Skip to main content
Chinese Journal of Hematology logoLink to Chinese Journal of Hematology
. 2019 Jun;40(6):477–483. [Article in Chinese] doi: 10.3760/cma.j.issn.0253-2727.2019.06.006

GATA2突变相关儿童原发性骨髓增生异常综合征临床及分子生物学特征

Clinical and molecular characteristics of GATA2 related pediatric primary myelodysplastic syndrome

安 文彬 1,2, 刘 超 1,2, 万 扬 1,2, 陈 晓燕 1,2, 郭 晔 1, 陈 晓娟 1, 杨 文钰 1, 陈 玉梅 1, 张 英驰 2, 竺 晓凡 1,2,
Editor: 刘 爽
PMCID: PMC7342394  PMID: 31340620

Abstract

目的

探讨我国GATA2突变相关儿童原发性骨髓增生异常综合征(MDS)的发生情况、临床特点及分子生物学特征。

方法

回顾性分析2007年1月至2018年1月129例儿童原发性MDS患者临床资料,采用二代测序技术检测GATA2及髓系恶性肿瘤相关基因突变情况。分析基因突变谱及其与临床表现型的关系。

结果

在所有129例患者中,11例(8.5%)检出GATA2胚系突变。在50例MDS伴原始细胞增高(MDS-EB)和急性髓系白血病伴MDS相关改变(AML-MRC)患者中,GATA2胚系突变占14.0%。GATA2突变多位于第二个锌指(ZF2)区。多因素分析结果显示,SETBP1体细胞突变(P=0.041,OR=9.003,95%CI 1.098~73.787)和独立的7号染色体单体(P=0.002,OR=24.835,95%CI 3.305~186.620)与GATA2胚系突变显著相关。与GATA2野生型的患者相比,GATA2突变型患者中位发病年龄更大[8(1~16)岁对6岁(1月龄~18岁),P=0.035],更易伴有7号染色体单体(72.7%对5.2%,P<0.001),较之儿童难治性血细胞减少(RCC)更倾向于存在于MDS-EB/AML-MRC亚型中(5.1%对13.7%,P=0.111)。GATA2突变与否不影响儿童原发性MDS患者的3年预期总生存(OS)率[(80.1±4.2)%对(60.6±25.4)%,P=0.437];在44例接受allo-HSCT患者中,GATA2突变与否对移植后3年预期OS率无显著影响[100.0%对(94.0±3.8)%,P=0.562]。

结论

GATA2突变在我国伴有7号染色体单体及年龄较大的儿童原发性MDS患者中占有较高的比例,且GATA2突变患者多进展为MDS-EB和AML-MRC。GATA2突变状态不影响儿童原发性MDS的总体生存。

Keywords: 儿童, 骨髓增生异常综合征, GATA2


骨髓增生异常综合征(MDS)是一组具有异质性的克隆性造血性疾病,儿童罕见。在儿童和青少年中,儿童难治性血细胞减少(refractory cytopenia of childhood,RCC)是最常见的亚型,常表现为全血细胞减少和低增生骨髓象[1][2]。儿童MDS最常见的染色体核型异常是7号染色体单体(−7/7q−),而在成人中常见的单纯5号染色体缺失(5q−)和复杂核型罕见[3]。儿童和成人MDS体细胞突变谱亦显著不同[4][6]。MDS可继发于先天性骨髓衰竭(IBMF),如范可尼贫血、先天性角化不良及家族性MDS/急性髓系白血病(AML)综合征。其中家族性MDS/AML综合征是由造血转录因子CEBPA、RUNX1和GATA2等缺陷导致的[7]。GATA2相关的疾病谱还包括免疫缺陷和血液系统以外的综合征,如MonoMAC综合征和Emberger综合征等[8]。GATA2突变患者在婴儿或儿童期即出现造血、免疫和淋巴系统症状,并伴有反复感染,高风险进展为MDS/AML[9][10]。目前我国尚无儿童MDS胚系GATA2突变情况的研究,这给实验室检查选择、预后评估及治疗决策带来一定的困难。本研究探讨GATA2胚系突变在我国儿童原发性MDS中的发生频率,并分析GATA2相关儿童MDS的临床及分子生物学特征。

