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. 2015 Jul;36(7):598–601. [Article in Chinese] doi: 10.3760/cma.j.issn.0253-2727.2015.07.015

流式细胞术检测伊红-5′-马来酰亚胺标记红细胞在80例遗传性球形红细胞增多症中的诊断价值

Flow cytometric test using eosin-5′-maleimide (EMA) labelling of red blood for diagnosis of hereditary spherocytosis

王 继英 1, 郑 彬 1, 赵 玉平 1, 陈 雪晶 1, 刘 燕 1, 薄 丽津 1, 郑 以州 1, 张 凤奎 1, 汝 昆 1, 王 慧君 1,
Editor: 刘 爽1
PMCID: PMC7342632  PMID: 26304086

Abstract

目的

探讨伊红-5′-马来酰亚胺(EMA)为标记流式细胞术检测遗传性球形红细胞的灵敏性和特异性,并对试剂和样本稳定性进行验证。

方法

对80例遗传性球形红细胞增多症(HS)和44例非HS患者外周血样本全部采用EMA标记流式细胞术检测、红细胞渗透脆性试验和酸化甘油溶解试验三种方法进行检测,比较三种方法的灵敏性和特异性,探讨EMA标记流式细胞术检测的可行性。并观察EMA及样本在不同储存条件下的稳定性。

结果

通过检测124例样本得出,EMA标记流式细胞术检测的灵敏性和特异性分别为0.925和0.954,红细胞渗透脆性试验分别为0.950和0.455,酸化甘油溶解试验为1.000和0.318。红细胞渗透脆性试验和酸化甘油溶解试验的灵敏性稍高于EMA流式检测方法,但特异性差,不能明确区分球形红细胞增多是否为HS。EMA对温度很敏感,−80 °C储存180 d较4 °C存储1 d稳定。HS样本的稳定性较好,4 °C放置6 d、室温条件放置3 d不会影响结果的判定。

结论

EMA标记流式细胞术检测HS具有良好的灵敏性和特异性,−80 °C储存EMA较为稳定,须在样本4 °C放置6 d内、室温条件放置3 d内完成检测。

Keywords: 流式细胞术, 伊红-5′-马来酰亚胺, 球形红细胞增多,遗传性


遗传性球形红细胞增多症(HS)是一种红细胞膜异常的遗传性溶血性疾病,这类球形红细胞以α-血影蛋白、β-血影蛋白、锚蛋白、带3蛋白、蛋白4.1和蛋白4.2等膜骨架蛋白异常为主[1],通过脾脏时极易发生溶血,溶血程度差异很大。目前,实验室诊断HS的常用方法有血常规与血涂片检测、红细胞渗透脆性试验及酸化甘油溶解试验,但均容易漏诊无明显溶血表现的轻型HS患者[2][5],同时不能区分原发和继发性HS(例如自身免疫性溶血性贫血伴有球形红细胞增多)[6][8]。近年来利用流式细胞术检测伊红-5′-马来酰亚胺(EMA)标记红细胞成为诊断HS的新手段[9]。EMA荧光探针与带3蛋白复合物相互作用,可直接靶向HS的结构缺陷[10],具有较高的灵敏性和特异性[11][19]。本研究中我们收集我院确诊HS及非HS的血液病患者外周血标本,采用EMA标记流式细胞术检测、酸化甘油溶解试验及红细胞渗透脆性试验进行再诊断,比较各试验的灵敏性及特异性,验证流式细胞术检测EMA标记红细胞在HS中的诊断价值;并通过观察不同条件下试剂及样本的稳定性,探讨试验的适宜条件。

对象和方法

一、研究对象

以2014年2月至10月我院确诊的HS及非HS患者外周血标本为研究对象,其中HS患者80例,男女比为1∶1.11,中位年龄15(1~65)岁。非HS患者44例,男女比为1∶1.44,中位年龄35(29~72)岁。

