Résumé
Les premières données épidémiologiques sur virus et asthme ont été obtenues dans les années 1970–1980 par l'isolement viral et la sérologie. Chez l'enfant, une infection virale est identifiable dans 24 à 31,9 % des cas, et dans 13,3 % des cas chez l'adulte. Les trois virus les plus fréquents sont les rhinovirus (RV), le virus respiratoire syncytial (VRS), et les virus parainfluenza (PIV), détectés dans 8,8, 6,4 et 6 % des cas. Par son pouvoir amplificateur, l'utilisation de l'outil PCR accroît la fréquence de détection virale, et semble particulièrement approprié dans l'asthme où la charge virale peut être réduite. Dans une étude sur les bronchiolites, nous avons montré que les VRS, PIV3, AdV et RV sont identifiés dans respectivement 39,3, 4,3, 1,4 et 3,9 % des cas par IF ou culture, et dans 62,4, 8,3, 10,8 et 12,6 % des cas par PCR. Deux enquêtes épidémiologiques récentes utilisent le diagnostic moléculaire dans les crises d'asthme. Chez 61 adultes, 27 (44 %) infections sont identifiées: 16 RV, 4 CV OC43, 3 VPI, 1 VRS, 1 VI, 1 Chlamydia psitacci. Chez l'enfant, une infection virale est détectée dans 226 cas (77 %): 84 RV, 38 CV, 21 VI, 21 VPI, 12 VRS. Nous avons réalisé une courte enquête rétrospective sur l'année 1997, en biologie moléculaire, sur 39 aspirations nasales d'enfants consultant pour asthme ou bronchite sifflante. La recherche des virus respiratoires par les techniques conventionnelles identifie 8 (20,5 %) infections virales: 3 à RV, 3 à VRS, 1 à VIB et 1 à VPI2. Après extraction des acides nucléiques, des techniques de PCR-hybridations ont été appliquées à ces échantillons pour détecter des séquences de VRS, AdV, RV, CV 229E, CV OC43, CP et MP. Vingt-six aspirations (54 %) sont positives par les seules techniques de biologie moléculaire: 11 VRS, 12RV, 2 enterovirus, 1 CV OC43. Au total, 34 (82 %) infections virales sont détectées chez ces enfants, et dans 6 cas une infection mixte VRS-RV est notée. Par rapport aux études de la littérature, on retrouve la prédominance des infections à RV, plus d'infections à VRS, probablement liée à l'utilisation ici de l'outil PCR, et une plus faible incidence des infections à CV.
Abstract
The first epidemiological data concerning viruses and asthma were obtained in the 1970s and 1980s by viral isolation and serology. Viral infection can be identified in 24 % to 31.9 % of children, and in 13.3 % of adults. The three most frequent viruses are rhinovirus (RV), respiratory syncytial virus (RSV), and parainfluenza viruses (PIV), detected in 8.8 %, 6.4 % and 6 % of cases, respectively. Due to its amplifying properties, the use of PCR increases the frequency of viral detection, and appears particularly appropriate in asthma where the viral load can be reduced. In a study of bronchiolitis, RSV, PIV3, AdV and RV were identified in 39.3 %, 4.3 %, 1.4 % and 3.9 % of cases, respectively, by IF or culture, and in 62.4 %, 8.3 %, 10.8 % and 12.6 % of cases, respectively, by PCR. Two recent epidemiological surveys used molecular diagnosis in asthma attacks. In a series of 61 adults, 27 (44 %) infections were identified: 16 RV, 4 CV OC43, 3 PIV, 1 RSV, 1 VI, 1 Chlamydia psitacci. In children, viral infection was detected in 226 cases (77 %) : 84 RV, 38 CV, 21 IV, 21 PIV, 12 RSV. We have performed a short retrospective survey for 1997, using molecular biology, on 39 nasal aspirates from children consulting for asthma or wheezing bronchitis. Testing for respiratory viruses by conventional techniques identified 8 (20.5 %) viral infections: 3 RV, 3 RSV, 1 IBV and 1 VPI2. After nucleic acid extraction, PCR-hybridization techniques were applied to these samples to detect RSV, AdV, RV, CV 229E, CV OC43, CP and MP sequences. Twenty six aspirates (54 %) were positive only on molecular biology techniques: 11 RSV, 12 RV, 2 enterovirus, 1 CV OC43. Overall 34 (82 %) viral infections were detected in these children, and a mixed RSV-RV infection was identified in 6 cases. Compared to the studies reported in the literature, we observed the same predominance of RV infections, more RSV infections, probably related to the use of PCR, and a lower incidence of CV infections.