病例与方法

1.病例:回顾性分析我院2007年1月至2018年1月确诊的129例儿童原发性MDS患者,MDS诊断符合2016年WHO分型诊断标准儿童MDS诊断标准[11]。包括RCC 78例(61%)、MDS伴原始细胞增高(MDS-EB)35例(27%)和急性髓系白血病伴MDS相关改变(AML-MRC)16例(12%)。排除继发性MDS。本研究经我院伦理委员会审核批准,并获得所有研究对象及(或)其监护人的知情同意。患者根据病情及治疗意愿接受免疫抑制治疗、化疗、allo-HSCT或支持治疗[12]。其中,34%(44/129)的患者接受了allo-HSCT。供者来源:同胞全相合3例,父母/同胞不全相合41例。移植方式:16%(7/44)为外周血+骨髓,82%(36/44)为外周血,2%(1/44)为外周血+骨髓+脐带血。11例GATA2突变患者中7例接受了HSCT。

2.标本采集:骨髓及体细胞对照标本取自患者初次诊断时。常规方法留取骨髓单个核细胞,提取DNA。体细胞对照DNA提取自初诊时的口腔上皮细胞。家系验证DNA提取自父母和(或)同胞外周血DNA。

3.检测方法:设计包含与IBMF、家族性MDS/AML、MDS相关的基因等在内的564个基因的全部外显子及剪接区的捕获芯片。取1 µg DNA常规方法制备DNA全基因组文库。采用GenCap液相捕获试剂盒(北京迈基诺基因科技股份有限公司产品)对文库目标区域进行捕获及定量,采用Illumina Nextseq 500测序。平均覆盖度98.1%,平均深度1 000×,95%的目的区域覆盖度在20×以上。测序后原始数据利用CCDS、人基因组数据库(HG19)、dbSNP(v138)、1 000 genomes、COSMIC、PolyPhen、SIFT等数据库进行生物信息学分析,确定致病性基因突变位点[13],并采用Sanger测序验证。新发GATA2变异依据以下标准判断为可能致病性和疾病相关[14]:①其他患有MDS的家庭成员具有同样的突变;②具有其他GATA2缺陷相关的表型(如淋巴水肿);③既往在GATA2缺陷中报道过的突变;④在Exome Aggregation Consortium Browser、dbSNP和Exome Variant Server数据库中未被报道的新发突变;⑤在物种间高度保守及预测致病性高的位点。骨髓细胞经过24 h培养,收集细胞常规制片,G或R显带,根据《人类细胞遗传学国际命名体制(ISCN2013)》描述核型异常。单纯7号染色体单体指经染色体核型分析及FISH检测,除7号染色体单体外不伴有其他异常核型;涉及7号染色体单体指出7号染色体单体外还伴有其他异常核型。

4.随访:所有病例随访至2018年10月。随访资料来源于住院病历、门诊病历。对随访期间死亡的病例,依病历记录或与患者家属电话联系确认。预期总生存(OS)期为确诊至死亡的时间或随访终点。共9例(7%)患者失访。中位随访时间为29(2~131)个月。

5.统计学处理:采用SPSS 22.0软件进行统计学分析。非连续变量资料采用卡方检验或者Fisher精确概率法,连续变量资料采用Mann-Whitney U检验,相关性分析采用Spearman等级相关系数,单因素生存分析采用Kaplan-Meier法,将单因素分析P<0.01的指标纳入Cox模型进行多因素分析。P<0.05为差异有统计学意义。

结果

一、GATA2相关MDS的临床及遗传学特征

1.临床特征:8.5%(11/129)的儿童原发性MDS患者具有GATA2突变。较之RCC,GATA2在MDS-EB/AML-MRC中的比例更高(5.1%对13.7%,P=0.111)。GATA2突变型患者首次诊断年龄晚于GATA2野生型患者[8(1~16)岁对6岁(1月龄~18岁),P=0.035]。GATA2突变患者更易合并7号染色体单体(72.7%对5.2%,P<0.001)。因为RCC诊断标准宽泛,我们对其中同时符合成人MDS伴多系血细胞发育异常(MDS-MLD)诊断标准[11]的患者进行分析,发现所有的GATA2突变患者均属于此组。所有的GATA2突变患者均为自发突变,无血液系统恶性肿瘤家族史。与GATA2野生型患者相比,GATA2突变患者血小板计数更高[100(17~299)×109/L对36.5(2~528)×109/L,z=−2.058,P=0.040]。其他实验室检查指标(外周血血红蛋白浓度、白细胞计数、中性粒细胞计数、单核细胞计数及骨髓髓系原始细胞比例)无显著性差异(表1)。

表1. GATA2突变型与野生型儿童骨髓增生异常综合征(MDS)临床特征比较.

