干细胞局部应用对缺损面神经再生效果的系统评价

Abstract

目的

系统评价干细胞对面神经缺损的修复效果。

方法

在Pubmed、Cochrane Library、Web of Science、Embase、Scopus及中国生物医学文献数据库检索关于评价干细胞对动物面神经再生效果的所有原始研究，2名专业人员独立完成文献筛选、数据提取及偏倚风险评估。使用RevMan 5.3软件及随机效应模型进行统计分析，分析结果以均数差（MD）及95%可信区间（CI）的形式呈现。对面神经的功能性评估（胡须运动评分、面瘫评分）及组织学评估（有髓纤维密度、纤维直径、髓鞘厚度、G比值）结果进行Meta分析。

结果

从6个数据库共检索出4 614篇文献，15篇被纳入了Meta分析。干细胞组的胡须运动评分、面瘫评分、有髓纤维密度、髓鞘厚度均高于非干细胞组（P<0.05），G比值小于非干细胞组（P=0.001），纤维直径二者无统计学差异（P=0.08）。

结论

干细胞具有促进面神经再生的潜能。

面神经是以运动神经为主的混合神经，主要支配面部表情肌和传导舌前2/3的味觉及支配舌下腺、下颌下腺和泪腺的分泌[1]。面神经损伤是颌面部较常见的损伤类型之一。腮腺肿瘤手术、创伤和岩骨手术等均有可能伤及面神经[2]。面神经损伤可引起面部肌肉运动障碍，导致额纹消失、眼睑闭合不全、鼻唇沟消失、鼓腮无力、口角下垂及流涎等功能障碍[1]，给患者带来极大的心理压力。面神经断裂后，可通过吻合神经断端的方式对其进行修复。然而，当神经缺损较多、缝合张力过大时，首先是要缩小缺损间隙。虽然许多现代显微外科技术可用于面神经修复，但其对面部功能的修复效果有时仍不能令人满意，甚至有可能产生骨性麻痹综合征[3]。自体神经移植一直都是修复神经缺损的金标准[4]。然而，自体神经移植技术也存在供体神经数量有限、瘢痕形成、伤口感染、伤口疼痛、手术时间相对较长等局限性。因此，为临床医务人员及患者提供行之有效的修复面神经缺损的方法是一个亟待解决的问题。

基因和组织工程的应用使学者们联想到使用神经组织工程技术进行面神经修复。神经组织工程主要包括三个方面：人工神经导管、神经生长因子和细胞[5]。在过去的二十年里，使用干细胞修复周围神经损伤持续受到学者们的关注[6]。干细胞是一类具有多向分化潜能和自我复制能力的原始未分化细胞，是形成哺乳类动物各组织器官的原始细胞[7]。干细胞主要通过发挥抗炎作用，分泌生长因子，替代雪旺细胞（Schwann cells，SCs）和运动神经元等方式促进神经再生[6]。神经干/祖细胞（neural stem/progenitor cells，NS/PCs）在治疗神经性疾病（如脊髓损伤，脑损伤，周围神经损伤）方面具有应用前景[8]–[9]。神经干细胞（neural stem cells，NSCs）具有以下特征：1）具有多向分化潜能及可形成3种成熟的神经细胞（神经元、星形胶质细胞和少突胶质细胞）；2）在神经组织损伤后产生同源的新细胞；3）可以被连续移植；4）可以自我更新[10]。由于SCs能够促进髓鞘的形成，因此其在神经再生过程中起着重要的作用[11]。间充质干细胞（mesenchymal stem cells，MSCs）是一种能分化为雪旺样细胞的多能成体干细胞[12]–[14]，常见的为脂肪间充质干细胞（adipose-derived stem cells，ADSCs）和骨髓间充质干细胞（bone marrow mesenchymal stem cells，BMSCs），分别是来源于脂肪组织和骨髓的多能成体干细胞。充足的来源、易获得性、能快速增殖、可多向分化及易于与宿主整合等特点，使得其成为促进神经再生的一个理想的细胞来源[12],[14]。脂肪来源、骨髓来源、海马神经来源的干细胞促进周围神经再生的实验已取得理想的结果[15]–[16]。其他来源的干细胞，如牙髓干细胞（dental pulp stem cells，DPSCs）、牙龈间充质干细胞（gingiva-derived mesenchymal stem cells，GMSCs）、人类嗅黏膜干细胞（human olfactory stem cells，HOSCs）、基质血管成分细胞（stromal vascular fraction，SVF）在动物模型上也收到了令人满意的神经再生效果[7],[17]–[20]。

