丙酮酸激酶缺乏症(PKD)是一种常见的遗传性红细胞酶病,可引起遗传性非球形红细胞溶血性贫血[1]。PK活性检测是诊断PKD的传统方法,然而PK活性易受患者年龄、同工酶代谢及检测方法的影响,并且部分患者的PK活性降低不明显甚至代偿性升高,给临床诊断带来困难[2]。基因检测则不受上述因素的影响,目前已成为确诊PKD的重要手段。我们收治了2例先天性溶血性贫血患者,常规溶血检查均正常,通过二代靶向测序技术诊断为双重杂合子PKD。现报道如下并进行文献复习。
病例资料
例1,女,3岁,籍贯山东。患儿于出生后24 h即出现重度黄疸,总胆红素(TBIL)501 µmol/L,间接胆红素(IBIL)482 µmol/L,HGB 60 g/L。考虑为“溶血性贫血”,给予输注红细胞及对症治疗,黄疸有所减退。曾于院外行Coombs试验、酸溶血试验、红细胞渗透脆性试验(EOF试验)、酸化甘油溶血试验(AGLT50试验)及红细胞酶相关检查,均未发现异常。曾给予泼尼松治疗4个月,无效。患儿1岁前每月输注红细胞0.5 U,2岁时每月输注红细胞1 U,目前1个半月输注红细胞2 U。其父母无黄疸、贫血病史。入院查体:发育正常,中度贫血貌,皮肤与巩膜重度黄染,心尖部可闻及Ⅱ级收缩期杂音,肝脾肋缘下未触及。入院相关检查,血常规示:WBC 7.24×109/L,HGB 74 g/L,PLT 232×109/L,网织红细胞比例(Ret)31.34%。生化检查示:TBIL 111.4 µmol/L,IBIL 102.3 µmol/L,LDH 1 540 U/L。溶血相关检测:EOF试验、伊红-5′-马来酰亚胺标记的流式细胞术(EMA试验)、AGLT50试验、Coombs试验、酸溶血试验、冷凝集素试验、变性珠蛋白小体检查、血红蛋白A2定量、抗碱血红蛋白检测、血红蛋白电泳分析、高铁血红蛋白还原试验、热不稳定试验、异丙醇试验、变性珠蛋白试验、葡萄糖-6-磷酸酶活性检测、丙酮酸激酶活性检测、红细胞5′-嘧啶核苷酸酶活性检测均正常。B超检查:中度大,脾长10.4 cm,厚3.4 cm。其父母上述检查均未发现异常。二代靶向测序:检测红细胞膜缺陷相关基因SPTB、SPTA1、EPB41、EPB42、ANK1、SCL4A1;红细胞酶缺陷相关基因PKLR、G6PD、GSS、HK1、NT5C3A;地中海贫血相关基因HBA1、HBA2、ATRX、HBB等。发现PKD相关基因PKLR存在双重杂合突变,分别为第6外显子c.788-792del(p.263-264del)和c.823G>C(p.Gly 275 Arg)(图1)。经千人基因组数据库查询,例1 c.823G>C有相关致病报道[3]。应用常规Sanger测序法分别对患者及其父母PKLR基因12个外显子的编码区及其侧翼序列的DNA片段进行测序验证,其结果与靶向测序结果完全一致。从其父亲处遗传c.788-792del,从其母亲处遗传c.823G>C。经SIFT和PolyPhen.2数据库分析表明,这两种突变在人群中的发生率极低,对其进行蛋白质功能预测均显示为有害,考虑为本病的致病基因突变。
图1. 例1 PKLR基因第6外显子突变测序图(箭头所示为突变位点).
A:c.823G>C错义突变;B:c.788-792del缺失突变
例2,男,38岁,籍贯河南。患者30余年前发现皮肤、巩膜黄染,伴有尿色加深,未予重视。入院前8个月无明显诱因突发胸闷、乏力,就诊于当地医院。血常规示:WBC 3.5×109/L,HGB 95 g/L,PLT 139×109/L。血生化:TBIL 103.7µmol/L,IBIL 90.44 µmol/L。阵发性睡眠性血红蛋白尿(PNH)克隆检测、Coombs试验、酸溶血试验均正常。骨髓造血细胞增生活跃。予退黄对症治疗。其父母、5个姐姐及2个哥哥均无贫血、黄疸病史。入院查体:轻度贫血貌,皮肤、巩膜黄染,肝脾肋缘下未触及。入院相关检查,血常规:WBC 3.53×109/L,HGB 96 g/L,PLT 215×109/L,Ret 4.5%。生化检查:TBIL 73.2 µmol/L,IBIL 58 µmol/L,LDH 186 U/L。上述溶血相关检测均正常。B超检查:脾轻度大,长11.4 cm,厚3.6 cm,伴有胆囊多发结石。其父母相关检查均正常。二代靶向测序:检测上述溶血相关基因,发现PKD相关基因PKLR存在双重杂合突变,分别为第9外显子c.1379T>C(p.Val 460 Ala)和第7外显子c.1045G>T(p.Val 349 Phe)。经千人基因组数据库查询,未发现相关致病报道。Sanger测序法验证表明,患者分别从其父亲处遗传c.1379T>C,从其母亲处遗传c.1045G>T(图2)。经SIFT和PolyPhen.2数据库分析表明,这两种突变在人群中的发生率极低,对其进行蛋白质功能预测均显示为有害,考虑为本病的致病基因突变。
图2. 例2 PKLR基因突变测序图(箭头所示为突变位点).