二、方法

1.EMA标记的流式细胞术:取HS及非HS患者外周血2 µl, PBS洗涤1次,270×g离心5 min,加入0.5 mg/ml EMA流式荧光探针(美国life technologies公司产品)20 µl,室温避光孵育1 h,用含0.5%牛血清白蛋白的PBS液洗涤沉淀3次,270×g离心5 min,弃上清,用500 µl PBS重悬细胞,上流式细胞仪(美国Beckman Coulter公司产品)进行检测。FITC通道获取50 000个细胞,应用Navios软件进行数据分析。以检测当日6份非贫血患者外周血样本[平均荧光强度(MCF)变异系数<6%]为阴性对照,并设空白对照。每组设2个复管。

MCF%=MCFMCFMCF×100%

参照文献[14]标准并结合工作实际,我们定义:MCF降低的百分比>16%为HS,<16%为非HS。

2.酸化甘油溶解试验:取室温平衡的0.1 mol/L磷酸盐缓冲液5 ml,加入12 µl红细胞制成红细胞悬液;取0.1 mol/L磷酸盐缓冲液3 ml于比色杯中调零;取0.3 mol/L甘油缓冲液2 ml放入另一比色杯中,加入红细胞悬液1 ml,快速混匀,用625 nm波长连续测定吸光度(A)值,10 s后开始读数,每10 s读数1次至290 s,记录A值下降至50%初始值所用时间。生物参考区间:>290 s。

3.红细胞渗透脆性试验:取11支小试管,分别加入0.24%、0.28%、0.32%、0.36%、0.40%、0.44%、0.48%、0.52%、0.56%、0.60%、0.90%的氯化钠溶液1 ml;各管再加入全血20 µl;混匀后置冰箱中24 h观察结果。结果判读:①不溶血:上清液无红色;②开始溶血:上清液开始呈透明红色且管底有红细胞;③完全溶血:溶液为透明红色且管底无红细胞或仅有少量红细胞残骸。生物参考区间(氯化钠溶液浓度):开始溶血:0.44%~0.48%;完全溶血:0.28%~0.36%。

三、分组试验

为了验证不同条件下试剂和样本的稳定性,我们分组如下进行试验:①以−80 °C储存180 d和4 °C储存1 d的EMA分别标记同一样本,共检测12份(包括3份HS),观察不同温度EMA的稳定性;②以4 °C储存1 d和4 °C储存2 d的EMA分别标记同一样本,共检测12份(包括3份HS),观察同一温度放置不同时间EMA的稳定性;③EMA标记样本后当天(0 d)及4 °C条件下放置1~5 d进行检测,共检测7份样本,包括3份HS和4份非HS,观察EMA标记样本后不同时间的稳定性;④样本采集当天(0 d)及4 °C条件下放置1~6 d后予EMA标记并检测,共检测10份样本,包括4份HS和6份非HS,观察样本于4 °C条件下放置不同时间的稳定性;⑤样本采集当天(0 d)及室温条件下放置1~6 d后予EMA标记并检测,共检测9份标本,包括3份HS和6份非HS,观察样本于室温条件下放置不同时间的稳定性。

四、统计学处理

应用SPSS 13.0软件进行统计学分析。灵敏性和特异性采用四格表法计算,采用ROC曲线法确定cut-off值。

结果

一、诊断试验结果

三种试验分别检测已确诊的80例HS及44例非HS患者,EMA流式细胞术检测假阴性率为7.5%(80例中6例),假阳性率为4.5%(44例中2例),灵敏性为0.925,特异性为0.954,约登指数为0.879,ROC曲线下面积及cut-off值分别为0.972与14.675%;红细胞渗透脆性试验的假阴性率为5.0%(80例中4例),假阳性率为54.5%(44例中24例),灵敏性为0.950,特异性为0.455,约登指数为0.404,ROC曲线下面积为0.849(开始溶血)、0.696(完全溶血),cut-off值为0.540(开始溶血)、0.340(完全溶血)(均为氯化钠溶液浓度);酸化甘油溶解试验中假阴性率为0,但假阳性率为68.2%(44例中30例),灵敏性为1.000,特异性为0.318,约登指数为0.318,ROC曲线下面积及cut-off值分别为0.276与291 s。