虽然关于干细胞促进面神经再生的基础实验取得了令人满意的结果，但人们仍不能确定干细胞是否能够真正有效地促进面神经再生，是否有必要对这一领域进行进一步探索，且需要后效评估以往实验中动物模型的使用是否得当，降低将动物实验所获得的结果引入临床的风险。因此，有必要针对干细胞是否能够促进动物面神经再生这一问题进行系统的评价。本文的主要目的即为系统地评价干细胞对面神经缺损的组织学修复效果。

1. 材料和方法

本研究系统评价是遵照系统评价和Meta分析优先报告的条目（Preferred Reporting Items for Systematic Reviews and Meta Analyses，PRISMA）的规范来制定的[21]。

1.1. 注册

参与研究的人员在实施系统评价前制定了详细的计划书，于2018年10月25日在PROSPERO网站（https://www.crd.york.ac.uk/prospero/）提交注册申请，11月16日注册成功。注册编号是CRD42018113065。

1.2. 纳入及排除标准

根据本系统评价的目的，研究人员制定了如下标准来选择合适的研究。纳入标准：1）关于干细胞促进面神经再生的研究；2）主要干预措施为干细胞；3）神经完全断裂的研究；4）动物实验。排除标准：1）未达到纳入要求的研究；2）主要干预措施不是干细胞；3）神经拉伤等无缺损的研究；4）主要修复对象不仅为面神经，还包括周围组织的研究；5）动物实验以外的研究（病例报告、综述、评论等）；6）体外研究；7）无法获得全文的研究；8）数据结果不可靠的研究；9）重复报告。

1.3. 检索策略

为了全面广泛地搜集原始资料，研究人员在Pubmed、Cochrane Library、Web of Science、Embase、Scopus及中国生物医学文献数据库检索了2018年10月25日前的所有原始研究。在英文数据库中，将干细胞与面神经及面神经缺损的各种英文表达方式作为关键词，使用布尔逻辑“AND”进行检索。中文检索式：干细胞和面神经。同时，研究人员手工检索了所纳入研究的参考文献。

1.4. 数据提取及合成

由2名专业的筛选者各自独立完成文献筛选工作。首先运用EndNote X8软件查找并排除重复文献；再由2名筛选者阅读文献的题目和（或）摘要，行初步筛选；最后，2名筛选者阅读剩余文献全文行进一步筛选，同时标注文献排除的理由。当2人对文献是否纳入（或排除）存在争议时，通过征求第三方专业人员的意见达成了共识。对所有纳入的研究进行了描述性分析，将实验组使用导管和干细胞、对照组（非干细胞组）仅使用导管，且2组均含有可用数据的研究纳入Meta分析。针对有多个随访时间的研究，仅提取最后时间点的数据。当结果以图形而非具体数据的形式展现出来的时候，使用GetData Graph Digitizer 2.26软件提取出了所需数据。当原始研究中未给出具体的标准差信息时，使用给定的标准误、可信区间、t值、P值等信息进行标准差的推断[22]。对于使用各种方法仍无法获得标准差、均数及各组样本量等具体信息的研究，不纳入Meta分析。当研究设立多个以干细胞为干预措施的实验组时，将各实验组视为亚组，并对亚组数据进行整合形成一个实验组。若出现一个以上对照组，按同样方法处理[22]。使用四舍五入法保留两位小数。

1.5. 偏倚风险评估与质量评价

2名研究人员采用动物实验系统评价研究中心（the Systematic Review Centre for Laboratory Animal Experimentation，SYRCLE）的动物实验偏倚风险评估工具[23]，按照低风险、高风险及不确定风险对每一篇纳入的研究独立进行偏倚风险评估及质量评价。

1.6. 数据分析

采用RevMan 5.3软件及随机效应模型进行统计分析，结果以均数差（MD）及95%可信区间（confidence interval，CI）的形式呈现。

对面神经的功能性评估（胡须运动评分、面瘫评分）及组织学评估（有髓纤维密度、纤维直径、髓鞘厚度、G比值）结果进行Meta分析，其中有髓纤维密度是指在100 000 mm²下有髓纤维的数目。使用I²对异质性的大小进行分析，I²<25%被视为低异质性，I²<50%异质性可以被接受，I²>75%被视为高异质性。

