]表明sPD-L1促使细胞周期停滞于G1期并促进T淋巴细胞的凋亡,这与本研究中RAU患者的实际免疫结果相符合。因此,sPD-1、sPD-L1分子可能都参与了RAU疾病的发生。

综上所述,本研究中RAU患者以细胞免疫功能低下为主,同时还伴有体液免疫功能的增强,且外周血中sPD-1和sPD-L1蛋白表达水平增高。sPD-1的高表达与CD19+、C4存在正相关关系,说明sPD-1蛋白的表达异常,其可能在一定程度上通过影响PD-1/PD-L1信号通路抑制RAU的细胞免疫,同时诱发RAU的体液免疫增强,在RAU免疫发病机制中起着一定的作用,但其具体的作用机制尚有待进一步的研究证实。

Funding Statement

[基金项目] 国家自然科学基金(81460104)

Supported by: The National Natural Science Foundation of China (81460104).

References

  • 1.陈 谦明. 口腔黏膜病学[M] 北京: 人民卫生出版社; 2012. pp. 64–67. [Google Scholar]; Chen QM. Oral mucosal diseases[M] Beijig: People's Medical Publishing House; 2012. pp. 64–67. [Google Scholar]
  • 2.Freeman GJ, Wherry EJ, Ahmed R, et al. Reinvigorating exhausted HIV-specific T cells via PD-1-PD-1 ligand blockade[J] J Exp Med. 2006;203(10):2223–2227. doi: 10.1084/jem.20061800. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
  • 3.Okazaki T, Maeda A, Nishimura H, et al. PD-1 immunoreceptor inhibits B cell receptor-mediated signaling by recruiting src homology 2-domain-containing tyrosine phosphatase 2 to phosphotyrosine[J] Proceed Natl Acad Sci. 2001;98(24):13866–13871. doi: 10.1073/pnas.231486598. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
  • 4.Keir ME, Butte MJ, Freeman GJ, et al. PD-1 and its ligands in tolerance and immunity[J] Annu Rev Immunol. 2008;26:677–704. doi: 10.1146/annurev.immunol.26.021607.090331. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
  • 5.贺 兰湘, 张 桂梅, 贺 宇飞, et al. sPD-1封闭PD-L促进抗肿瘤免疫的机制研究[J] 中华微生物学和免疫学杂志. 2006;26(5):463–467. [Google Scholar]; He LX, Zhang GM, He YF, et al. Mechanism of antitumor immunity of PD-L blockade with sPD-1[J] Chin J Microbiol Immunol. 2006;26(5):463–467. [Google Scholar]
  • 6.Shi B, Du X, Wang Q, et al. Increased PD-1 on CD4+ CD28- T cell and soluble PD-1 ligand-1 in patients with T2DM: association with atherosclerotic macrovascular diseases[J] Metabolism. 2013;62(6):778–785. doi: 10.1016/j.metabol.2012.12.005. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
  • 7.季 枚. PD-L1在非小细胞肺癌中表达的生物学作用及临床意义[D] 苏州: 苏州大学; 2016. [Google Scholar]; Ji M. Clinical significance of PD-L1 expression in human non- small-cell lung cancer and the study of its biological function[D] Suzhou: Suzhou University; 2016. [Google Scholar]
  • 8.Momin S, Flores S, Angel BB, et al. Interactions between programmed death 1 (PD-1) and cytotoxic T lymphocyte antigen 4 (CTLA-4) gene polymorphisms in type 1 diabetes[J] Diabetes Res Clin Pract. 2009;83(3):289–294. doi: 10.1016/j.diabres.2008.12.003. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
  • 9.张 华昌, 范 小平, 向 学熔, et al. 复发性阿弗他溃疡患者的T淋巴细胞免疫因素的研究[J] 重庆医学. 2010;39(10):1239–1240. [Google Scholar]; Zhang HC, Fan XP, Xiang XR, et al. Relationship between recurrent aphthous ulcer and immune factor of T lymphocyte[J] Chongqing Med. 2010;39(10):1239–1240. [Google Scholar]
  • 10.Nurieva RI, Liu X, Dong C. Yin-Yang of costimulation: crucial controls of immune tolerance and function[J] Immunol Rev. 2009;229(1):88–100. doi: 10.1111/j.1600-065X.2009.00769.x. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
  • 11.Keir ME, Liang SC, Guleria I, et al. Tissue expression of PD-L1 mediates peripheral T cell tolerance[J] J Exper Med. 2006;203(4):883–895. doi: 10.1084/jem.20051776. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
  • 12.Bhadra R, Gigley JP, Khan IA. PD-1-mediated attrition of polyfunctional memory CD8+ T cells in chronic toxoplasma infection[J] J Infect Dis. 2012;206(1):125–134. doi: 10.1093/infdis/jis304. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
  • 13.Okazaki T, Wang J. PD-1/PD-L pathway and autoimmunity[J] Autoimmunity. 2005;38(5):353–357. doi: 10.1080/08916930500124072. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
  • 14.赵 瑾. 可溶性PD-L1分子对T淋巴细胞功能的影响及其机制[D] 苏州: 苏州大学; 2015. [Google Scholar]; Zhao J. Effect of soluble programmed death ligand 1 on regulating the function of T lymphocytes and its mechanism[D] Suzhou: Suzhou University; 2015. [PubMed] [Google Scholar]
  • 15.王 师, 罗 龙龙, 吕 明, et al. PD-1/PD-L1信号通路及其在肿瘤中的应用[J] 国际药学研究杂志. 2015;42(2):143–147. [Google Scholar]; Wang S, Luo LL, Lü M, et al. PD-1/PD-L1 signaling pathway and its application in tumor[J] J Int Pharm Res. 2015;42(2):143–147. [Google Scholar]

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