Mots-Clés: Asthme, Rhinovirus, Coronavirus, Virus respiratoire syncytial, Adenovirus, PCR
Key-Words: Asthma, Rhinovirus, Coronavirus, Respiratory syncytial virus, Adenovirus, PCR
Références
- 1.Clough J.B., Holgate S.T. Episodes of respiratory morbidity in children with cough and wheeze. Am. J. Respir. Crit. Care Med. 1994;150:48–53. doi: 10.1164/ajrccm.150.1.8025771. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
- 2.Dales R.E., Schweitzer I., Toogood J.H. Respiratory infections and the autumn increase in asthma morbidity. Eur. J. Respir. Dis. 1996;9:72–77. doi: 10.1183/09031936.96.09010072. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
- 3.Dutau G., Brémont F., Juchet A., Rancé F., Nouilhan P. De la bronchiolite à l'asthme. Rev. Fr. Allergol. 1994;34:28–32. [Google Scholar]
- 4.Emre U., Roblin P.M., Gelling M. The association of Chlamydia pneumoniae infection and reactive airway disease in children. Arch. Pediatr. Adolesc. Med. 1994;148:727–732. doi: 10.1001/archpedi.1994.02170070065013. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
- 5.Freymuth F., Quibriac M., Petitjean J., Daon F., Amiel M.L. Les virus responsables d'infections respiratoires en pédiatrie. Bilan de 3480 aspirations nasales réalisées chez l'enfant en une période de six ans. Ann. Pédiatr. (Paris) 1987;34:493–501. [PubMed] [Google Scholar]
- 6.Freymuth F., Vabret A., Eugene G., Petitjean J., Mammes O., Gennetay E. Comptes rendus du 9e Colloque de Pont-à-Mousson. John Libbey Eurotext; Paris: 1997. Diagnostic moléculaire des infections virales respiratoires communes, pp. 103–108. Biologie prospective. [Google Scholar]
- 7.Freymuth F., Vabret A., Galareau-Salle F., Ferey J., Eugene G., Petitjean J., Gennetay E., Brouard J., Jokik M., Duhamel J.F., Guillois B. Detection of respiratory syncytial virus, parainfluenzavirus 3, adenovirus and rhinovirus in respiratory tract of infants by polymcrase chain reaction and hybridization. Clin. Diagn. Virol. 1997;8:31–40. doi: 10.1016/s0928-0197(97)00060-3. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
- 8.Gardner P.S., McQuillin J. Application of immunofluorescent antibody technique in the rapid diagnosis of respiratory syncytial virus infection. Br. Med. J. 1968;2:340–341. doi: 10.1136/bmj.3.5614.340. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
- 9.Gerna G., Achill G., Cereda P.M. Determination of coronavirus 229E antibody by an immune-adherence hemagglutination method. J. Med. Virol. 1978;2:215–223. doi: 10.1002/jmv.1890020305. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
- 10.Gil J.C., Cedillo R.L., Mayagoitia B.G., Paz M.D. Isolation of Mycoplasma pneumoniae from asthmatic patients. Ann. Allergy. 1993;70:23–25. [PubMed] [Google Scholar]
- 11.Hable K.A., Washington J.A., Hermann E.C. Bacterial and viral flora. Comparison of findings in children with acute respiratory tract disease and in healthy controls during winter. Clin. Pediatr. 1971;10:199–203. doi: 10.1177/000992287101000405. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
- 12.Horn M.C.E., Yealland S.J. Significance of respiratory virus isolations. Arch. Dis. Child. 1974;49:516–519. doi: 10.1136/adc.49.7.516. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
- 13.Horn M.E.C., Brain E.A., Gregg I., Inglis J.M., Yealland S.J., Taylor P. Respiratory viral infection and wheezy bronchitis in childhood. Thorax. 1979;34:23–28. doi: 10.1136/thx.34.1.23. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
- 14.Johnston S.L., Pattemore P.K., Sanderson G., Smith S., Lampe F., Josephs L., Symington P., O'Toole S., Myint S.H., Tyrrell D.A.J., Holgate S.T. Community study of role of viral infections in exacerbations of asthma in 9–11 years old children. Br. Med. J. 1995;310:1225–1229. doi: 10.1136/bmj.310.6989.1225. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
- 15.Lina B., Valette M., Foray S., Luciani J., Stagnara J., See D.M., Aymard M. Surveillance of community-acquired viral infections due to respiratory viruses in Rhones-Alpes (France) J. Clin. Microbiol. 1996;34:3007–3011. doi: 10.1128/jcm.34.12.3007-3011.1996. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
- 16.McIntosh K., Ellis E.F., Hoffman L.S., Lybass T.G., Eller J.J., Filginiti V.A. The association of viral and bacterial respiratory infections with exacerbations of wheezing in young asthmatic children. J. Pediatr. 1973;82:578–590. doi: 10.1016/S0022-3476(73)80582-7. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
- 17.Mayaud C. Asthme et Chlamydia pneumoniae. Une perspective d'avenir pour les macrolides en général et pour la roxithromycine en particulier. Presse Med. 1997;26(SII):27–29. [PubMed] [Google Scholar]
- 18.Mitchell I., Inglis J.M., Simpson H. Viral infection as a precipitant of wheeze in children: combined home and hospital study. Arch. Dis. Child. 1978;53:106–111. doi: 10.1136/adc.53.2.106. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
- 19.Monto A.S., Ullman B.M. Acute respiratory illness in an American community. JAMA. 1974;227:164–169. [PubMed] [Google Scholar]
- 20.Nicholson K.G., Kent J., Ireland D.C. Respiratory viruses and exacerbations of asthma in adults. Br. Med. J. 1993;307:982–986. doi: 10.1136/bmj.307.6910.982. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
- 21.Pattemore P.K., Johnston S.L., Bardin P.G. Viruses as precipitants of asthma symptoms. I. Epidemiol. Clin. Exp. Allergy. 1992;22:325–336. doi: 10.1111/j.1365-2222.1992.tb03094.x. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
- 22.Puhakka T., Makela M.J., Kaukonen J., Uhari M., Savoleinen J., Terho E.O., Ruuskanen R. The common cold: Effects of intranasal fluticasone propionate treatment. 37th ICAAC; Toronto; 1997. 138H, H84. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
- 23.Réfabert L., Mahut B., de Blic J., Scheinmann P. Infections respiratoires aigues virales et asthme. Rev. Pral. (Paris) 1996;16:2077–2082. [PubMed] [Google Scholar]
- 24.Stewart J.N., Mounir S., Talbot P.J.J. Detection of coronaviruses by the polymerase chain reaction. In: Becker Y., Darai G., editors. Diagnosis of human viruses by polymerase chain reaction technology. Springer Verlag; 1992. pp. 316–327. [Google Scholar]