临床特征 GATA2突变型(11例) GATA2野生型(118例) P
中位年龄[M(范围)] 8(1~16)岁 6岁(1月龄~18岁) 0.035
性别(例,男/女) 7/4 70/48 1.000
MDS亚型[例(%)] 0.111
 RCC 4(36.4) 74(62.7)
 MDS-EB/AML-MRC 7(63.6) 44(37.3)
染色体核型[例(%)]a
 7号染色体单体 8(72.7) 6(5.2) <0.001
 +8 1(9.1) 8(6.9) 0.564
 复杂核型 0(0.0) 8(6.9) 1.000
 正常核型 2(18.2) 77(66.4) 0.003
 其他核型 0(0.0) 17(14.6) 0.357
AML/MDS家族史[例(%)] 0(0.0) 2(1.7) 1.000
HGB[g/L,M(范围)] 81(66~110) 83(34~130) 0.918
WBC[×109/L,M(范围)] 3.94(1.61~24.43) 4.00(0.91~140.30) 0.345
ANC[×109/L,M(范围)] 0.66(0.35~11.17) 0.97(0.01~14.74) 0.324
单核细胞计数[×109/L,M(范围)] 0.42(0.02~7.07) 0.23(0.01~7.79) 0.323
PLT[×109/L,M(范围)] 100(17~299) 36.5(2~528) 0.040
骨髓髓系原始细胞比例[%,M(范围)] 7.7(0~29.0) 4.5(0~30.0) 0.708

注:RCC:难治性血细胞减少;MDS-EB:MDS伴原始细胞增高;AML-MRC:急性髓系白血病伴MDS相关改变;AML:急性髓系白血病。a 127例患者有染色体核型分析结果

2.细胞遗传学特点:11例伴有GATA2突变的MDS患者中,染色体核型异常包括7号染色体单体8例,其中非平衡易位der(1;7)(q10;p10)(导致7号染色体长臂缺失)2例;8号染色体三体1例;未检测到−5/5q−及复杂核型。在127例具有可分析染色体核型的患者中,7号染色体单体14例(11.0%),而其中8例具有GATA2突变,且诊断时的中位年龄倾向于大于6例GATA2野生型患者[11(3~16)岁对5.5(1~10)岁]。

3.GATA2突变特征:共在11例儿童MDS患者中检测到12个致病性或可疑致病性胚系突变(其中10个为新发突变),及1个意义未明突变。包括7个移码/无义突变导致的截短突变,3个错义突变,1个非移码缺失突变,1个剪接位点突变。等位基因突变频率在0.28~0.62之间。11个突变位于编码区,其中6个突变位于第二个锌指(ZF2)区(氨基酸347~398),2个位于C末端,1个位于N末端。位于非编码区的突变c.1143+2T>G位于第5内含子,邻近剪接位点。其中1例患者(例10)具有3个突变,包括位于第5内含子的c.1143+2T>G,位于ZF2区的c.1086_1087ins63(p.N36delins22)及位于ZF1区的意义未明的突变c.961C>T(p.L321F)(表2)。GATA2突变类型与血液学表型无相关性。所有患者的父母和(或)正常同胞采用Sanger测序进行了相应位点的检测,未检测到健康携带者。具有GATA2突变的患者中,最常见的体细胞突变为SETBP1(4个)、ASXL1(4个)及RUNX1(3个)突变,5例患者未检出合并体细胞突变。另有1例患者合并SAMD9突变。单因素分析提示,体细胞SETBP1(P=0.001,χ2=10.438)、ASXL1(P<0.001,χ2=13.766)、RUNX1(P=0.002,χ2=9.179)突变,单纯7号染色体单体(P<0.001, χ2=46.748),涉及7号染色体单体(P<0.001,χ2=26.229)与GATA2突变显著相关。进一步多因素分析提示,SETBP1突变(P=0.041,OR=9.003,95%CI 1.098~73.787)和单纯7号染色体单体(P=0.002,OR=24.835,95%CI 3.305~186.620)与GATA2突变显著相关。

表2. 11例GATA2突变儿童骨髓增生异常综合征(MDS)患者临床特征、治疗及转归.

