Abstract
Hintergrund
Genomische Veränderungen (Mutationen, Genfusionen, Amplifikationen) und eine Dysregulierung des Fibroblasten-Wachstumsfaktor-Rezeptor-Signalwegs („fibroblast growth factor (FGF) receptor“, FGFR) sind häufig in Plattenepithelkarzinomen des Kopf-Hals-Bereichs (HNSCC) zu finden. Eine zielgerichtete Therapie mit gegen FGF-Rezeptoren gerichteten Tyrosinkinaseinhibitoren (TKI) oder monoklonalen Antikörpern stellt daher einen vielversprechenden Ansatz für die Behandlung des HNSCC dar.
Fragestellung
Dieser Übersichtsartikel beschreibt den aktuellen Wissensstand hinsichtlich FGFR-gerichteter Therapien bei Kopf-Hals-Tumoren (insbesondere HNSCC) und diskutiert in diesem Kontext genomische Veränderungen des FGFR-Signalwegs als potenzielle begleitende prädiktive Biomarker.
Material und Methode
Der vorliegende Artikel basiert auf einer Recherche der Datenbanken PubMed, ClinicalTrials.gov sowie von Tagungsbänden.
Ergebnisse
Erste Ergebnisse belegen die Wirksamkeit von Tyrosinkinase-Inhibitoren sowohl bei HNSCC als auch bei Adenokarzinomen des Kopf-Hals-Bereichs, insbesondere bei Schilddrüsenkarzinomen und adenoid-zystischen Speicheldrüsenkarzinomen.
Schlussfolgerungen
Frühe klinische und präklinische Daten verdeutlichen das Potenzial einer biomarkergesteuerten Behandlung von Patienten mit Kopf-Hals-Tumoren mit gegen FGFR-gerichtete TKI.
Schlüsselwörter: Fibroblasten-Wachstumsfaktor-Rezeptor, Tyrosinkinaseinhibitor, Plattenepithelkarzinom des Kopf-Hals-Bereichs, Prädiktiver Biomarker, Mutation
Abstract
Background
Genomic aberrations (mutations, gene fusions, amplifications) and dysregulation of the fibroblast growth factor (FGF) receptor (FGFR) signaling pathway are frequently found in squamous cell carcinomas of the head and neck (HNSCCs). Targeted therapy with tyrosine kinase inhibitors (TKIs) or monoclonal antibodies directed against FGF receptors therefore represents a promising approach for the treatment of HNSCC.
Objective
This review article describes the current status of FGFR-directed therapies for head and neck tumors (especially HNSCC) and, in this context, discusses genomic alterations of the FGFR pathway as potential companion predictive biomarkers.
Methods
This article is based on searches of PubMed, ClinicalTrials.gov, and conference proceedings.
Results
First results prove the efficacy of TKIs both in HNSCC and in adenocarcinomas of the head and neck, especially in thyroid and adenocystic salivary gland carcinomas.
Conclusion
Early clinical and preclinical data point to the promise of biomarker-directed treatment of patients with head and neck tumors using FGFR-targeted TKIs.
Keywords: Fibroblast growth factor receptor, Tyrosine kinase inhibitor, Head and neck squamous cell carcinoma, Predictive biomarker, Mutation
Biomarkergesteuerte zielgerichtete Therapien, insbesondere die Inhibierung von Tyrosinkinasen, stellen einen wirksamen Therapieansatz für fortgeschrittene maligne Erkrankungen dar. Therapeutische monoklonale Antikörper (mAb) und TKI haben bereits den Weg in die leitliniengemäße Behandlung verschiedener maligner Erkrankungen gefunden. So ist in der EU bereits seit mehr als einem Jahrzehnt der gegen den epidermalen Wachstumsfaktorrezeptor („epidermal growth factor receptor“, EGFR) gerichtete Antikörper Cetuximab für die Behandlung fortgeschrittener HNSCC zugelassen. Kürzlich erhielt der FGFR-Inhibitor Erdafitinib in den USA nach hervorragenden klinischen Ergebnissen die beschleunigte Zulassung für die Behandlung fortgeschrittener oder metastasierter Urothelkarzinome mit genetischen Veränderungen von FGFR2 oder FGFR3. Eine Dysregulierung der FGFR-Signalkaskade ist häufig bei HNSCC zu finden und könnte daher auch hier ein Ziel einer zielgerichteten Therapie darstellen.
Die Erfolgsgeschichte der Tyrosinkinaseinhibitoren
Seit den 1980er-Jahren wird die Rolle von Rezeptortyrosinkinasen (RTK) bei der Entwicklung, Progression und Metastasierung von malignen Erkrankungen intensiv untersucht. RTK sind zellmembrangebundene Rezeptoren für eine Reihe von Wachstumsfaktoren, Zytokinen und Hormonen mit einer intrazellulären Kinaseaktivität, welche die Phosphorylierung von Tyrosinresten und damit eine Signaltransduktion ermöglicht. Über RTK werden vielfältige zelluläre Funktionen, wie beispielsweise Proliferation, Embryonalentwicklung, Zelldifferenzierung, Angiogenese und Wundheilung, reguliert. Entsprechend diesen Funktionen kann eine Dysregulierung von RTK zu Tumorentstehung, verstärktem Wachstum und Metastasierung führen. Aus dem Verständnis über die Bedeutung von RTK in der Onkogenese resultierte das therapeutische Konzept, RTK mittels mAb oder kleiner Moleküle (sogenannter TKI) selektiv und spezifisch zu inhibieren [1]. Dies führte zu einer Reihe von Medikamentenzulassungen, wie beispielsweise dem mAb Trastuzumab (Herceptin®, F. Hoffmann-La Roche AG, Basel, Schweiz) Ende der 1990er-Jahre für die Behandlung von Patientinnen und Patienten mit metastasiertem Mammakarzinom, deren Tumoren eine Überexpression der RTK HER-2/neu („human EGFR 2“, offiziell bekannt als ERBB2 [„erb-b2 receptor tyrosine kinase 2“]) aus der Familie der EGFR aufweisen. In der EU folgte im Jahr 2006 die Zulassung des gegen EGFR (ERBB1) gerichteten mAb Cetuximab (Erbitux®, Merck KGaA, Darmstadt, Deutschland) für die Behandlung fortgeschrittener HNSCC in Kombination mit einer Bestrahlung. Seit 2008 ist das Präparat für die Erstlinientherapie von rezidivierenden und/oder metastasierenden HNSCC in Kombination mit einer platinbasierten Chemotherapie zugelassen. Seit Anfang der 2000er-Jahre wurden weitere TKI für die Behandlung verschiedener maligner Erkrankungen zugelassen, die Zulassung eines TKI für die Monotherapie des HNSCC steht jedoch bislang aus. Klinische Studien und Erfahrungen aus dem klinischen Alltag belegen zum Teil beeindruckende Behandlungserfolge durch TKI. Dieses wertvolle therapeutische Potenzial sollte neben der aktuellen Euphorie bezüglich der Wirksamkeit von Immuncheckpointinhibitoren nicht in den Hintergrund treten. Die Wirksamkeit von TKI ist besonders dann hoch, wenn anhand genetischer Veränderungen des Zielmoleküls ein klinisches Ansprechen akkurat vorausgesagt werden kann. Die kritische Selektion eines passenden Patientenkollektivs ist damit für den Behandlungserfolg entscheidend. Beispielsweise ist bei der chronisch myeloischen Leukämie (CML) die „Abelson murine leukemia“ (ABL)-Tyrosinkinase ursächlich dauerhaft aktiviert und dysreguliert. Der Einsatz des ABL-Tyrosinkinase-Inhibitors Imatinib (Glivec®, Novartis AG, Basel, Schweiz) führte zu sehr guten Behandlungserfolgen und daher 2001 zur ersten Zulassung eines TKI in Europa. Imatinib ist heutzutage Standard bei der Behandlung der CML. Der TKI Alectinib (Alecensa®, F. Hoffmann-La Roche AG) erreichte eine Ansprechrate von 82,9 % bei Patienten mit zuvor unbehandelten fortgeschrittenen nichtkleinzelligen Lungenkarzinomen, deren Tumoren eine Mutation in der RTK „anaplastic lymphoma kinase“ (ALK) trugen [2]. Ein weiteres Beispiel ist der TKI Larotrectinib (Vitrakvi®, Bayer AG, Leverkusen, Deutschland), der bei Patienten, deren Tumoren eine Genfusion unter Beteiligung einer der drei NTRK („neurotrophic receptor tyrosine kinase“) trägt, Ansprechraten von 75–80 % zeigte [3]. Mit der US-Zulassung von Larotrectinib für alle NTRK-Genfusion-tragenden Tumorerkrankungen wird der Paradigmenwechsel bei der biomarkergeleiteten Wirkstoffentwicklung weitergeführt: Nach der Zulassung des Anti-PD-1-Immuncheckpointinhibitors Pembrolizumab (Keytruda®, Merck Sharp & Dohme, Kenilworth, NJ, USA) für alle mikrosatelliteninstabilen und Mismatch-Reparatur-defizienten Tumoren stellt Larotrectinib die nächste histologieunabhängige Zulassung auf Basis einer genetischen Veränderung dar. Somit steht Larotrectinib grundsätzlich für eine Behandlung von Kopf-Hals-Tumorpatienten in den USA zur Verfügung, sofern diese Tumoren eine NTRK-Genfusion tragen. Während diese Mutation bei Speicheldrüsentumoren relativ häufig ist und die Tumoren ein dementsprechend gutes Therapieansprechen auf Larotrectinib zeigen [3], ist eine NTRK-Genfusion bei HNSCC – wenn überhaupt – nur äußerst selten zu finden. So konnte in der HNSCC-Kohorte des The Cancer Genome Atlas nur in einem Tumor (0,3 % aller untersuchter Fälle) eine NTRK-Genfusion gefunden werden [4]. Wesentlich häufiger sind bei HNSCC die Mitglieder der FGFR-RTK-Gene FGFR1, FGFR2 und FGFR3 von Mutationen betroffen [5, 6] und stellen daher ein vielversprechendes Ziel für eine spezifische Inhibierung mit mAb oder TKI bei HNSCC dar. Für den FGFR-Inhibitor Erdafitinib (Balversa®, Janssen Pharmaceutica N.V., Beerse, Belgien) konnte in einer Phase-II-Studie bei Patienten mit lokal fortgeschrittenen oder metastasierten Urothelkarzinomen mit zuvor spezifizierten genetischen Veränderungen der FGFR-Gene eine Ansprechrate von 40 % gezeigt werden [7]. Bei Patienten, die zuvor bereits eine Immuntherapie erhalten hatten, lag die Ansprechrate mit 59 % sogar besonders hoch [7]. Derzeit werden weitere Studien mit FGFR-modulierenden Wirkstoffen durchgeführt, und Ergebnisse sind in Kürze zu erwarten. Ziel dieses Artikels ist es, einen Überblick über die aktuelle Anwendung von FGFR-gerichteten mAb und TKI in der Behandlung von HNSCC und weiteren malignen Erkrankungen des Kopf-Hals-Bereichs zu liefern.