2. 结果

2.1. 检索结果

从6个数据库中共检索出4 614篇文献，去除重复研究后剩余3 580篇。阅读题目和（或）摘要去除3 534篇，另有7篇研究无法获取全文而排除，剩余39篇文献，阅读全文后排除7篇，其中2篇未详细报告实验方法，2篇数据雷同而不真实，1篇研究结果无数据及图片等证据，1篇为人体研究，1篇为网状神经缺损。剩余32篇文献被纳入研究，通过手工检索纳入研究的参考文献，未发现32篇研究以外符合纳入标准的研究。32篇中，15篇研究被纳入Meta分析。

2.2. 研究特征

各研究的基本情况存在明显的差异。32篇原始研究使用了不同动物类型的面神经缺损模型。大鼠是最受青睐的动物（SD大鼠11篇，Lewis大鼠7篇，Wistar大鼠3篇），其次是兔子（新西兰白兔8篇，家兔1篇），最后是狗和豚鼠（各1篇）。在32篇研究中，可以确定的动物数目为1 032只，其中有2篇研究未明确报道动物数目。在各研究中，动物的年龄、性别、体重等存在差异，有一些研究未报道动物基线特征的完整信息。各研究人为地去除部分面神经主干或分支以形成动物面神经缺损模型。其中多以面神经颊支的破坏为主（23篇），其次依次为面神经主干（5篇）、面神经下颌缘支（2篇）、面神经颞支（1篇）及混合型破坏（1篇）。动物模型中神经间隙的长度在零至十几毫米不等，以5~10 mm为最多（20篇），另有7篇未明确缺损长度或只给出了所切除神经的长度而非神经切除并收缩之后所留下的间隙长度。其中，0 mm表示神经切断后进行的是神经吻合术。32篇研究主要采用了3种神经修复方法。神经导管修复神经缺损是最常用的方法（27篇），其他方法有神经吻合修复（3篇）、神经移植修复（1篇）、自体筋膜修复（1篇）。使用的导管有硅胶导管（10篇），聚乳酸-羟基乙酸共聚物（poly lactic-co-glycolic acid，PLGA）导管（3篇），去细胞动脉导管（2篇），静脉导管、去细胞坐骨神经导管、壳聚糖导管、胶原导管、聚乙醇酸（polyglycolic acid，PGA）导管、Gore-Tex导管、AxoGuard导管、羟磷灰石（hydroxyapatite，HA）-胶原导管、PGA-胶原导管和3D打印导管（各1篇），另有2篇未注明使用的导管类型。干细胞的类型包括：脂肪源性细胞（9篇），BMSCs、神经源性细胞、牙髓干细胞（各6篇），MSCs（2篇），SVF、神经引导的人间充质干细胞（neural-induced human mesenchymal stem cells，N-iHMSCs）（各1篇）。使用的细胞剂量以1×10⁵~10×10⁵（15篇）为最多，另有1篇使用了1×10³、1×10⁵、1×10⁷作为实验组细胞剂量，7篇未报道细胞剂量（7篇）。回访时间数天到数月不等，以8~16周（23篇）为最多，另有1篇未报道随访时间。所进行的组织学评估包括有髓纤维密度、纤维直径、髓鞘厚度、G比值。纳入研究的基本信息见表1。

表 1. 纳入研究的基本信息.