例号 性别 GATA2基因型 诊断年龄(岁) MDS亚型 染色体核型 治疗 供者 造血干细胞来源 随访时间(月) 转归
1 c.1160C>A(p.T387N) 1 RCC +8 HSCT 单倍型 外周血+骨髓 14 无病存活
2 c.1038_1039insCGC-CAGAAGAGCCGGC(p.T347Rfs*42) 3 RCC a −7 支持治疗 NA NA 63 死于高白细胞瘀滞
3 c.1286G>C(p.S429T) 3 RCC 正常 支持治疗 NA NA 24 存活
4 c.17_18del(p.E6Afs*178) 5 MDS-EB a −7 AML方案化疗 NA NA 30 死于高白细胞瘀滞
5 c.1028dupG(p.R344Kfs*40) 7 MDS-EB 正常 HSCT 单倍型 外周血+骨髓 36 存活
6 c.1019delC(p.S340Wfs*47) 8 RCC −7 HSCT 单倍型 外周血 9 无病存活
7 c.1055G>T(p.C352F) 10 AML-MRC der(1;7)(q10;p10),+1 AML方案化疗 NA NA 6 死于脑梗死
8 c.1216_1217insGTCCAA-CAAGTCCAAGA(p.K406Sfs*77) 12 MDS-EB −7 HSCT 单倍型 外周血 16 无病存活
9 c.1124delT(p.Leu375PrsX12) 14 MDS-EB a −7 HSCT 单倍型 外周血+骨髓 23 无病存活
10 c.1086_1087ins63(p.N363delins222T>G、c.961C>T(p.L321F) 14 AML-MRC −7 HSCT 单倍型 外周血+骨髓 28 无病存活
11 c.303delC(p.Ala103fsX116) 16 MDS-EB a der(1;7)(q10;p10) HSCT 单倍型 外周血+骨髓 32 无病存活

注:RCC:儿童难治性血细胞减少;MDS-EB:MDS伴原始细胞增高;AML-MRC:急性髓系白血病急性髓系白血病伴MDS相关改变;AML:急性髓系白血病;a最终进展为AML-MRC;NA:不适用

4.GATA2缺陷有关的非血液系统表型:除1例(例5)具有p.R344Kfs*40突变的患者同时合并先天性淋巴水肿外,1例(例6)具有p.S340Wfs*47突变的患者合并先天性上睑下垂外,其他患者均无非血液系统表型。

二、GATA2相关儿童MDS预后分析

全部患者3年预期OS率为(79.1±4.3)%。RCC患儿的3年OS率显著高于MDS-EB/AML-MRC患者[(91.1±4.0)%对(59.9±8.7)%,P<0.001]。单因素分析示,GATA2突变型与GATA2野生型患者3年OS率差异无统计学意义[(80.1±4.2)%对(60.6±25.4)%,P=0.437](图1A)。44例行allo-HSCT患者的3年OS率显著高于未行移植的患者[(95.2±3.3)%对(77.3±5.0)%,P=0.002](图1B)。在接受移植治疗患者中,GATA2基因突变状态对移植后3年OS率无显著影响[100.0%对(94.0±3.8)%,P=0.562]。

图1. GATA2相关儿童骨髓增生异常综合征患者总生存曲线.

图1

A:GATA2突变型与GATA2野生型;B:造血干细胞移植组(HSCT)组与非HSCT组

讨论

近年来遗传易感性在原发性MDS中的作用受到关注。本研究结果示在我国儿童原发性MDS中,GATA2突变占到8.5%。而在MDS-EB和AML-MRC的患者中,占到13.7%。这与既往文献[14]中报道的比例相似。而成人MDS患者中,GATA2突变的发生率仅为0.5%,GATA2突变相关疾病的中位发病年龄为29岁[9],而针对儿童及青少年的研究中,GATA2相关MDS的中位发病年龄为12岁[14],结合本研究结果及文献报道,推测GATA2相关疾病主要存在于青少年及年轻成人MDS患者中,GATA2不是老年患者的主要致病基因。