Der FGFR-Signalweg
Die FGFR-Genfamilie umfasst unter anderem die vier Mitglieder FGFR1–4, die eine hohe Sequenzhomologie von 55–72 % aufweisen [8]. Alle vier FGFR-Gene zeigen einen ähnlichen strukturellen Aufbau, mit einer extrazellulären Ligandenbindestelle, einer einfachen Transmembran-Domäne und einer intrazellulären Kinase-Domäne [9]. Einem weiteren Mitglied der Genfamilie, FGFR5 (auch als FGFRL1 bezeichnet), fehlt die intrazelluläre Kinase-Domäne [10]. Bei FGFR6 (auch als FGFR3P1 bezeichnet) handelt sich um ein FGFR3-Pseudogen, dem bisher keine Funktion zugeschrieben werden konnte. Alternatives Spleißen der FGFR1–3-Transkripte führt darüber hinaus zur Bildung multipler Isoformen, mit zum Teil stark unterschiedlicher Ligandenbindespezifität [11, 12].
Die natürlichen Liganden der FGFR sind die FGF. Insgesamt umfasst die FGF-Familie 22 bekannte Familienmitglieder (FGF1–14 und FGF16–23). FGF lassen sich weiter in sechs Unterfamilien unterteilen. Die FGF1- (FGF1 und FGF2), FGF4- (FGF4–FGF6), FGF7- (FGF3, FGF7, FGF10 und FGF22), FGF8- (FGF8, FGF17 und FGF18) und die FGF9-Unterfamilie (FGF9, FGF16 und FGF20) wirken parakrin, die FGF19-Unterfamilie (FGF19, FGF21 und FGF23) wirkt endokrin [13]. FGF11–FGF14 weisen zwar ein hohes Maß an Homologie zu den anderen FGF auf, sind aber nicht in der Lage, FGFR zu aktivieren [14].
Der FGFR-Signalweg ist in einigen exzellenten Übersichtsarbeiten im Detail anschaulich erläutert und wird im Folgenden nur kurz beschrieben [12, 15–17]. Nach Bindung der FGF folgt eine Dimerisierung der FGFR, gefolgt von einer Transautophosphorylierung und anschließender Aktivierung nachgeschalteter Signalwege, beispielsweise des „mitogen-activated protein kinase“ (MAPK)- und des Phosphoinositid-3-Kinasen (PI3K)/Proteinkinasen B (AKT)-Signalwegs [12]. Diese Signalwege sind an der Embryogenese, der Zelldifferenzierung, der Migration, der Angiogenese, dem Zellwachstum und dem programmierten Zelltod beteiligt. Aufgrund der Aktivierung dieser bei der Tumorentstehung und Progression relevanten Signalwege stellen die FGFR typische Onkogene und ein ideales Ziel für gerichtete medikamentöse Therapien dar.
Dysregulierung des FGFR-Signalwegs bei malignen Erkrankungen
Eine Dysregulierung von FGFR-gesteuerten Signalwegen ist in vielen Tumoren, insbesondere bei HNSCC, bei Schilddrüsenkarzinomen und adenoid-zystischen Speicheldrüsentumoren, zu finden und spielt eine treibende Rolle, beispielsweise bei der Angiogenese [16, 18, 19]. Eine Reihe von Veränderungen in FGFR-Signalwegen sind bei malignen Erkrankungen relevant: Eine Genamplifikation oder eine posttranskriptionelle Regulation kann zu einer Überexpression der Rezeptoren führen; Mutationen können zu einer konstitutiven Rezeptoraktivierung oder einer geringeren Liganden-Abhängigkeit führen; nach Translokationen können Fusionsproteine mit einer konstitutiven Aktivität gebildet werden; eine Überexpression der FGF kann eine parakrine oder autokrine Aktivierung von FGFR-Signalwegen induzieren, und alternatives Spleißen kann die Liganden-Spezifität verändern [20].
Überexpression
Eine Überexpression kann zu einer ligandenunabhängigen Dimerisierung der FGFR und damit zu einer Aktivierung der FGFR-Signalkaskade führen [21]. Eine Genamplifikation ist ein wesentlicher Faktor, der zu einer FGFR-Überexpression führt. FGFR-Genamplifikationen sind in manchen Tumorentitäten sehr häufig zu finden [12, 16]. Eine FGFR1-Amplifikation ist beispielsweise je nach Studie für 8–22 % der Plattenepithelkarzinome der Lunge beschrieben [22, 23]. In 279 HNSCC-Tumoren des The Cancer Genome Atlas konnten FGFR-Amplifikationen in 27 der Tumoren (9,7 %) nachgewiesen werden. Dabei traten FGFR-Amplifikationen ausschließlich in den 243 untersuchten human Papillomvirus (HPV)-negativen Tumoren auf und betrafen vorwiegend FGFR1 (FGFR1-Amplifikationen in 23/243 = 9,5 % sowie FGFR2- und FGFR3-Amplifikationen in je 2/243 = 0,8 % Tumoren) [6]. Eine höhere FGFR1-Amplifikationsrate von 12,6–15 % konnte in weiteren Studien gefunden werden [24, 25]. Die starke Assoziation von FGFR1-Amplifikationen mit HPV-Negativität konnte in weiteren Arbeiten unabhängig bestätigt werden [5, 24, 26, 27]. Jedoch weisen nicht alle FGFR-amplifizierten Tumoren zwangsläufig auch eine FGFR-Überexpression auf, was beispielsweise über eine posttranskriptionelle Regulation der Expression über MicroRNA erklärt werden kann [28].
Aktivierende Mutation
Aktivierende Mutationen der FGFR-Gene können zu einer Dysregulation der FGFR-Signalkaskade führen, indem diese Mutation zu einer Erhöhung der Kinase-Aktivität, zu einer ligandenunabhängigen Rezeptor-Dimerisierung oder einer veränderten Bindeaffinität gegenüber den Liganden führt [12]. Mutationen des FGFR-Signalwegs gehören zu den häufigsten Mutationen bei malignen Erkrankungen [29]. Innerhalb der 279 HNSCC-Tumoren des The Cancer Genome Atlas konnten FGFR-Mutationen in sieben Tumoren (2,5 %) nachgewiesen werden (FGFR1-Mutation in einem HPV-negativen Tumor, FGFR2-Mutationen in zwei HPV-negativen Tumoren und FGFR3-Mutationen in je zwei HPV-negativen und -positiven Tumoren) [6]. Höhere Mutationsraten von 14 % (FGFR3) und 4 % (FGFR2) wurden in einer weiteren Studie in HPV-positiven Tumoren gefunden, während HPV-negative Tumoren keine Mutationen trugen [5]. In Einzelfällen liegen auch bei papillären Schilddrüsenkarzinomen FGFR3-Mutationen vor [30]. Mutationen des FGFR-Signalwegs (beispielsweise FGF16 und FGFR4) sind darüber hinaus bei adenoid-zystischen Speicheldrüsenkarzinomen zu finden [19].
Genfusionen
Fusionsgene sind Hybride, die nach der strukturellen Umordnung von zwei zuvor voneinander unabhängigen Genen entstehen. Bisher konnten eine Reihe von Fusionspartnergenen von FGFR1–3 in verschiedenen malignen Erkrankungen identifiziert werden, darunter TACC1, TACC3 („transforming acidic coiled-coil containing protein 1“ und „transforming acidic coiled-coil containing protein 3“), BAIAP2L1 („BAR/IMD domain containing adaptor protein 2 like 1“), BICC1 („BicC family RNA binding protein 1“) und AHCYL1 („adenosylhomocysteinase like 1“) [6, 31–37]. Entsprechend der jeweiligen Art der Genumlagerung kann die Aktivität der FGFR dadurch auf verschiedene Weise verändert werden: Die Kinasedomäne des Fusionsgenprodukts kann ligandenunabhängig konstitutiv aktiviert sein, oder das Gen kann in den regulatorischen Einfluss eines starken Promotors geraten, wodurch es zu einer Überexpression des Fusionsproteins kommt [31–33]. Bei HNSCC und Nasopharynxkarzinomen konnte die Fusion von FGFR3 mit TACC3 nachgewiesen werden [32, 37]. FGFR3-TACC3-Fusionen wurden bei zwei von 36 (6 %) HPV-positiven HNSCC-Tumoren des The Cancer Genome Atlas gefunden [6]. Die Fusion mit TACC3 führt zu einer konstitutiven FGFR3-Kinaseaktivität [31]. In Mausmodellen konnte die onkogene Eigenschaft des FGFR3-TACC3-Fusionsproteins für Tumoren des zentralen Nervensystems und der Lunge gezeigt werden [38]. Fusionen unter Beteiligung von FGFR2 finden sich in ca. 0,5 % der papillären Schilddrüsenkarzinome [30].
Veränderung der autokrinen/parakrinen Regulation
Veränderte autokrine oder parakrine Signalschleifen aufgrund einer verstärkten Freisetzung von FGF durch Tumorzellen oder dem Stroma können ebenfalls zu einer Dysregulation des FGFR-Signalwegs führen [12]. Die Amplifikation von FGF kann beispielsweise zu einer verstärkten FGF-Sekretion und veränderter autokriner Regulation führen [39, 40]. Eine besonders hohe Prävalenz von FGF-Amplifikationen bei HNSCC betrifft FGF3 (22,9 %, 67/292), FGF4 (21,2 %, 62/292) und FGF19 (22,6 %, 66/292), welche in Chromosomenbande 11q13 zusammen mit dem Zellzyklusregulator Cyclin D1 (CCND1) lokalisiert sind [39]. Entsprechend einer Koamplifikation wurde eine CCND1-Amplifikation in 27 % (76/279) der HNSCC des The Cancer Genome Altas gefunden [6] und steht damit im Einklang mit der Prävalenz der FGF3-, FGF4- und FGF5-Amplifikation. Besonders häufig von diesen Koamplifikationen waren die HPV-negativen (31 %) im Vergleich zu den HPV-positiven Tumoren (3 %) betroffen [6].
Alternatives Spleißen
Alternatives Spleißen der FGFR1–3 führt zur Expression verschiedener Isoformen mit unterschiedlicher Ligandenbindespezifität. Darüber hinaus können verkürzte Transkripte zur Bildung löslicher FGFR-Varianten führen [11].