二、稳定性验证

1.试剂的稳定性:−80 °C储存180 d、4 °C储存1 d及4 °C储存2 d的EMA分别标记样本红细胞并上机检测,3组红细胞膜上MCF分别为46.99±7.67、29.20±6.90及20.22±6.71,随着储存温度的升高及存放时间的延长降低。将EMA标记样本红细胞后当天(0 d)及4 °C条件下放置1~5 d分别上流式细胞仪进行检测,结果显示EMA标记3份HS标本及4份非HS标本第0~5天红细胞膜上MCF无明显变化(图1),提示EMA与细胞结合后较为稳定。

图1. 流式细胞术检测伊红-5′-马来酰亚胺标记遗传性球形红细胞增多症(HS)及非HS样本后于4 °C条件下放置不同时间红细胞膜平均荧光强度变化.

图1

2.样本的稳定性:为观察待测样本的稳定性,我们将待测样本分别置于4 °C及室温条件下,取当天(0 d)及放置1~6 d的样本与EMA结合并上机检测,观察MCF的变化。结果见图23,样本在4 °C条件下放置0~6 d检测的结果仍然很稳定,并不会影响结果的判断。非HS患者室温条件下放置0~6 d红细胞膜表面的MCF变化不大,但HS患者的红细胞膜表面的MCF在室温放置的第4天时开始显著下降。

图2. 流式细胞术检测遗传性球形红细胞增多症(HS)及非HS样本于4 °C条件下放置不同时间后予伊红-5′-马来酰亚胺标记红细胞膜平均荧光强度变化.

图2

图3. 流式细胞术检测遗传性球形红细胞增多症(HS)及非HS样本于室温下放置不同时间后予伊红-5′-马来酰亚胺标记红细胞膜平均荧光强度变化.

图3

讨论

HS中红细胞异常是由于血影蛋白、带3蛋白、锚蛋白和蛋白4.2中的一种或几种蛋白联合缺陷导致细胞膜骨架蛋白异常,从而使红细胞变形能力降低。EMA中马来酰亚胺的一部分与带3蛋白胞外第一个环上的Lys-430共价结合,伊红所带的发光团与带3蛋白跨膜核心相连,带3蛋白N-端的胞质区与锚蛋白和蛋白4.2相互作用,所以EMA在与带3蛋白结合的同时,也探测到了锚蛋白和蛋白4.2,从而提高了此方法检测HS的灵敏性和特异性[11]

酸化甘油溶解试验和红细胞渗透脆性试验检测HS的原理是利用患者中红细胞的表面积与体积比降低,测定一定时间内红细胞裂解的比例或程度;这类方法易受到其他不相关红细胞骨架缺陷的影响,不能检测出轻微或不典型的HS。红细胞渗透脆性试验虽然灵敏性稍高于EMA流式细胞术检测,但其特异性太低,阳性结果可由免疫异常或其他疾病引起。综合以上试验结果,可以看出EMA作为特异性荧光探针检测遗传性球形红细胞,具有很好的灵敏性和特异性,在HS的临床诊断辅助检查方面具有明显的优越性。

同时,酸化甘油溶解试验受温度影响较大,最佳温度25 °C。红细胞渗透脆性试验耗时长,需要24 h。且以上两种方法操作相对繁琐,所需样本量较EMA流式细胞术多。EMA流式细胞术检测所需样本量少(仅4 µl)且可储存;检测速度快,2 h内即可出结果;标本在4 °C放置1周时间不会影响结果的判定;实验流程简单。有文献报道通过运输过程的样本,检测结果不受影响[20]

但是,EMA本身对温度敏感,需要−80 °C冰箱储存不超过180 d,所以根据日检测标本数量对试剂进行小剂量分装十分必要。试剂的保存是影响实验结果的重要因素,应予以重视。同时我们对样本的稳定性做了多方面验证,结果显示EMA在−80 °C条件下能很好地保持其稳定性,并且与样本结合后在4 °C条件下放置2~3 d仍然稳定。如果不能立即处理采集好的样品,室温放置须不超过4 d或4 °C冰箱存储不超过6 d。各实验室可以根据样本数量合理安排试验进度。

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