既往报道过的与GATA2突变有关的综合征包括Emberger综合征(原发性淋巴水肿、皮肤疣、耳聋)、MonoMAC综合征(严重的单核细胞、NK细胞、树突状细胞和B淋巴细胞减少,鸟结核分枝杆菌复合物感染)[8],非血液系统表型包括性功能减退、外眦赘皮、手指变细、颈蹼、行为障碍/多动症、甲状腺功能减退、泌尿生殖系统畸形、单侧/双侧上睑下垂或胎儿水肿[15]。值得注意的是,本研究中GATA2相关的MDS均为散发,且大部分患者无GATA2缺陷相关的综合征或非血液系统的表型。而接近半数的GATA2相关非MDS疾病伴有综合征相关症状[14],[16]。在儿童MDS中高比例的新发GATA2突变及极少的无症状携带者表明该基因突变较高的外显率和表现度。本研究GATA突变发生率高,且编码区突变具有完全的外显率,但因为病例数量有限,可能存在偏倚。既往研究曾报道在超过200例患者中检测到8例无症状携带者[9]。此外,非编码区突变的无症状携带者,外显率减低既往也有报道[8],[14]

GATA2基因编码重要的造血转录因子,其通过两个ZF与上千个基因的GATA结合结构域作用[17]。GATA2以剂量依赖的方式,通过与其他转录因子协同作用,调控早期造血[18]。GATA2胚系突变涉及截短突变多导致ZF2缺失[8],[15]。此外,目前认为ZF2内的错义突变和位于GATA2-9.5 kb调控区的非编码区变异导致半倍体剂量不足[7][8],[15]。GATA2体细胞突变也存在于成人髓系肿瘤中,不同的是,突变可发生于两个ZF区,既可引起功能获得亦可引起功能缺失效应[15],[19]

与既往报道GATA2半倍体剂量不足导致血细胞减少及免疫缺陷相似,我们检测到2种单等位基因突变,包括截短突变和位于ZF2区的错义突变。但未检测到位于第4内含子的增强子区域突变。迄今为止,只有一小部分的GATA2错义突变进行了功能验证。丧失功能性突变包括在家族性MDS/AML中位于ZF2区的Thr354Met及Thr355del13,在Emberger综合征中的Arg361Leu及Cys373Arg17,在原发性AML中的Arg350_Asn351ins(体细胞突变状况不明)[20]。本研究我们未检测到上述突变。本研究及既往报道GATA2截短突变均破环了ZF2区,提示这一区域的重要性。Wlodarski等[14]研究显示非编码区突变占10.5%,且部分非编码区突变的患者具有更长的疾病稳定期,但本研究只检测到1个内含子区的突变。本研究及既往研究均未发现GATA2基因型与临床表型具有显著相关性。

高危险度MDS亚型和7号染色体单体在GATA2相关MDS中比例显著增加。相反,在GATA2相关免疫缺陷患者中,8号染色体三体(24%)多于7号染色体单体(16%)[8]。既往报道7号染色体单体在整个年龄组GATA2突变中占29%[9],在儿童及青少年组中占70%[17],这与本儿童队列中结果基本一致(72.7%)。而且,本研究中,2例患者为der(1;7)(q10;p10)非平衡易位,导致1q三体和7q缺失,这一变异在儿童MDS中较少见[4],[6]。既往研究[14]及本研究均证实GATA2胚系突变在伴有7号染色体单体的青少年MDS患者中比例较高,因此对这部分患者在诊断时需注意除外GATA2突变。

GATA2突变相关疾病易向髓系肿瘤转化的驱动突变尚不清楚。既往研究报道示30%GATA2突变患者可检测到同时合并ASXL1基因突变,且附加的获得性突变与疾病进展有关[21][22]。因此,获得性ASXL1突变被认为与GATA2突变向髓系肿瘤恶性转化有关[9],[21],[23]。但这一观点目前存在争议,首先,在更大队列的研究中,并未观察到GATA2突变患者具有更高的ASXL1突变比例,其次,之前研究得出的两者之间的联系可能是由于7号染色体单体造成的偏倚[6],[23]。其他GATA2相关MDS常见的突变有SETBP1功能获得性突变。本研究中,多因素及单因素分析均示SETBP1突变与GATA2显著相关,提示这一体细胞突变在GATA2突变的致病机制中具有重要作用。