Inhibitoren des FGFR-Signalwegs
Für die zielgerichtete Inhibition des FGFR-Signalwegs werden in der Therapie von malignen Erkrankungen verschiedene Ansätze mittels TKI, mAb (mit und ohne Wirkstoff-Konjugat) oder einer Ligandenfalle verfolgt. Diese Wirkstoffe befinden sich aktuell größtenteils in der präklinischen oder klinischen Prüfung.
TKI
TKI sind kleine Moleküle, die in der Lage sind, die Kinaseaktivität der RTK über verschiedene Wirkmechanismen zu hemmen [9, 41]. TKI wirken kompetitiv zur Adenosintriphosphat (ATP)-Bindung an die hochkonservierte ATP-Bindestelle der RTK oder kompetitiv zur Bindung des Substrats der RTK. Andere TKI inhibieren kompetitiv die phosphorylierende RTK-Domäne, oder sie binden außerhalb des aktiven Zentrums und bewirken über eine Konformationsänderung eine nichtkompetitive (allosterische) Hemmung. Entsprechend der jeweiligen Affinität zu verschiedenen RTK-spezifischen Bindungsstellen sind TKI mehr oder weniger selektiv für bestimmte RTK. Aufgrund der hohen Konservierung der ATP-Bindestelle der RTK wirken TKI, die mit der ATP-Bindestelle konkurrieren, nichtselektiv hemmend auf verschiedene RTK, beispielsweise VEGFR („vascular endothelial growth factors“), PDGFR („platelet-derived growth factor receptors“), FGFR, aber auch FLT3 („fms related receptor tyrosine kinase 3“), RET („ret proto-oncogene“) und KIT („KIT proto-oncogene, receptor tyrosine kinase“). Diese nichtselektiven TKI können aufgrund der Bandbreite der Zielmoleküle eine höhere Wirkung, aber auch stärkere Nebenwirkungen aufweisen. Sie werden vornehmlich als Angiogenesehemmer eingesetzt. Entsprechend ist für die Behandlung von Tumoren mit dysreguliertem FGFR-Signalweg die Verwendung von selektiven, hochpotenten FGFR-TKI vielversprechender [9, 12]. Eine Vielzahl verschiedener FGFR-TKI befinden sich zurzeit in unterschiedlichen Stadien der klinischen Entwicklung und Prüfung (Tab. 1; [9, 12, 13, 42, 43]). Der selektive TKI Erdafitinib hat kürzlich die globale Zulassung durch die US-amerikanische Gesundheitsbehörde FDA (Food and Drug Administration) für die Behandlung von metastasierten Urothelkarzinomen mit FGFR3-Mutationen oder FGFR2/3-Genfusionen erhalten [44]. Weitere selektive FGFR-TKI befinden sich in klinischer Prüfung der Phase III (AZD4547 [AstraZeneca PLC, London, UK], Futibatinib [Taiho Pharmaceutical, Tokio, Japan], Infigratinib [QED Therapeutics, Inc., San Francisco, CA, USA], Rogaratinib [Bayer AG]). Nichtselektive TKI (Anlotinib [Advenchen Laboratories, LLC., Moorpark, CA, USA und Chia Tai-Tianqing Pharmaceutical Holdings Co., Ltd., Jiangsu, China], Nintedanib [Boehringer Ingelheim AG & Co. KG, Ingelheim am Rhein, Deutschland], Ponatinib [Ariad Pharmaceuticals, Inc., Cambridge, MA, USA]) sind für die Behandlung von Leukämien oder als Angiogenesehemmer für nichtkleinzellige Lungenkarzinome regional zugelassen [45, 46].
Wirkstoff | Typ | Ziel | Hersteller | Entwicklungsstand | Klinische Prüfung HNSCC | Weiterer HNO-Bezug |
---|---|---|---|---|---|---|
Aprutumab-Ixadotin (BAY1187982) | Antikörper-Wirkstoff-Konjugat | FGFR2 | Bayer AG (Leverkusen, Deutschland) | Phase I, abgebrochen | N = 1, Phase I (NCT02368951f) | Adenoid-zystische Karzinome der Parotis und der Zunge (je N = 1, NCT02368951f) |
LY3076226 | Antikörper-Wirkstoff-Konjugat | FGFR3 | Eli Lilly and Company (Indianapolis, IN, USA), ImmunoGen, Inc. (Waltham, MA, USA) | Phase I, abgebrochen | Nein | Nein |
FP-1039 (GSK3052230) | FGF-Ligandenfalle | FGF | Five Prime Therapeutics, Inc. (South San Francisco, CA, USA) | Phase II, abgebrochen | N = 4, Phase I (NCT00687505e) | Nein |
Aprutumab (BAY1179470) | mAb | FGFR2 | Bayer AG | Phase I, abgebrochen | Nein | Nein |
Bemarituzumab (FPA144) | mAb | FGFR2b | Five Prime Therapeutics, Inc. | Phase III (Magenkarzinom), laufend | Nein | Nein |
Vofatamab (B-701) | mAb | FGFR3 | Rainier Therapeutics, Inc. (San Leandro, CA, USA) | Phase I/II, abgebrochen | Nein | Nein |
Anlotinib (AL3818) | TKI (nichtselektiv) | FGFR1–4 | Chia Tai-Tianqing Pharmaceutical Holdings Co., Ltd., Advenchen Laboratories, LLC. | Zugelassen (NSCLC; China) | N = NV, Phase II (NCT04203719b) | Kopf-Hals-Adenokarzinome, Phase II (N = 21, NCT03591666e); Nasopharynxkarzinom, Phase III, Phase I/II (N = 336, NCT03601975a, N = 40, NCT03639467a); Schilddrüse, Phase I (N = 1, NCT01833923e) |
Brivanib-Alaninat (BMS-582664), Brivanib (BMS-540215) | TKI (nichtselektiv) | FGFR1–3 | Bristol-Myers Squibb Co. (New York City, NY, USA) | Phase III (HCC, CRC), fehlgeschlagen; Phase II, laufend | Nein | Nein |
Danusertib (PHA-739358) | TKI (nichtselektiv) | FGFR1 | Nerviano Medical Sciences S.r.l. (Nerviano, Italien) | Phase II, abgebrochen | Nein | Nein |
Dovitinib (TKI258) | TKI (nichtselektiv) | FGFR1/3 | Novartis AG, Oncology Venture A/S (Hørsholm, Dänemark) | Phase III (RCC), fehlgeschlagen; Biomarker-Evaluation laufend | Nein | Schilddrüse, Phase II (N = 40, NCT01964144e); adenoid-zystische Karzinome, Phase II (N = 35, NCT01524692e; N = 21, NCT01678105e, N = 32, NCT01417143e) |
Lucitanib (E-3810) | TKI (nichtselektiv) | FGFR1–2 | Clovis Oncology, Inc. (Boulder, CO, USA) | Phase II, laufend | Nein | Schilddrüse, Phase I/II (N = 9, NCT01283945e) |
Masitinib (Masivet®, AB1010) | TKI (nichtselektiv) | FGFR3 | AB Science (Paris, Frankreich) | Phase III (Adenokarzinom der Prostata und des Pankreas), laufend | Nein | Nein |
MAX-40279 | TKI (nichtselektiv) | FGFRh | MaxiNovel Pharmaceuticals, Inc. (Guangzhou, China) | Phase I, laufend | Nein | Nein |
Nintedanib (Vargatef®, BIBF1120) | TKI (nichtselektiv) | FGFR1–3 | Boehringer Ingelheim AG & Co. KG | Zugelassen (NSCLC/Adenokarzinom; EU) | N = NV, Phase II (NCT03292250a) | Speicheldrüse, Phase II (N = 20, NCT02558387e); Schilddrüse, Phase II (N = 45; NCT01788982e) |
Orantinib (TSU-68, SU-6668) | TKI (nichtselektiv) | FGFR1 | Pifzer, Inc. (New York City, NY, USA), Taiho Pharmaceutical | Phase III (HCC), abgebrochen | Nein | Nein |
Ponatinib (AP24534) | TKI (nichtselektiv) | FGFR1–3 | Ariad Pharmaceuticals, Inc. | Zugelassen (CML, AML; USA) | N = NV, Phase II/III (NCT01761747f) | Schilddrüse, Phase II (N = 31, NCT03838692b; N = 3, NCT01838642f) |
Surufatinib (Sulfatinib, HMPL-012) | TKI (nichtselektiv) | FGFR1 | Hutchison MediPharma Ltd. (Shanghai, China) | Phase II, laufend | Nein | Schilddrüse, Phase II (N = 18, NCT02614495e) |
XL228 | TKI (nichtselektiv) | FGFR1–3 | Exelixis Inc. (Alameda, CA, USA) | Phase I, abgebrochen | Nein | Nein |
XL999 | TKI (nichtselektiv) | FGFR1/3 | Symphony Evolution, Inc. (Rockville, MD, USA) | Phase II, abgebrochen | Nein | Nein |
Alofanib (RPT835) | TKI (selektiv) | FGFR2 | Ruspharmtech (St. Petersburg, Russland) | Phase I, laufend | Nein | Nein |
ASP5878 | TKI (selektiv) | FGFR1–4 | Astellas Pharma, Inc. (Tokio, Japan) | Phase I, beendet | Nein | Nein |
AZD4547 | TKI (selektiv) | FGFR1–4 | AstraZeneca PLC | Phase II/III (NSCLC/squamös), beendet | Nein | Nein |
Debio 1347, CH5183284 | TKI (selektiv) | FGFR1–3 | Debiopharm (Lausanne, Schweiz) | Phase I/II, laufend | Möglich, Phase II (NCT03834220c) | Möglich, Phase II (NCT03834220c) |
Derazantinib (ARQ 087) | TKI (selektiv) | FGFR1–3 | Basilea Pharmaceutica AG (Basel, Schweiz) | Phase II, laufend | Nein | Nein |
E7090 | TKI (selektiv) | FGFR1–3 | Eisai Co., Ltd. (Tokio, Japan) | Phase I, laufend | Nein | Nein |
Erdafitinib (Balversa®, JNJ-42756493) | TKI (selektiv) | FGFR1–4 | Janssen Pharmaceutica N.V. | Zugelassen (Urothelkarzinom, USA) | N ≤ 11, Phase I (NCT01703481e); möglich, Phase I/II (NCT04083976a, NCT03547037a, NCT03210714a) | Möglich, Phase I/II (NCT04083976a, NCT03547037a, NCT03210714a) |
FGF401 | TKI (selektiv) | FGFR4 | Novartis AG | Phase I, beendet | Nein | Nein |
Fisogatinib (BLU-554) | TKI (selektiv) | FGFR4 | Blueprint Medicines Corp. (Cambridge, MA, USA) | Phase I, laufend | Nein | Nein |
Futibatinib (TAS-120) | TKI (selektiv) | FGFR1–4 | Taiho Pharmaceutical | Phase III (CCC), laufend | Möglich, Phase II (NCT04189445b) | Möglich, Phase II (NCT04189445b) |