Tab 1 The basic information of the included studies

作者及年份	动物种类	基线情况	总样本量	神经类型	间隙长度/mm	修复材料或方法	细胞类型	细胞剂量	随访时间
Abbas 2016[24]	SD大鼠	雄性	12	面神经主干，颊支		坐骨神经	ADSCs	1×106	90 d
Batioglu-Karaaltin 2016[7]	Wistar大鼠	雌性，350~380 g	27	面神经主干	2	导管	HOSCs	8×106	10周
Chen 2018[25]	新西兰兔	7~8月，雄性，（3.0±0.5）kg	45	颊支		导管	DPSCs	5×106	10周
Cho 2010[26]	豚鼠		32	面神经主干	0	神经缝合	N-iHMSCs	1×105	6周
Costa 2013[27]	Wistar大鼠	成年，雄性，250~300 g	35	下颌缘支	5	PGA导管	BMSCs	4×105	6周
Ghoreishian 2013[28]	伊朗杂种犬	20~25 kg	7	颞支	>7	Gore-Tex导管	ADSCs	2×107	12周
Guo 2009[16]	家兔	任何性别，2~3 kg	36	颊支	10	壳聚糖导管	NSCs	1×106	12周
Kwon 2009[29]	SD大鼠		20	面神经主干	>5	硅胶导管	ADSCs		8周
Ma 2017[30]	SD大鼠	成年，雌性，200~220 g	100	颊支	8	胶原导管	NS/PCs	1×106	12周
Matsumine 2014[31]	Lewis大鼠	8周，200~250 g	25	颊支	7	硅胶导管	DFATs	5×104	13周
Matsumine 2017[32]	Lewis大鼠	8周，雄性，200~250 g	30	颊支	7	硅胶导管	SVF	1×103	13周
								1×105
								1×107
Salomone 2013[33]	Wistar大鼠	雄性，250~300 g	48	下颌缘支	3	硅胶导管	BMSCs	4×105	6周
Sasaki 2008[18]	Lewis大鼠	8周	38	颊支	7	硅胶导管	DPSCs	1×105	12 d
Sasaki 2011[34]	Lewis大鼠	8周	10	颊支	7	PLGA导管	DPSCs	5×105	5 d
Sasaki 2014[17]	Lewis大鼠	成年，雄性	34	颊支	7	硅胶导管	DPSCs	1×105	13周
Satar 2009[35]	SD大鼠	12~16周，雌性，220~228 g	15	颊支	0	神经缝合	BMSCs		6月
Satar 2010[36]	SD大鼠	12~16周，雌性，220~228 g	3	颊支	0	神经缝合	BMSCs		9月
Shi 2009[5]	SD大鼠	成年，雌性，200~250 g	96	颊支	8	PLGA导管	NSCs，SCs	1×105	12周
Shi 2012[37]	SD大鼠	雌性，200~250 g	20	颊支	>5	PLGA导管	NSCs		12周
Shimizu 2018[20]	Lewis大鼠	8周，雄性，200~250 g	24	颊支	7	PGA-胶原导管	ADSCs，SVF	1×105	13周
Sun 2011(1) [15]	SD大鼠	5~6周，雌性，100~150 g	40	颊支	8	去细胞动脉导管	ADSCs	1×105	8周
Sun 2011(2) [38]	SD大鼠	年轻，雌性，100~120 g	60	颊支	8	去细胞动脉导管	ADSCs，SCs	5×105	8周
Sun 2018[39]	新西兰兔	4月，雌性，3.0~3.5 kg	32	颊支	10	去细胞坐骨神经	ADSCs	2×104	8周
Wang 2011[40]	新西兰兔	成年，雌性，2.5~3.2 kg	54	颊支	10	自体静脉导管	BMSCs	3×106	16周
Wang 2012[41]	新西兰兔	任意性别，2.5~3.0 kg	16	颊支	7	硅胶导管	DPSCs	1×104
Watanabe 2017[42]	Lewis 大鼠	8周，雄性	77	颊支	7	硅胶导管	ADSCs，SCs	1×105	13周
Yan 2004[43]	新西兰兔	任意性别，2.0~3.0 kg	22	面神经主干	6	自体筋膜	NSCs		6周
Yu 2005[44]	新西兰兔		15	颊支	>12	硅胶导管	BMSCs	1.6×104	16周
Zhang 2008[45]	新西兰兔	成年，2.0~2.5 kg	39	面神经主干	5	HA-胶原导管	NSCs	4×106	12周
Zhang 2014[46]	新西兰兔	成年，2.5~3.5 kg	20	颊支		硅胶导管	DPSCs		3月
Zhang 2018(1) [47]	SD大鼠	成年，雌性，200~250 g		颊支	6	AxoGuard导管	GMSCs，iNCSCs	5×105	12周
Zhang 2018(2) [19]	SD大鼠	8周，雌性，200~250 g		颊支	5	3D打印导管	GMSCs		12周

注：DFATs为脂肪来源转分化的脂肪细胞；iNCSCs为引导的神经嵴样干细胞。

2.3. 偏倚风险评估

偏倚风险评估的结果见图1。

图 1. 偏倚风险评估.