A:第9外显子c.1379T>C错义突变;B:第7外显子c.1045G>T错义突变
讨论
PKD为常染色体隐性遗传病,是发病率仅次于葡萄糖-6-磷酸脱氢酶(G-6-PD)缺乏症的红细胞酶病。于1961年由Valentine等[4]首先报道。全球均见报道,大多数分布于北欧,在白色人种中发病率约为1/20万[5]。
PKD是由PKLR基因突变所致。PKLR基因位于1号染色体(1q21),编码L-PK与R-PK 2种同工酶。PKLR基因由12个外显子组成,序列全长9.5 kb。迄今为止,国内外已报道了260余种PKLR基因突变,其中大多数为基因编码区的点突变,其次为缺失和插入突变[6]。三个最普遍的突变位点依次为c.1529G>A、c.1456C>T和c.1468C>T,而且这些突变有着种族和地区分布特点。c.1529G >A最常见于北美和中北欧,c.1456C>T常见于南欧(瑞士、葡萄牙、意大利等国家),而Zanella等[7]报道c.1468C>T亚洲最为常见。但Yavarian等[8]对亚洲PKD高发地区伊朗统计发现11号外显子c.G1168G>A、c.1529G>A突变占54%。Warang等[9]报道印度最常见的突变为c.1436G>A(18.33%)、c.A992A>G(11.66%)及c.1456C>T(11.66%)。目前国内只有少数个案报道,包括c.661G>T、c.1528C>T[10],c.119G>A、c.1015G>C、c.941G>C、c.848T>C[11],c.809G>C、c.1330G>T、c.1339C>A[12]和c.941T>C[13]。
本研究中,2例患者诊断为先天性溶血性贫血,但病因不明,包括血红蛋白、红细胞酶学、红细胞膜异常的相关检查均未发现异常。应用二代靶向测序结合Sanger测序技术检测了先天性溶血的相关基因,发现PKLR基因编码区存在双重杂合突变。其中例1存在c.788-792del缺失突变和c.823G>C错义突变,通过Sanger测序法验证,分别遗传自父亲的c.788-792del缺失突变和母亲的c.823G>C错义突变。而例2也为双重杂合子突变,分别遗传自父亲c.1379T>C错义突变和母亲c.1045G>T错义突变。应用SIFT和PolyPhen-2数据库分析预测4种突变对蛋白质功能均为有害,其中c.823G>C有相关病例报道[3];c.788-792del缺失突变、c.1379T>C错义突变和c.1045G>T错义突变目前未发现相关致病报道。上述3种未见报道的错义突变位点可能为今后PKD的基因诊断提供新的检测证据。
临床上PKD患者多数双重杂合子,纯合子较少。贫血严重程度差异性较大,轻的无贫血表现或轻度贫血;重者自幼发病,需依赖输血维持,主要与PK突变类型有关。本研究2例患者均为双重杂合子发病,父母均为杂合子,无临床表现。而2例患者临床表现差异较大,例1自出生即有重度贫血,频繁输血;而例2并没有明显临床症状,为轻度贫血,考虑与突变位点不同有关。2例患者及其父母常规酶学检测均未发现异常,通过基因检测而确诊。许多PKD患者PK活性下降不明显甚至增高,其确切机制尚不明确,但细胞年龄较轻、溶血发作期、大量新生红细胞进入循环、外周血网织红细胞增多、近期输血等均可导致酶活性升高。此外,PK同工酶中白细胞PKM2活性比红细胞PKR高300倍,白细胞去除不彻底亦可能明显影响酶活性的测定值。上述诸多因素均可影响PK活性。而基因测序检查则不受上述因素干扰。除可提供明确诊断的证据外,同时可发现新的基因突变。尤其是目前的二代测序技术具有速度快、准确率高、成本低、覆盖度广,与生物学表型结合更为直接等优点,能够同时检测大量基因。对于遗传性溶血性疾病及其他遗传性疾病,具有良好的应用潜力,亦为检测PKD相关的基因突变提供了更为准确和直观的诊断依据。
综上所述,二代靶向测序方法可临床用于PKD基因诊断(尤其是常规溶血检查不能确诊的病例),而且有助于发现PKLR基因新型突变类型。本研究中发现的PKLR基因新突变类型c.788-792del缺失突变、c.1379T>C错义突变和c.1045G>T错义可导致PKD的发生。
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