H3B-6527 | TKI (selektiv) | FGFR4 | H3 Biomedicine, Inc. (Cambridge, MA, USA), Eisai Co., Ltd. | Phase I, laufend | Nein | Nein |
HMPL-453 | TKI (selektiv) | FGFR1–3 | Hutchison MediPharma Ltd. | Phase I/II, laufend | Möglich, Phase I/II (NCT03160833a) | Möglich, Phase I/II (NCT03160833a) |
INCB062079 | TKI (selektiv) | FGFR4 | Incyte, Inc. (Wilmington, DE, USA) | Phase I, laufend | Möglich, Phase I (NCT03144661a) | Nasopharynxkarzinom, Phase I (NCT03144661a) |
Infigratinib (BGJ398) | TKI (selektiv) | FGFR1–4 | QED Therapeutics | Phase III (CCC), laufend | Je N = 1, Phase I (NCT02706691g, NCT01928459e) | Nein |
LY2874455 | TKI (selektiv) | FGFR1–4 | Eli Lilly and Company | Phase I, laufend | Nein | Nein |
Pemigatinib (INCB054828) | TKI (selektiv) | FGFR1–3 | Incyte, Inc. | Phase II, laufend | Möglich, Phase I/II (NCT04003623a, NCT03235570a, NCT02393248a, NCT03822117a) | Möglich, Phase I/II (NCT04003623a, NCT03235570a, NCT02393248a, NCT03822117a) |
PRN1371 | TKI (selektiv) | FGFR1–4 | Principia Biopharma, Inc. (South San Francisco, CA, USA) | Phase I, laufend | Nein | Nein |
Rogaratinib (BAY1163877) | TKI (selektiv) | FGFR1–4 | Bayer AG | Phase II/III (Urothelkarzinom), laufend | N = 8, Phase I, (NCT01976741e); N = NV, Phase I (NCT02592785e); möglich, Phase I (NCT03788603a, NCT03517956a) | Möglich, Phase I (NCT03788603a, NCT03517956a) |
CPL304110 | TKIh | FGFRh | Celon Pharma S.A. (Kiełpin, Polen) | Phase I, laufend | Nein | Nein |
AML Akute Myeloische Leukämie, CCC „cholangiocellular carcinoma“, Cholangiozelluläres Karzinom, Gallengangskarzinom, CRC „colorectal cancer“, Kolorektalkarzinom, HCC „hepatocellular carcinoma“, Hepatozelluläres Karzinom, NSCLC „non-small cell lung cancer“, Nichtkleinzelliges Lungenkarzinom, RCC „renal cell carcinoma“, Nierenzellkarzinom, NV nicht verfügbar
aRekrutierend
bNoch nicht rekrutierend
cLaufend, nicht rekrutierend
dAbgeschlossen, ohne Ergebnisse
eAbgeschlossen, mit Ergebnissen
fAbgebrochen
gAbgebrochen wegen geringer Rekrutierung
hNicht näher spezifiziert
mAb
Gegen FGFR gerichtete therapeutische monoklonale Antikörper inhibieren die FGFR-Signalkaskade über eine Blockade der Ligandenbindung oder eine Dimerisierung. Diese mAb sind spezifisch für bestimmte FGFR-Isoformen und können daher ein günstigeres Nebenwirkungsspektrum aufweisen. FGFR-mAb können darüber hinaus als Konjugate mit Toxinen angewendet werden.
Ligandenfallen
Ligandenfallen binden und neutralisieren selektiv die an FGFR1-bindenden FGF und verhindern so die Aktivierung von FGFR1 [47, 48]. Der lösliche Wirkstoff FP-1039 stellt im Wesentliche ein Fusionsprotein der extrazellulären ligandenbindenden Domäne von FGFR1 mit dem Immunglobulin G1 dar [47, 48].
Präklinische und klinische Wirksamkeit und Verträglichkeit von gegen FGFR-gerichteten Wirkstoffen
Die präklinische und klinische Wirksamkeit sowie die Verträglichkeit von gegen FGFR-gerichteten Wirkstoffen sind vom spezifischen Wirkstoff, von der Tumorentität und von den molekularen Veränderungen des individuellen Tumors abhängig [12].
Wirksamkeit und Verträglichkeit von TKI
In-vitro-Untersuchungen von 58 Lungenkarzinom-Zelllinien ergaben, dass die FGFR1-mRNA- und -Proteinexpression, nicht jedoch die Genamplifikation prädiktiv für die Sensitivität gegenüber dem FGFR-TKI Ponatinib ist [49]. Dieses Ergebnis konnte für HNSCC-Zelllinien, die mit dem FGRF-TKI Infigratinib behandelt wurden, bestätigt werden [50]. Die Sensitivität von HNSCC-Zelllinien gegenüber Infigratinib konnte darüber hinaus für FGFR3-mRNA-exprimierende Linien bestätigt werden [51]. Noch sind Erfahrungen bezüglich der Wirksamkeit von TKI bei Patienten mit metastasiertem HNSCC und weiteren Karzinomen des Kopf-Hals-Bereichs rar (Tab. 2). Klinische Daten einer Phase-I-Studie (Patienten mit metastasierten soliden Tumoren, inklusive sieben HNSCC-Patienten; NCT01976741) zeigten, dass nur 15 % (15/100) der Patienten mit FGFR-überexprimierenden Tumoren auf eine Behandlung mit dem FGFR-Inhibitor Rogaratinib ansprachen. Eine Subgruppenanalyse zeigte jedoch eine besonders hohe Ansprechrate mit 67 % (10/15) in FGFR-überexprimierenden Tumoren ohne detektierte genomische FGFR-Veränderung [52]. Bei einem der sieben evaluierbaren HNSCC-Patienten konnte ein partielles Ansprechen und bei zwei Patienten eine Stabilisierung der Tumorerkrankung erreicht werden, während bei vier Patienten ein Progress auftrat [52]. Eine frühere Auswertung dieser Studie zusammen mit einer weiteren Phase-I-Studie (NCT02592785) ergab unter den insgesamt zehn eingeschlossenen und evaluierbaren HNSCC-Patienten ein partielles Ansprechen bei einem Patienten und bei sechs Patienten eine Stabilisierung der Erkrankung, während bei zwei Patienten ein Progress eintrat [52, 53]. Tumoren von sechs der zehn Patienten wiesen eine FGFR3-mRNA-Überexpression auf, darunter die beiden Patienten mit partiellem Ansprechen [52, 53]. Seit 2017 läuft die biomarkergesteuerte Phase-II-Umbrella-Studie der European Organisation for Research and Treatment of Cancer (EORTC, NCT03088059) [54] mit dem Ziel, eine individuelle Therapie, basierend auf den spezifischen molekularen Eigenschaften des HNSCC, anzupassen. In dieser Studie erhalten HNSCC-Patienten mit FGFR1/2/3-mRNA-Überexpression eine Therapie mit Rogaratinib. Ergebnisse dieser Studie werden Ende 2021/Anfang 2022 erwartet.
Tumor | Wirkstoff/Wirkstoffklasse | Patientenzahl | Klinischen Wirksamkeit | Studie | Molekulare Veränderungen | Referenz |
---|---|---|---|---|---|---|
HNO (adenoid-zystisch) | Dovitinib/TKI (nichtselektiv) | N ≤ 34 | 70,6 % DCR, 5,9 % ORR | NCT01524692 (Phase II) | Keine Angabe | Dillon et al. [66] |
HNO (Adenokarzinome) | Anlotinib/TKI (nichtselektiv) | N = 21 | 81,0 % DCR, 19,1 % ORR | NCT03591666 (Phase II) | Keine Angabe | Jiang et al. [64] |
HNO (nicht weiter spezifiziert) | Erdafitinib/TKI (selektiv) | N = 11 | Keine Angabe | NCT01703481 (Phase I) | Keine Angabe | Bahleda et al. [55] |
HNO (nicht weiter spezifiziert) | Infigratinib/TKI (selektiv) | N = 1 | 100 % (1/1) PR | NCT01928459 (Phase I) | Keine Angabe | Hyman et al. [59] |
HNSCC | Rogaratinib/TKI (selektiv) | N = 7 | 14,3 % (1/7) PR, 28,6 % (2/7) SD, 57,1 % (4/7) PD | NCT01976741 (Phase I) | Vorwiegend FGFR-überexprimierend ohne genomische Veränderungen | Schuler et al. [52]a |
HNSCC | Rogaratinib/TKI (selektiv) | N = 10 | 10 % (1/10) PR, 60 % (6/10) SD, 20 % (2/10) PD, 10 % (1/10) unbekannt | NCT02592785 (Phase I), NCT01976741 (Phase I) | Vorwiegend FGFR3-überexprimierend ohne genomische Veränderungen | Joerger et al. [53]a |
HNSCC | Keine Angabe/TKI (selektiv) | N = 1 | 100 % (1/1) CR | NCT02152254 | FGF3, FGF4, FGF19, FGF6 und FGF3 Amplifikation | Dumbrava et al. [60] |
HNSCC, Schilddrüsenkarzinom | Anlotinib/TKI (nichtselektiv) | N ≤ 140 | Noch nicht bekannt | NCT04203719 (Phase II) | Keine Angabe | – |
Schilddrüsenkarzinom | Anlotinib/TKI (nichtselektiv) | N = 1 | 100 % (1/1) SD | NCT01833923 (Phase I) | Keine Angabe | Sun et al. [63] |
Schilddrüsenkarzinom | Dovitinib/TKI (nichtselektiv) | N = 40 | 69,1 % DCR, 20,5 % ORR | NCT01964144 (Phase II) | Keine Angabe | Lim et al. [65] |
Schilddrüsenkarzinom | Lucitanib/TKI (nichtselektiv) | N = 9 | 44,4 % ORR, 22,0 % (2/9) CR, 22,0 % (2/9) PR | NCT01283945 (Phase I/II) | Keine Angabe | Soria et al. [68] |
Schilddrüsenkarzinom | Nintedanib/TKI (nichtselektiv) | N = 70 | 3,71 (TKI) vs 2,86 (Placebo) Monate PFS | NCT01788982 (Phase II) | Keine Angabe | Schlumberger et al. [69] |
Schilddrüsenkarzinom | Surufatinib/TKI (nichtselektiv) | N = 18 | 23,5 % (4/17) PR | NCT02614495 (Phase II) | Keine Angabe | Chen et al. [71] |
Speicheldrüsenkarzinom (adenoid-zystisch) | Dovitinib/TKI (nichtselektiv) | N = 21 | 71,4 % DCR | NCT01678105 (Phase II) | Keine Angabe | Hotte et al. [67] |
Speicheldrüsenkarzinom (ohne Angabe der Histologie) | Nintedanib/TKI (nichtselektiv) | N = 20 | 75 % DCR, 0 % ORR | NCT02558387 (Phase II) | Keine Angabe | Kim et al. [70] |