在考虑了MDS亚型和细胞遗传学因素后,本研究中儿童原发性MDS的OS不受GATA2突变状态的影响,提示MDS亚型是影响预后的主要因素。尽管GATA2突变MDS患者更容易在初次诊断时即为MDS-EB和AML-MRC,但OS与GATA2野生型患者无统计学差异。较大系列(534例MDS患者,其中GATA2相关MDS 57例)的研究[14]亦得出与本研究相似结论:当单因素分析GATA2突变状态时,GATA2突变患者预后较差(5年预期OS率:73%对84%,P<0.05),但当纳入MDS亚型、7号染色体单体共同分析时,GATA2突变状态与OS无显著相关性。因此考虑GATA2缺陷虽具有很强的MDS倾向性,但可能不影响总体生存。这一结论需在更大规模的样本中验证。HSCT是目前唯一可以治愈GATA2相关MDS的治疗。既往NIH研究报道,GATA2突变(包括了家族性MDS/AML,肺泡蛋白沉积或反复感染)患者移植后4年OS率为54%[8]。一项针对儿童GATA2相关MDS的研究报道,HSCT后5年OS率为66%[14]。本研究中GATA2相关MDS患者的预后与上述报道相似。儿童GATA2相关原发性MDS移植后总体生存较好,可能与移植年龄较小及无GATA2相关非血液系统并发症有关。

总之,本研究表明GATA2在我国儿童原发性MDS中发生率约9%,在青少年伴有7号染色体单体的患者中占到72.7%。GATA2突变状态不影响MDS患儿的预后。与所有MDS患儿一样,应根据已知的危险因素,来决定GATA2相关MDS中HSCT的时机和预处理方案。早期诊断GATA2缺陷可以使患者的疾病监测更具有针对性,并减少了非治愈性治疗的应用,尤其是避免免疫抑制治疗。我们建议对所有儿童和年轻成人MDS患者都应进行GATA2基因突变分析,无论其是否具有家族史或者GATA2缺陷相关表型。

Funding Statement

基金项目:国家自然科学基金(81700109);协和青年科研基金&中央高校基本科研业务费专项资金(2017320024);国家重点研发计划(2016YFC0901503);中国医学科学院医学与健康科技创新工程(2016-I2M-1-002、2017-I2M-3-018);爱佑慈善基金

Fund Project: National Natural Science Funds(81700109); Program for Peking Union Scholars and Innovative Research Team; PUMC Youth Fund & Fundamental Research Funds for the Central Universities(2017320024); The National Key Research and Development Program of China(2016YFC0901503); the CAMS Innovation Fund for Medical Sciences(2016-I2M-1-002, 2017-I2M-3-018); Ai You foundation.