Fig 1 Risk of bias assessment

多数研究缺乏保证动物实验质量的关键信息。所有研究均未提到“分配隐藏”和“随机分组”，存在高风险。个别研究提到“实施者施盲”、“随机结果评估”及“评估者施盲”等，但未详细阐述具体方法。仅少数研究阐述了“随机序列产生”的具体方法。关于“基线特征”，多数研究对其做了交代，但其中一些研究未同时报道年龄、性别和体重三者的信息。一些研究未报告术后动物存活情况，结局数据不完整。“选择性结果报告”这一方面较为理想，多数研究不存在这一隐患。多数研究提到了伦理、基金支持、利益冲突其中之一，在“其他风险”这一方面存在着不确定风险。

2.4. Meta分析

15篇研究被纳入Meta分析，可确定的动物总量为719只。由于并不是所有的动物都会做每一项检测，因此Meta分析以该项检测对应的动物数目为相应组分的样本量。

2.4.1. 胡须运动评分

5篇文献使用了胡须运动评分量表对面神经的功能进行了评估。Meta分析结果显示，实验组的胡须运动评分高于对照组（MD=0.81，95%CI 0.25~1.37，P=0.005），但存在明显的异质性（I²=86%，P<0.000 1）（图2）。

图 2. 2组胡须运动评分的Meta分析.

Fig 2 Meta-analysis of the score of vibrissae movement

2.4.2. 面瘫评分

3篇文献使用了面瘫评分量表对面神经的功能进行了评估。Meta分析结果显示，实验组的面瘫评分高于对照组（MD=1.39，95%CI 1.20~1.58，P<0.000 01），无明显异质性（I²=0，P=0.56）（图3）。

图 3. 2组面瘫评分的Meta分析.

Fig 3 Meta-analysis of the score of facial paralysis

2.4.3. 有髓纤维密度

5篇文献对有髓纤维密度进行了评估。Meta分析结果显示，实验组的有髓纤维密度高于对照组（MD=81.32，95%CI 28.32~134.32，P=0.003），但异质性过大（I²=94%，P<0.000 01）（图4）。

图 4. 2组有髓纤维密度的Meta分析.

Fig 4 Meta-analysis of the density of myelinated fibers

2.4.4. 纤维直径

6篇文献对纤维直径进行了评估。Meta分析结果显示，实验组和对照组的纤维直径无统计学差异（MD=1.25，95%CI -0.15~2.66，P=0.08），且同时存在明显的异质性（I²=98%，P<0.000 01）（图5）。

图 5. 2组纤维直径的Meta分析.

Fig 5 Meta-analysis of the diameter of fibers

2.4.5. 髓鞘厚度

11篇文献对髓鞘厚度进行了评估。Meta分析结果显示，实验组的髓鞘厚度大于对照组（MD=0.16，95%CI 0.10~0.23，P<0.000 01），但存在明显的异质性（I²=88%，P<0.000 01）（图6）。

图 6. 2组髓鞘厚度的Meta分析.

Fig 6 Meta-analysis of the myelination thickness

2.4.6. G比值

7篇文献对G比值进行了评估。Meta分析结果显示，实验组的G比值小于对照组（MD=-0.06，95%CI -0.10~-0.02，P=0.001），但存在一定的异质性（I²=43%，P=0.10）（图7）。

图 7. 2组G比值的Meta分析.

Fig 7 Meta-analysis of the G ratio

3. 讨论

关于干细胞促进面神经再生的研究现还局限于动物模型及体外研究，鲜有关于干细胞促进面神经再生的临床研究。人们仍不能够确定干细胞对面神经的修复效果究竟如何，其是否有希望被应用于临床，如何加快其应用于临床的进程。目前除了Euler de Souza Lucena等[2]写过一篇关于干细胞与组织工程修复面神经的系统评价外，并没有关于此方面的其他系统性总结。受当时文献数目的限制，Euler de Souza Lucena等[2]仅进行了定性描述，而无定量分析。其后有许多新的基础研究被报道出来，因此有必要针对干细胞对面神经再生的效果进行一次新的系统性评价。