ORR „objective response rate“, DCR „disease control rate“, PR „partial response“, CR „complete response“, SD „stable disease“, PD „progressive disease“, PFS „progression-free survival“
aStudienüberlappend
In eine Phase-I-Studie (NCT01703481) mit dem selektiven FGFR-TKI Erdafitinib wurden 187 Patienten mit verschiedenen fortgeschrittenen soliden Tumoren eingeschlossen und eine objektive Ansprechrate von 11 % (21/187) erreicht [55]. Bei weiteren 16 % (29/187) konnte eine Stabilisierung der Tumorerkrankung erzielt werden. Besonders hoch war die Ansprechraten bei Urothel- (46 %) und Cholangiokarzinomen (27 %) mit FGFR-Mutationen oder -Fusionen [55]. Bei 6 % (11/187) der eingeschlossenen Patienten handelte es sich um Patienten mit Kopf-Hals-Tumoren ohne genauere Angabe der Histologie, über deren Ansprechen auf die Therapie jedoch nicht gesondert berichtet wurde. Eine kürzlich veröffentlichte Phase-II-Studie (NCT02365597) zeigte in vorbehandelten Patienten mit fortgeschrittenem inoperablen oder metastasiertem Urothelkarzinom mit einer FGFR3-Mutation oder FGFR2/3-Genfusion eine Ansprechrate von 40 % (dabei 3 % Komplettremissionen) nach Behandlung mit Erdafitinib [7]. Aufgrund dieser Studienergebnisse erhielt Erdafitinib in dieser Anwendung eine beschleunigte Zulassung durch die FDA. In der Studie zeigten 17 der 99 (17 %) eingeschlossenen Patienten FGFR3-TACC3-Fusionen im Tumor [7]. Eine Ansprechrate von 25,4 % und eine Stabilisierung der Erkrankung bei weiteren 38,8 % der 67 inkludierten Patienten mit metastasiertem Urothelkarzinom, die FGFR3-Mutationen oder -Fusionen trugen, konnte in der Expansionskohorte einer Phase-I-Studie des TKI Infigratinib erreicht werden [56]. In dieser Studie trugen 7,5 % der Tumoren FGFR3-TACC3-Fusionen. Über das Ansprechen in der Subgruppe der Tumoren mit FGFR3-TACC3-Fusionen wurde nicht gesondert berichtet [7]. Allerdings zeigen präklinische In-vitro- und In-vivo-Daten, dass FGFR3-TACC3-positive Tumoren sensitiv für FGFR-Inhibitoren sind [31, 32, 57]. Die prädiktive Eigenschaft von FGFR-Fusionen für das Ansprechen auf FGFR-TKI konnte auch in einer Phase-II-Studie (NCT02150967) des Wirkstoffs Infigratinib bei Patienten mit vorbehandeltem Cholangiokarzinom gezeigt werden [58]. In dieser Studie sprachen 18,8 % (9/48) der Patienten, deren Tumoren eine FGFR2-Fusion trugen, auf die FGFR-Inhibierung an [58]. In den präklinischen Studien wurden allerdings bisher keine HNSCC-Zelllinien hinsichtlich der Sensitivität gegenüber einer FGFR-Inhibition getestet. Da FGFR3-TACC3-Fusionen vereinzelt bei HPV-positiven HNSCC-Tumoren gefunden werden [6], könnte eine FGFR-gerichtete Therapie bei diesen Patienten ein vielversprechender Ansatz sein. Für einen Patienten mit einem Kopf-Hals-Tumor unbeschriebener Histologie konnte anekdotisch ein partielles Ansprechen auf Infigratinib gefunden werden (NCT01928459) [59]. Eine geplante Studie zu Infigratinib in HNSCC (NCT02706691) wurde wegen ungenügender Patientenrekrutierung allerdings beendet.
Eine Kasuistik beschreibt eine Komplettremission bei einem Patienten mit metastasiertem HNSCC unter Behandlung mit einem nicht näher beschriebenen selektiven FGFR-Inhibitor im Rahmen der IMPACT-II-Studie (NCT02152254). Der Tumor mit unbekanntem HPV-Status wies Amplifikationen von FGF3, FGF4, FGF19, FGF6 und FGF3 auf [60].
Wie die Wirksamkeit, so ist auch die Verträglichkeit der TKI vom jeweiligen Wirkstoff abhängig. Generell führen selektive TKI zu geringeren Nebenwirkungen im Vergleich zu nichtselektiven TKI [12]. In der Zulassungsstudie (NCT02365597) von Erdafitinib zur Behandlung des lokal fortgeschrittenen oder metastasierten Urothelkarzinoms kam es bei 46 % der Patienten zu Nebenwirkungen vom Grad 3–4 (v. a. Hyponatriämie, Stomatitis und Asthenie). Dreizehn der 99 (13 %) behandelten Patienten brachen die Therapie wegen der Nebenwirkungen ab. Es gab keine behandlungsbezogenen Todesfälle [7]. In der Phase-I-Dosisfindungsstudie (NCT01976741) von Rogaratinib bei Patienten mit fortgeschrittenen Tumoren wurden 126 Patienten behandelt. Bei 36 von 126 (29 %) kam es zu Nebenwirkungen vom Grad 3–4 (v. a. Müdigkeit und asymptomatisch erhöhte Lipase). Sechs der 126 (5 %) behandelten Patienten brachen die Therapie wegen der Nebenwirkungen ab. Es gab ebenfalls keine behandlungsbezogenen Todesfälle [52].
Wirksamkeit und Verträglichkeit von TKI konnte ebenfalls für die Behandlungen weiterer maligner Erkrankungen des Kopf-Hals-Bereichs gezeigt werden. Der nichtselektive TKI Anlotinib inhibiert VEGFR, PDGFR, FGFR und KIT [61, 62]. In einer Phase-I-Studie (NCT01833923) war ein Patient mit einem Schilddrüsenkarzinom eingeschlossen, bei dem eine Stabilisierung der Erkrankung erreicht werden konnte [63]. In die folgende Phase-II-Studie wurden 21 Patienten mit Adenokarzinomen des Kopf-Hals-Bereichs eingeschlossen (NCT03591666) [64]. Die häufigsten Nebenwirkungen ≥Grad 3 waren arterielle Hypertonie (28,6 %) und Hand-Fuß-Syndrom (9,5 %). Bei 19,1 % der Patienten wurde ein objektives Ansprechen beobachtet, und es konnte eine Erkrankungskontrollrate von 81,0 % erreicht werden [64]. Eine Phase-II-Studie (NCT04203719) mit einem geplanten Einschluss von 140 Patienten mit Plattenepithelkarzinomen des Kopf-Hals-Bereichs, der Lunge sowie Schilddrüsenkarzinomen und Pleuramesotheliomen läuft zurzeit in China an.
Dovitinib ist ein gegen FGFR, VEGFR, PDGFR, KIT und FLT3 gerichteter TKI. In einer Phase-II-Studie (NCT01964144) mit 40 eingeschlossenen Schilddrüsenkarzinom-Patienten (23 papilläre, 12 medulläre und fünf follikuläre Schilddrüsenkarzinome) zeigte sich eine mäßige Wirkung bei handhabbaren Nebenwirkungen. Bei den 39 evaluierbaren Patienten lag die Ansprechrate bei 20,5 % (8/39) und die Erkrankungskontrollrate bei 69,1 % (26/39). Die häufigsten Nebenwirkungen waren Grad 1 und 2 und umfassten Diarrhö (53,8 %), Anorexie (35,8 %), Übergeben (25,6 %), Müdigkeit (23,1 %) und Übelkeit (20,5 %) [65]. In eine weitere Phase-II-Studie (NCT01524692) wurden 34 Patienten mit adenoid-zystischen Karzinomen vorwiegend des Kopf-Hals-Bereichs eingeschlossen und eine vergleichbare Erkrankungskontrollrate von 70,6 % (24/34) bei 5,9 % (2/34) partiell ansprechenden Erkrankungen gefunden [66]. Vergleichbare Ergebnisse lieferte eine zweite Phase-II-Studie (NCT01678105) mit 21 Patienten mit adenoid-zystischen Karzinomen der Speicheldrüse. Hier konnte eine Stabilisierung bei 71,4 % (15/21) der Probanden erreicht werden [67]. Nachdem der klinische Endpunkt einer Phase-III-Studie im Nierenzellkarzinom nicht erreicht werden konnte, wurde die Entwicklung des Wirkstoffs durch Novartis zunächst ausgesetzt. Zwischenzeitlich prüft die Firma Oncology Venture A/S eine relative Erhöhung der Wirksamkeit durch eine biomarkerbasierte Stratifizierung des Patientenkollektivs.
In einer Phase-I/II-Studie (NCT01283945) des gegen VGFR1–3, FGFR1/2 und PDGFR gerichteten TKI Lucitanib wurden unter anderem neun Patienten mit Schilddrüsenkarzinomen eingeschlossen. Bei handhabbaren Nebenwirkungen konnte bei 44,4 % (4/9) ein Ansprechen (je zwei Komplettremissionen und partielle Remissionen) beobachtet werden [68].
In zwei Phase-II-Studien wurde der in Europa für die Behandlung des Adenokarzinoms der Lunge zugelassene, gegen VGEFR1–3, FGFR1–3 und PDGFR gerichtete TKI Nintedanib an Patienten mit Schilddrüsen- (NCT01788982) und Speicheldrüsentumoren (NCT02558387) getestet. Eine Zweitlinientherapie der Schilddrüsenkarzinome mit Nintedanib führte im Vergleich zu Placebo zu einer leichten Verlängerung des progressionsfreien Überlebens (3,71 im Vergleich zu 2,86 Monate, p = 0,095) [69]. Nintedanib bei Patienten mit rekurrenten oder metastasierten Speicheldrüsentumoren führte zwar bei 75 % (15/20) der Patienten zu einer Stabilisierung der Erkrankung, allerdings war kein objektives Ansprechen zu beobachten, sodass die Studie gestoppt wurde [70].