References

  • 1.中华医学会血液学分会. 骨髓增生异常综合征中国诊断与治疗指南(2019年版)[J] 中华血液学杂志. 2019;40(2):89–97. doi: 10.3760/cma.j.issn.0253-2727.2019.02.001. [DOI] [Google Scholar]
  • 2.Hasle H, Niemeyer CM. Advances in the prognostication and management of advanced MDS in children[J] Br J Haematol. 2011;154(2):185–195. doi: 10.1111/j.1365-2141.2011.08724.x. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
  • 3.Göhring G, Michalova K, Beverloo HB, et al. Complex karyotype newly defined: the strongest prognostic factor in advanced childhood myelodysplastic syndrome[J] Blood. 2010;116(19):3766–3769. doi: 10.1182/blood-2010-04-280313. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
  • 4.Schwartz JR, Ma J, Lamprecht T, et al. The genomic landscape of pediatric myelodysplastic syndromes[J] Nat Commun. 2017;8(1):1557. doi: 10.1038/s41467-017-01590-5. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
  • 5.Li B, Liu J, Jia Y, et al. Clinical features and biological implications of different U2AF1 mutation types in myelodysplastic syndromes[J] Genes Chromosomes Cancer. 2018;57(2):80–88. doi: 10.1002/gcc.22510. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
  • 6.Pastor V, Hirabayashi S, Karow A, et al. Mutational landscape in children with myelodysplastic syndromes is distinct from adults: specific somatic drivers and novel germline variants[J] Leukemia. 2017;31(3):759–762. doi: 10.1038/leu.2016.342. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
  • 7.Bannon SA, DiNardo CD. Hereditary Predispositions to Myelodysplastic Syndrome[J] Int J Mol Sci. 2016;17(6):pii: E838. doi: 10.3390/ijms17060838. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
  • 8.Spinner MA, Sanchez LA, Hsu AP, et al. GATA2 deficiency: a protean disorder of hematopoiesis, lymphatics, and immunity[J] Blood. 2014;123(6):809–821. doi: 10.1182/blood-2013-07-515528. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
  • 9.Micol JB, Abdel-Wahab O. Collaborating constitutive and somatic genetic events in myeloid malignancies: ASXL1 mutations in patients with germline GATA2 mutations[J] Haematologica. 2014;99(2):201–203. doi: 10.3324/haematol.2013.101303. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
  • 10.Hirabayashi SSB, Niemeyer CM, Wlodarski MW. Unexpected high frequency of GATA2 mutations in children with non-familial MDS and monosomy 7[J] Blood (Annual Meeting Abstracts) 2012;120(21):Abstract 1699. [Google Scholar]
  • 11.Arber DA, Orazi A, Hasserjian R, et al. The 2016 revision to the World Health Organization classification of myeloid neoplasms and acute leukemia[J] Blood. 2016;127(20):2391–2405. doi: 10.1182/blood-2016-03-643544. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
  • 12.中华医学会儿科学分会血液学组, 《中华儿科杂志》编辑委员会. 儿童骨髓增生异常综合征诊断与治疗中国专家共识(2015年版)[J] 中华儿科杂志. 2015;53(11):804–809. doi: 10.3760/cma.j.issn.0578-1310.2015.11.002. [DOI] [Google Scholar]
  • 13.Papaemmanuil E, Gerstung M, Malcovati L, et al. Clinical and biological implications of driver mutations in myelodysplastic syndromes[J] Blood. 2013;122(22):3616–3627; quiz 3699. doi: 10.1182/blood-2013-08-518886. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
  • 14.Wlodarski MW, Hirabayashi S, Pastor V, et al. Prevalence, clinical characteristics, and prognosis of GATA2-related myelodysplastic syndromes in children and adolescents[J] Blood. 2016;127(11):1387–1397; quiz 1518. doi: 10.1182/blood-2015-09-669937. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
  • 15.Wlodarski MW, Collin M, Horwitz MS. GATA2 deficiency and related myeloid neoplasms[J] Semin Hematol. 2017;54(2):81–86. doi: 10.1053/j.seminhematol.2017.05.002. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
  • 16.Zhang MY, Keel SB, Walsh T, et al. Genomic analysis of bone marrow failure and myelodysplastic syndromes reveals phenotypic and diagnostic complexity[J] Haematologica. 2015;100(1):42–48. doi: 10.3324/haematol.2014.113456. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
  • 17.Doré LC, Chlon TM, Brown CD, et al. Chromatin occupancy analysis reveals genome-wide GATA factor switching during hematopoiesis[J] Blood. 2012;119(16):3724–3733. doi: 10.1182/blood-2011-09-380634. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
  • 18.Bresnick EH, Katsumura KR, Lee HY, et al. Master regulatory GATA transcription factors: mechanistic principles and emerging links to hematologic malignancies[J] Nucleic Acids Res. 2012;40(13):5819–5831. doi: 10.1093/nar/gks281. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
  • 19.Tien FM, Hou HA, Tsai CH, et al. GATA2 zinc finger 1 mutations are associated with distinct clinico-biological features and outcomes different from GATA2 zinc finger 2 mutations in adult acute myeloid leukemia[J] Blood Cancer J. 2018;8(9):87. doi: 10.1038/s41408-018-0123-2. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
  • 20.Niimi K, Kiyoi H, Ishikawa Y, et al. GATA2 zinc finger 2 mutation found in acute myeloid leukemia impairs myeloid differentiation[J] Leuk Res Rep. 2013;2(1):21–25. doi: 10.1016/j.lrr.2013.02.002. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
  • 21.Bödör C, Renneville A, Smith M, et al. Germ-line GATA2 p.THR354MET mutation in familial myelodysplastic syndrome with acquired monosomy 7 and ASXL1 mutation demonstrating rapid onset and poor survival[J] Haematologica. 2012;97(6):890–894. doi: 10.3324/haematol.2011.054361. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
  • 22.Stieglitz E, Loh ML. Pediatric MDS: GATA screen the germline[J] Blood. 2016;127(11):1377–1378. doi: 10.1182/blood-2016-01-690016. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
  • 23.West RR, Hsu AP, Holland SM, et al. Acquired ASXL1 mutations are common in patients with inherited GATA2 mutations and correlate with myeloid transformation[J] Haematologica. 2014;99(2):276–281. doi: 10.3324/haematol.2013.090217. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]

Articles from Chinese Journal of Hematology are provided here courtesy of Editorial Office of Chinese Journal of Hematology

RESOURCES