动物模型中评估面神经再生情况的方法主要为功能性评估、电生理学评估及组织学评估。本研究中发现，关于面神经再生的电生理学评估研究非常有限，且测量方法存在不容忽视的差异。因此，本系统评价仅对面神经的功能性评估（胡须运动评分，面瘫评分）及组织学评估（有髓纤维密度，纤维直径，髓鞘厚度，G比值）结果进行Meta分析。其中，G比值代表纤维成熟的程度，在一定范围内越小代表纤维的成熟度越高。本研究结果显示，干细胞组的胡须运动评分、面瘫评分、有髓纤维密度、髓鞘厚度均高于非干细胞组（P<0.05），G比值小于非干细胞组（P=0.001）。无论是功能性评估结果，还是组织学评估结果，都支持干细胞促进面神经再生的这一理论，证实了干细胞在促进面神经再生方面具有潜在的作用。

面神经再生的关键在于新轴突及髓鞘形成、神经重新支配靶器官。其中SCs是神经再生及功能恢复中不可或缺的重要角色[48]–[49]。它们产生包括神经生长因子、脑源性神经营养因子及grial-cell-line源性神经营养因子在内的营养因子及轴突再生不可或缺的黏性细胞外基质[50]。神经损伤后，SCs由髓鞘型转化为生长型，进而增殖并形成Bungner带以引导轴突再生到原来的位置[51]。神经完全断裂要比非完全断裂难以修复得多，因为神经离断后，断端会向两端收缩从而形成间隙[52]–[53]，炎症细胞迁移到损伤部位，并在局部缺氧的情况下分泌血管内皮生长因子，刺激早期内皮细胞的生长[54]–[56]。之后SCs脱离神经干并利用新形成的血管网引导轴突由一端向另一端生长[34]–[36]。然而，提取过程产生的疼痛、供体部位的发病及体外细胞培养的难度无一不限制了SCs在临床的应用[57]。目前干细胞被视为神经再生的重要替代来源。

NSCs被视为一种有前途的细胞，其由胚胎或成年哺乳动物的脑分离而来，并能够分化为成熟神经元、星形胶质细胞或少突胶质细胞[11],[58]–[59]。然而，NSCs的应用受到宿主组织中细胞存活率低的限制。有学者将NS/PCs移植到宿主损伤部分，在最初的几周里其活细胞的数量竟降低至4%以下[60]–[61]。ADSCs和BMSCs均为多能间充质干细胞，可分化为中胚层或外胚层来源的组织[62]–[65]。ADSCs和BMSCs可以通过较小的侵入性程序获得，以较高的增殖率培养，转分化为SCs，促进髓鞘形成，是细胞移植及促进周围神经再生的优先选择[63],[66]。通过重组成体细胞形成的多能干细胞（induced pluripotent stem cells，iPSCs）是干细胞领域的另一项重要技术[67]–[68]。有学者已经利用iPSCs细胞系获得了功能和表型正常的运动神经元[67],[69]–[73]。

人们对其他来源干细胞的研究也在不断完善，不断地有新的理论及观点涌出。近年来，3D打印技术在组织修复领域内的应用变得逐渐广泛，也不乏使用3D打印技术结合干细胞成功进行神经再生的案例[19],[74]。Zhang等[19]通过3D打印无纤维神经导管结合GMSCs实现了大鼠缺损面神经的再生。使用GMSCs细胞团引导生成的3D神经导管，不仅表达了神经标志物β-微管蛋白Ⅲ和SCs标志物S-100β，而且表现出接近于自体神经移植的缺损面神经修复效果。然而，使用3D打印技术进行面神经修复仍然存在一些的问题，例如需要：优化细胞团培养的时间及培养基，对该技术所修复的神经进行功能性评估，验证该技术是否具有可重复性，对细胞的作用进行追踪，评估该技术结合各种神经导管对神经的修复效果[19]。因此未来的研究有必要针对以上问题进行探索，尤其是需要比较3D打印神经导管与自体神经移植的功能性修复效果。

本文的系统评价研究结果表明，干细胞具有促进面神经再生的趋势。然而想要得出确切的结论，尚需要对这一领域进行进一步探索。建议今后的研究设计，应兼顾对神经修复的功能性、组织学及电生理学方面的评估；设立阳性对照（如自体神经移植）、阴性对照（如不进行神经缺损的修复）及其他实验组（如合成导管等）；重视动物实验的质量以及数据的完整性等。同时，为了最大程度地增加干细胞应用于临床的安全性，今后还需要在干细胞应用的安全性及副作用方面加以探索。

Funding Statement

[基金项目] 重庆高校创新团队建设计划（CXTDG201602006）

Supported by: Program for Innovation Team Building at Institutions of Higher Education in Chongqing (CXTDG201602006).