Der unter anderem gegen FGFR1 gerichtete nichtselektive TKI Surufatinib wurde in einer Phase-II-Studie (NCT02614495) an 18 Patienten mit Schilddrüsenkarzinomen getestet. Bei 17 evaluierbaren Patienten lag die Ansprechrate (partielles Ansprechen) bei 23,5 % (4/17). Die häufigsten Nebenwirkungen waren Proteinurie (72,2 %; Grad 3–4: 22,2 %), Hypertriglyzeridämie (50,0 %; Grad 3–4: 0 %), arterielle Hypertonie (44,4 %; Grad 3–4: 16,7 %), Bilirubin-Anstieg im Blut (44,4 %; Grad 3–4: 5,6 %) und Diarrhö (33,3 %; Grad 3–4: 0 %) [71].
Wirksamkeit und Verträglichkeit der Antikörper-Wirkstoff-Konjugate
Aprutumab-Ixadotin ist ein gegen FGFR2 gerichtetes Antikörper-Wirkstoff-Konjugat, dass in vivo und in vitro geeignete Eigenschaften zeigte, sodass eine Phase-I-Studie initiiert wurde (NCT02368951) [72, 73]. Eine Zwischenanalyse nach Einschluss von 20 Patienten ergab jedoch eine geringe Verträglichkeit. Die häufigsten Nebenwirkungen ≥Grad 3 waren Anämie, erhöhte Aspartat-Aminotransferase, Proteinurie und Thrombopenie. Fünf Patienten (darunter ein Patient mit Mundbodenkarzinom) verließen die Studie aufgrund von Nebenwirkungen. Bei 14 der verbleibenden 15 Patienten entwickelt sich ein Progress, darunter ein Patient mit adenoid-zystischem Parotiskarzinom. Bei einem Patienten mit adenoid-zystischem Karzinom der Zunge kam es zunächst zu einer Stabilisierung der Erkrankung [73]. Die Entwicklung von Aprutumab-Ixadotin wurde in Anbetracht des ungünstigen Nutzen-Risiko-Profils beendet.
In-vivo-Studien des gegen FGFR3 gerichteten Antikörper-Wirkstoff-Konjugats LY3076226 zeigten eine robuste Antitumoraktivität bei FGFR3-mutierten/fusionierten Urothelkarzinomzelllinien [74]. Eine Phase-I-Studie (NCT02529553) mit 37 Patienten mit FGFR3-mutierten/fusionierten Tumoren, darunter entsprechend den Einschlusskriterien möglicherweise auch HNSCC-Patienten, wurde 2018 abgeschlossen. Die Veröffentlichung der Ergebnisse ist zwar noch ausstehend, jedoch wurde die Entwicklung von LY3076226 zwischenzeitlich mutmaßlich eingestellt.
Wirksamkeit und Verträglichkeit der mAb
In präklinischen Studien des Anti-FGFR2-mAb Aprutumab traten keine toxikologisch relevanten Auffälligkeiten auf. Erste Hinweise auf Wirksamkeit konnten in Xenograft-Modellen mit FGFR2-exprimierenden Zelllinien gefunden werden [75–77]. Basierend auf diesen Ergebnissen wurde eine Phase-I-Studie (NCT01881217) mit 35 Patienten unter Fokus auf FGFR2-exprimierende Magenkarzinome durchgeführt. Ergebnisse dieser Studie sind bisher nicht publiziert, was auf eine fehlende Wirksamkeit zurückzuführen sein könnte, wie dies schon für das entsprechende Antikörper-Wirkstoff-Konjugat Aprutumab-Ixadotin der Fall war [73].
Bemarituzumab ist ein gegen FGFR2b gerichteter mAb, der in einer Phase-I-Studie (NCT02318329) mit 64 Patienten mit verschiedenen soliden Tumoren (23 Patienten) und 41 Patienten mit gastroösophagealen Adenokarzinomen getestet wurde [78–80]. Dosislimitierende Toxizität wurde nicht beobachtet [78]. Die häufigsten Nebenwirkungen umfassten verminderten Appetit (32,8 %), Müdigkeit (25,0 %), Übelkeit (23,4 %), Übergeben und Anämie (jeweils 20,3 %), trockene Augen (15,8 %), Diarrhö (14,1 %), Hypoalbuminämie, Fieber und Gewichtsverlust (je 12,5 %) sowie Verstopfung, Dehydrierung, periphere Ödeme und eine erhöhte Aspartat-Aminotransferase (jeweils 10,9 %) [80]. Dreißig der 64 Patienten (46,9 %) erlitten mindestens eine Nebenwirkung vom Grad 3 [80]. Die Wirksamkeit wurde für 21 Patienten mit gastroösophagealen Adenokarzinomen mit hoher FGFR2b-Expression beschrieben. Die objektive Ansprechrate lag bei 19,0 % (darunter vier Patienten mit partiellem Ansprechen) und einer Erkrankungskontrollrate von 55,6 % [80]. Für die anderen Tumorentitäten wurde die Beschreibung der Wirksamkeit bisher nicht veröffentlicht. Aktuell läuft eine Phase-III-Studie (NCT03343301) mit FGFR2b-selektierten gastroösophagealen Adenokarzinomen [80, 81].
Vofatamab ist ein gegen FGFR3 gerichteter mAb, der als Monotherapie und in Kombination mit Docetaxel oder Pembrolizumab bei Patienten mit Urothelkarzinomen getestet wurde (NCT02401542, NCT03123055, NCT02925533). Vofatamab allein und in Kombination mit Docetaxel zeigte sich als gut verträglich mit wenigen Nebenwirkungen vom Grad 3 [82]. Sieben von 55 (12,7 %) Patienten sprachen objektiv auf die Vofatamab-Monotherapie oder -Kombinationstherapie mit Docetaxel an [82]. Bei einem Patienten mit FGFR3-mutierten/fusioniertem Tumor wurde eine Komplettremission erreicht [83]. Bei 30 % der Urothelkarzinom-Patienten mit FGFR3-wildtypischen Tumoren wurde ein Ansprechen auf die Kombinationstherapie mit Pembrolizumab erreicht (NCT03123055) [84]. Dieses Ansprechen erscheint höher als das Ansprechen, das bei einer Pembrolizumab-Monotherapie zu erwarten wäre. Zwischenzeitlich wurde die zweite Studie von Vofatamab plus Pembrolizumab (NCT02925533) wegen Sicherheitsbedenken jedoch abgebrochen.
Wirksamkeit und Verträglichkeit der Ligandenfalle
Die Ligandenfalle FP-1039 bindet aufgrund des Wirkmechanismus keine endokrin wirkenden FGF (FGF19, FGF21 und FGF23), da diese einen zellmembranständigen Kofaktor (Klotho) für die Bindung benötigen. Dies suggeriert eine geringere Toxizität im Vergleich zu anderen FGFR-Signalweg-Inhibitoren [48]. Entsprechend konnte in zwei Phase-I-Studien (NCT01868022, NCT00687505) eine gute Verträglichkeit gezeigt werden, ohne dass für FGFR-Inhibitoren typische Nebenwirkungen, wie Hyperphosphatämie, auftraten [47, 85]. In einer Phase-I-Studie wurden 36 Patienten mit zuvor unbehandelten Mesotheliom mit der Ligandenfalle FP-1039 in Kombination mit Standard-Chemotherapie behandelt. Dabei konnte eine objektive Ansprechrate von 48 % erreicht werden [85]. In einer weiteren Phase-I-Studie mit 39 Patienten mit lokal fortgeschrittenen oder metastasierten Tumoren (darunter vier Patienten mit Kopf-Hals-Tumoren) konnte jedoch kein objektives Ansprechen beobachtet werden (NCT00687505). Eine primäre Selektion der Patienten anhand von Veränderungen des FGFR-Signalwegs erfolgte in dieser Studie nicht [47].
Schlussfolgerung
Die molekulare Landschaft des HNSCC ist inzwischen umfangreich charakterisiert und zeigt hierbei charakteristische, therapeutisch adressierbare genomische Veränderungen. Zielgerichtete Therapien haben bisher nur eine geringe Wirksamkeit in unselektierten Kohorten von HNSCC-Patienten gezeigt. Aktuell basieren therapeutische Strategien noch auf Tumorlokalisation und Tumorstadium, während molekulare Differenzierung und Tumorbiologie noch keinen etablierten Stellenwert im Entscheidungspfad der individuellen Therapieplanung erlangen konnten. Eine Berücksichtigung der molekularen Eigenschaften individueller Tumoren bei der Wahl einer zielgerichteten Therapie, inklusive einer gegen den FGFR-Signalweg gerichteten Therapie, birgt das Potenzial, die Behandlung von HNSCC-Patienten zu verbessern [54].
Genomische Veränderungen innerhalb des FGFR-Signalwegs sind eine der häufigsten molekularen Eigenschaften von HNSCC. Insbesondere die Amplifikation der FGFR (v. a. FGFR1) und FGF (FGF3, FGF4 und FGF19) sind häufig bei HPV-negativen HNSCC zu finden. Die hohe Prävalenz genomischer Veränderungen des Signalwegs und die biologische Relevanz lassen eine FGFR-gerichtete Therapie vielversprechend erscheinen. Erste Ergebnisse weniger FGFR-TKI-behandelter HNSCC-Patienten deuten auf eine Wirksamkeit hin. Wirksamkeit wurde darüber hinaus bei weiteren Tumorerkrankungen des Kopf-Hals-Bereichs (Schilddrüsenkarzinome, adenoid-zystische Karzinome) belegt. Eine gegen FGFR-gerichtete Therapie von Kopf-Hals-Tumorpatienten könnte daher zukünftig eine Rolle in dem Portfolio der Behandlungsoptionen spielen.
Bisherige Daten deuten darauf hin, dass die mRNA-Expression der FGFR einen prädiktiven Wert für das Ansprechen von HNSCC auf FGFR-TKI haben könnte. Allerdings ist die Datenlage hierzu noch nicht ausreichend, und weitere potenziell prädiktive molekulare Eigenschaften, wie beispielsweise FGFR-Mutationen, FGFR/FGF-Amplifikationen (insbesondere Chromosom 11q13 mit FGF3, FGF4 und FGF19) und Kombinationen hieraus, sollten als potenzielle Stratifizierungsparameter in Erwägung gezogen und untersucht werden. Weitere gezielte Therapieansätze umfassen unter anderem die zielgerichtete Inhibition von FGFR4 bei Tumoren, die eine FGF19-Amplifikation/-Überexpression zeigen und/oder FGFR4 überexprimieren. Diese Therapien zeigen erste vielversprechende Ergebnisse im hepatozellulären Karzinom [86].
Seit 2017 prüfen umfassende biomarkergesteuerte Phase-II-Umbrella-Studien unter anderem den Einsatz von FGFR-TKI (nichtselektiv: Nintedanib, selektiv: Rogaratinib) im HNSCC (EORTC-Studie: NCT03088059 [54], TRIUMPH-Studie: NCT03292250). Die Ende 2020 bzw. Ende 2021 zu erwartenden Ergebnisse werden einen Einblick in das Potenzial von FGFR-gerichteten Therapien bei der Behandlung des lokal fortgeschrittenen oder rekurrenten/metastasierten HNSCC liefern.
Fazit für die Praxis
Eine Behandlung mit Erdafitinib oder Rogaratinib von Patienten mit rekurrentem oder metastasiertem HNSCC, für die es keine weiteren Therapieoptionen gibt, könnte wirksam sein, vor allem wenn genetische Alterationen der FGFR oder FGF vorliegen.
Die FGFR-gerichtete Therapie von Patienten mit Kopf-Hals-Tumoren sollte im Rahmen eines molekularen Tumorboards diskutiert werden.
Funding
Open Access funding provided by Projekt DEAL.
Einhaltung ethischer Richtlinien
Interessenkonflikt
D. Dietrich gibt an, dass kein Interessenkonflikt besteht.
Für diesen Beitrag wurden vom Autor keine Studien an Menschen oder Tieren durchgeführt. Für die aufgeführten Studien gelten die jeweils dort angegebenen ethischen Richtlinien.
Literatur
- 1.Hanahan D, Weinberg RA. Hallmarks of cancer: the next generation. Cell. 2011;144:646–674. doi: 10.1016/j.cell.2011.02.013. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
- 2.Peters S, et al. Alectinib versus crizotinib in untreated ALK-positive non-small-cell lung cancer. N Engl J Med. 2017;377:829–838. doi: 10.1056/NEJMoa1704795. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
- 3.Drilon A, et al. Efficacy of larotrectinib in TRK fusion-positive cancers in adults and children. N Engl J Med. 2018;378:731–739. doi: 10.1056/NEJMoa1714448. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
- 4.Yoshihara K, et al. The landscape and therapeutic relevance of cancer-associated transcript fusions. Oncogene. 2015;34:4845–4854. doi: 10.1038/onc.2014.406. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
- 5.Seiwert TY, et al. Integrative and comparative genomic analysis of HPV-positive and HPV-negative head and neck squamous cell carcinomas. Clin Cancer Res. 2015;21:632–641. doi: 10.1158/1078-0432.CCR-13-3310. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
- 6.Cancer Genome Atlas Network Comprehensive genomic characterization of head and neck squamous cell carcinomas. Nature. 2015;517:576–582. doi: 10.1038/nature14129. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
- 7.Loriot Y, et al. Erdafitinib in locally advanced or metastatic urothelial carcinoma. N Engl J Med. 2019;381:338–348. doi: 10.1056/NEJMoa1817323. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
- 8.Johnson DE, Williams LT. Structural and functional diversity in the FGF receptor multigene family. Adv Cancer Res. 1993;60:1–41. doi: 10.1016/s0065-230x(08)60821-0. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
- 9.Dai S, et al. Fibroblast growth factor receptors (FGFRs): structures and small molecule inhibitors. Cells. 2019;8:614. doi: 10.3390/cells8060614. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
- 10.Trueb B. Biology of FGFRL1, the fifth fibroblast growth factor receptor. Cell Mol Life Sci. 2011;68:951–964. doi: 10.1007/s00018-010-0576-3. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
- 11.Gong S-G. Isoforms of receptors of fibroblast growth factors. J Cell Physiol. 2014;229:1887–1895. doi: 10.1002/jcp.24649. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
- 12.Touat M, et al. Targeting FGFR signaling in cancer. Clin Cancer Res. 2015;21:2684–2694. doi: 10.1158/1078-0432.CCR-14-2329. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
- 13.Hui Q, et al. FGF family: from drug development to clinical application. Int J Mol Sci. 2018;19:1875. doi: 10.3390/ijms19071875. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
- 14.Olsen SK, et al. Fibroblast growth factor (FGF) homologous factors share structural but not functional homology with FGFs. J Biol Chem. 2003;278:34226–34236. doi: 10.1074/jbc.M303183200. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
- 15.Babina IS, Turner NC. Advances and challenges in targeting FGFR signalling in cancer. Nat Rev Cancer. 2017;17:318–332. doi: 10.1038/nrc.2017.8. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
- 16.Brooks AN, Kilgour E, Smith PD. Molecular pathways: fibroblast growth factor signaling: a new therapeutic opportunity in cancer. Clin Cancer Res. 2012;18:1855–1862. doi: 10.1158/1078-0432.CCR-11-0699. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
- 17.Ornitz DM, Itoh N. The fibroblast growth factor signaling pathway. Wiley Interdiscip Rev Dev Biol. 2015;4:215–266. doi: 10.1002/wdev.176. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
- 18.Marshall ME, et al. Fibroblast growth factor receptors are components of autocrine signaling networks in head and neck squamous cell carcinoma cells. Clin Cancer Res. 2011;17:5016–5025. doi: 10.1158/1078-0432.CCR-11-0050. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
- 19.Ho AS, et al. The mutational landscape of adenoid cystic carcinoma. Nat Genet. 2013;45:791–798. doi: 10.1038/ng.2643. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
- 20.Dienstmann R, et al. Genomic aberrations in the FGFR pathway: opportunities for targeted therapies in solid tumors. Ann Oncol. 2014;25:552–563. doi: 10.1093/annonc/mdt419. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
- 21.Sarabipour S, Hristova K. Mechanism of FGF receptor dimerization and activation. Nat Commun. 2016;7:10262. doi: 10.1038/ncomms10262. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
- 22.Weiss J, et al. Frequent and focal FGFR1 amplification associates with therapeutically tractable FGFR1 dependency in squamous cell lung cancer. Sci Transl Med. 2010;2:62ra93. doi: 10.1126/scitranslmed.3001451. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
- 23.Cancer Genome Atlas Research Network Comprehensive genomic characterization of squamous cell lung cancers. Nature. 2012;489:519–525. doi: 10.1038/nature11404. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
- 24.Goke F, et al. Fibroblast growth factor receptor 1 amplification is a common event in squamous cell carcinoma of the head and neck. Mod Pathol. 2013;26:1298–1306. doi: 10.1038/modpathol.2013.58. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
- 25.Boehm D, et al. A new bright-field dual-colour chromogenic and silver in situ hybridization method for the detection of FGFR1 gene copy number status. Virchows Arch. 2014;464:547–551. doi: 10.1007/s00428-014-1564-z. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
- 26.Koole K, et al. FGFR1 is a potential prognostic biomarker and therapeutic target in head and neck squamous cell carcinoma. Clin Cancer Res. 2016;22:3884–3893. doi: 10.1158/1078-0432.CCR-15-1874. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
- 27.Clauditz TS, et al. Prevalence of fibroblast growth factor receptor 1 (FGFR1) amplification in squamous cell carcinomas of the head and neck. J Cancer Res Clin Oncol. 2018;144:53–61. doi: 10.1007/s00432-017-2528-x. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
- 28.Yang Y, et al. Reciprocal regulatory mechanism between miR-214-3p and FGFR1 in FGFR1-amplified lung cancer. Oncogenesis. 2019;8:50. doi: 10.1038/s41389-019-0151-1. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
- 29.Greenman C, et al. Patterns of somatic mutation in human cancer genomes. Nature. 2007;446:153–158. doi: 10.1038/nature05610. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
- 30.Cancer Genome Atlas Research Network Integrated genomic characterization of papillary thyroid carcinoma. Cell. 2014;159:676–690. doi: 10.1016/j.cell.2014.09.050. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
- 31.Singh D, et al. Transforming fusions of FGFR and TACC genes in human glioblastoma. Science. 2012;337:1231–1235. doi: 10.1126/science.1220834. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
- 32.Wu Y-M, et al. Identification of targetable FGFR gene fusions in diverse cancers. Cancer Discov. 2013;3:636–647. doi: 10.1158/2159-8290.CD-13-0050. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
- 33.Williams SV, Hurst CD, Knowles MA. Oncogenic FGFR3 gene fusions in bladder cancer. Hum Mol Genet. 2013;22:795–803. doi: 10.1093/hmg/dds486. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
- 34.Parker BC, et al. The tumorigenic FGFR3-TACC3 gene fusion escapes miR-99a regulation in glioblastoma. J Clin Invest. 2013;123:855–865. doi: 10.1172/JCI67144. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
- 35.Majewski IJ, et al. Identification of recurrent FGFR3 fusion genes in lung cancer through kinome-centred RNA sequencing. J Pathol. 2013;230:270–276. doi: 10.1002/path.4209. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
- 36.Wang R, et al. FGFR1/3 tyrosine kinase fusions define a unique molecular subtype of non-small cell lung cancer. Clin Cancer Res. 2014;20:4107–4114. doi: 10.1158/1078-0432.CCR-14-0284. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
- 37.Yuan L, et al. Recurrent FGFR3-TACC3 fusion gene in nasopharyngeal carcinoma. Cancer Biol Ther. 2014;15:1613–1621. doi: 10.4161/15384047.2014.961874. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
- 38.Best SA, et al. FGFR3-TACC3 is an oncogenic fusion protein in respiratory epithelium. Oncogene. 2018;37:6096–6104. doi: 10.1038/s41388-018-0399-5. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
- 39.Tillman BN, et al. Fibroblast growth factor family aberrations as a putative driver of head and neck squamous cell carcinoma in an epidemiologically low-risk patient as defined by targeted sequencing. Head Neck. 2016;38:E1646–E1652. doi: 10.1002/hed.24292. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
- 40.Gao L, et al. FGF19 amplification reveals an oncogenic dependency upon autocrine FGF19/FGFR4 signaling in head and neck squamous cell carcinoma. Oncogene. 2019;38:2394–2404. doi: 10.1038/s41388-018-0591-7. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
- 41.Hojjat-Farsangi M. Small-molecule inhibitors of the receptor tyrosine kinases: promising tools for targeted cancer therapies. Int J Mol Sci. 2014;15:13768–13801. doi: 10.3390/ijms150813768. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
- 42.Facchinetti F, et al. Facts and new hopes on selective FGFR inhibitors in solid tumors. Clin Cancer Res. 2019;26:764–774. doi: 10.1158/1078-0432.CCR-19-2035. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
- 43.Marseglia G, et al. Fibroblast growth factor receptor inhibitors: patent review (2015–2019) Expert Opin Ther Pat. 2019;29:965–977. doi: 10.1080/13543776.2019.1688300. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
- 44.Markham A. Erdafitinib: first global approval. Drugs. 2019;79:1017–1021. doi: 10.1007/s40265-019-01142-9. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
- 45.Syed YY. Anlotinib: first global approval. Drugs. 2018;78:1057–1062. doi: 10.1007/s40265-018-0939-x. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
- 46.Reck M, et al. Change in non-small-cell lung cancer tumor size in patients treated with nintedanib plus docetaxel: analyses from the phase III LUME-lung 1 study. Onco Targets Ther. 2018;11:4573–4582. doi: 10.2147/OTT.S170722. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
- 47.Tolcher AW, et al. A phase I, first in human study of FP-1039 (GSK3052230), a novel FGF ligand trap, in patients with advanced solid tumors. Ann Oncol. 2016;27:526–532. doi: 10.1093/annonc/mdv591. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
- 48.Harding TC, et al. Blockade of nonhormonal fibroblast growth factors by FP-1039 inhibits growth of multiple types of cancer. Sci Transl Med. 2013;5:178ra39. doi: 10.1126/scitranslmed.3005414. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
- 49.Wynes MW, et al. FGFR1 mRNA and protein expression, not gene copy number, predict FGFR TKI sensitivity across all lung cancer histologies. Clin Cancer Res. 2014;20:3299–3309. doi: 10.1158/1078-0432.CCR-13-3060. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
- 50.Göke F, et al. FGFR1 expression levels predict BGJ398 sensitivity of FGFR1-dependent head and neck squamous cell cancers. Clin Cancer Res. 2015;21:4356–4364. doi: 10.1158/1078-0432.CCR-14-3357. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
- 51.von Massenhausen A, et al. Evaluation of FGFR3 as a therapeutic target in head and neck squamous cell carcinoma. Target Oncol. 2016;11:631–642. doi: 10.1007/s11523-016-0431-z. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
- 52.Schuler M, et al. Rogaratinib in patients with advanced cancers selected by FGFR mRNA expression: a phase 1 dose-escalation and dose-expansion study. Lancet Oncol. 2019;20:1454–1466. doi: 10.1016/S1470-2045(19)30412-7. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
- 53.Joerger M, et al. Phase I experience with rogaratinib in patients with head and neck cancer selected based on FGFR mRNA overexpression. Ann Oncol. 2018;29:viii372–viii399. [Google Scholar]
- 54.Galot R, et al. Personalized biomarker-based treatment strategy for patients with squamous cell carcinoma of the head and neck: EORTC position and approach. Ann Oncol. 2018;29:2313–2327. doi: 10.1093/annonc/mdy452. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
- 55.Bahleda R, et al. Multicenter phase I study of erdafitinib (JNJ-42756493), oral pan-fibroblast growth factor receptor inhibitor, in patients with advanced or refractory solid tumors. Clin Cancer Res. 2019;25:4888–4897. doi: 10.1158/1078-0432.CCR-18-3334. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
- 56.Pal SK, et al. Efficacy of BGJ398, a fibroblast growth factor receptor 1–3 inhibitor, in patients with previously treated advanced urothelial carcinoma with FGFR3 alterations. Cancer Discov. 2018;8:812–821. doi: 10.1158/2159-8290.CD-18-0229. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
- 57.Grünewald S, et al. Rogaratinib: a potent and selective pan-FGFR inhibitor with broad antitumor activity in FGFR-overexpressing preclinical cancer models. Int J Cancer. 2019;145:1346–1357. doi: 10.1002/ijc.32224. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
- 58.Javle M, et al. Phase II study of BGJ398 in patients with FGFR-altered advanced cholangiocarcinoma. J Clin Oncol. 2018;36:276–282. doi: 10.1200/JCO.2017.75.5009. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
- 59.Hyman DM, et al. Phase Ib study of BGJ398 in combination with BYL719 in patients (pts) with select advanced solid tumors. J Clin Oncol. 2016;34:2500. [Google Scholar]
- 60.Dumbrava EI et al (2018) Complete response to a fibroblast growth factor receptor inhibitor in a patient with head and neck squamous cell carcinoma harboring FGF amplifications. JCO Precis Oncol 2 [DOI] [PMC free article] [PubMed]
- 61.Shen G, et al. Anlotinib: a novel multi-targeting tyrosine kinase inhibitor in clinical development. J Hematol Oncol. 2018;11:120. doi: 10.1186/s13045-018-0664-7. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
- 62.Taurin S et al (2017) Abstract 3244: treatment of endometrial cancer cells with a new small tyrosine kinase inhibitor targeting mutated fibroblast growth factor receptor‑2. Cancer Res 77:Abstract nr 3244
- 63.Sun Y, et al. Safety, pharmacokinetic, and antitumor activity of anlotinib, an oral multi-target tyrosine kinase inhibitor, in patients with advanced refractory solid tumors. J Clin Oncol. 2015;33:e13586–e13586. doi: 10.1186/s13045-016-0332-8. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
- 64.Jiang W, et al. 1147P – Efficacy and safety of anlotinib for patients with recurrent and/or metastatic salivary gland carcinomas. Ann Oncol. 2019;30:v465. [Google Scholar]
- 65.Lim SM, et al. An open label, multicenter, phase II study of dovitinib in advanced thyroid cancer. Eur J Cancer. 2015;51:1588–1595. doi: 10.1016/j.ejca.2015.05.020. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
- 66.Dillon PM, et al. A phase II study of dovitinib in patients with recurrent or metastatic adenoid cystic carcinoma. Clin Cancer Res. 2017;23:4138–4145. doi: 10.1158/1078-0432.CCR-16-2942. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
- 67.Hotte SJ, et al. Dovitinib in advanced adenoid cystic carcinoma of the salivary glands: Ontario clinical oncology group DOVE trial. Ann Oncol. 2016;27:328–350. [Google Scholar]
- 68.Soria J-C, et al. Phase I/IIa study evaluating the safety, efficacy, pharmacokinetics, and pharmacodynamics of lucitanib in advanced solid tumors. Ann Oncol. 2014;25:2244–2251. doi: 10.1093/annonc/mdu390. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
- 69.Schlumberger M, et al. A randomized doubled blind phase II study exploring the safety and efficacy of nintedanib (BIBF1120) as second line therapy for patients (pts) with differentiated thyroid carcinoma (DTC) progressing after first line therapy: EORTC 1209. J Clin Oncol. 2018;36:6021. [Google Scholar]
- 70.Kim Y, et al. Phase II trial of nintedanib in patients with recurrent or metastatic salivary gland cancer: a multicenter phase II study. J Clin Oncol. 2016;34:6090. [Google Scholar]
- 71.Chen J, et al. A phase II multicenter trial of the multitargeted kinase inhibitor sulfatinib in advanced medullary thyroid cancer (MTC) and radioiodine (RAI)-refractory differentiated thyroid cancer (DTC) J Clin Oncol. 2017;35:6037. [Google Scholar]
- 72.Sommer A, et al. Preclinical efficacy of the auristatin-based antibody-drug conjugate BAY 1187982 for the treatment of FGFR2-positive solid tumors. Cancer Res. 2016;76:6331–6339. doi: 10.1158/0008-5472.CAN-16-0180. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
- 73.Kim S-B, et al. First-in-human phase I study of aprutumab ixadoti, a fibroblast growth factor receptor 2 antibody-drug conjugate (BAY 1187982) in patients with advanced cancer. Target Oncol. 2019;14:591–601. doi: 10.1007/s11523-019-00670-4. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
- 74.Surguladze D, et al. Abstract 4835: LY3076226, a novel anti-FGFR3 antibody drug conjugate exhibits potent and durable anti-tumor activity in tumor models harboring FGFR3 mutations or fusions. Cancer Res. 2019;79:4835. [Google Scholar]
- 75.Kopitz C, et al. Abstract DDT02-01: In vitro and in vivo characterization of a novel anti-fibroblast growth factor receptor (FGFR) 2 antibody (BAY 1179470) for the treatment of gastric cancer. Cancer Res. 2014;74:DDT02-01. [Google Scholar]
- 76.Schatz CA, et al. Abstract 4766: pharmacodynamic and stratification biomarker for the anti-FGFR2 antibody (BAY1179470) and the FGFR2-ADC. Cancer Res. 2014;74:4766. [Google Scholar]
- 77.Wittemer-Rump S, et al. Abstract 672: pharmacokinetic and pharmacodynamic (PK/PD) modeling of preclinical data of a novel anti-fibroblast growth factor receptor 2(FGFR2) antibody (BAY 1179470) to guide dosing in phase 1. Cancer Res. 2014;74:672. [Google Scholar]
- 78.Bendell JC, et al. FPA144-001: a first in human study of FPA 144, an ADCC-enhanced, FGFR2b isoform-selective monoclonal antibody in patients with advanced solid tumors. J Clin Oncol. 2016;34:140. [Google Scholar]
- 79.Catenacci DVT, et al. Updated antitumor activity and safety of FPA144, an ADCC-enhanced, FGFR2b isoform-specific monoclonal antibody, in patients with FGFR2b+ gastric cancer. J Clin Oncol. 2017;35:4067. [Google Scholar]
- 80.Catenacci DV, et al. Bemarituzumab with modified FOLFOX6 for advanced FGFR2-positive gastroesophageal cancer: FIGHT phase III study design. Future Oncol. 2019;15:2073–2082. doi: 10.2217/fon-2019-0141. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
- 81.Catenacci DVT et al (2018) FIGHT: a phase 3 randomized, double-blind, placebo controlled study evaluating (bemarituzumab) FPA144 and modified FOLFOX6 (mFOLFOX6) in patients with previously untreated advanced gastric and gastroesophageal cancer with a dose finding phase 1 lead-in. J Clin Oncol 36:15_suppl, TPS4135
- 82.Necchi A, et al. Fierce-21: phase II study of vofatmab (B-701), a selective inhibitor of FGFR3, as salvage therapy in metastatic urothelial carcinoma (mUC) J Clin Oncol. 2019;37:409. [Google Scholar]
- 83.Bellmunt J, et al. Safety and efficacy of docetaxel + b-701, a selective inhibitor of FGFR3, in subjects with advanced or metastatic urothelial carcinoma. J Clin Oncol. 2017;35:4540. [Google Scholar]
- 84.Siefker-Radtke AO, et al. FIERCE-22: clinical activity of vofatamab (V) a FGFR3 selective inhibitor in combination with pembrolizumab (P) in WT metastatic urothelial carcinoma, preliminary analysis. J Clin Oncol. 2019;37:4511. [Google Scholar]
- 85.Trigo Perez JM, et al. Multicenter, nonrandomized, open-label phase 1b study of FP-1039/GSK3052230 with chemotherapy: results in malignant pleural mesothelioma (MPM) Ann Oncol. 2017;28:v568–v572. [Google Scholar]
- 86.Kim RD, et al. First-in-human phase I study of fisogatinib (BLU-554) validates aberrant FGF19 signaling as a driver event in hepatocellular carcinoma. Cancer Discov. 2019;9:1696–1707. doi: 10.1158/2159-8290.CD-19-0555. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]