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. 2021 Oct 6;81(10):1145–1153. doi: 10.1055/a-1545-4279

2020 WHO Classification of Female Genital Tumors

WHO-Klassifikation 2020 für Tumoren des unteren weiblichen Genitales

Anne Kathrin Höhn 1,, Christine E Brambs 2, Grit Gesine Ruth Hiller 1, Doris May 3, Elisa Schmoeckel 3, Lars-Christian Horn 1
PMCID: PMC8494521  PMID: 34629493

Abstract

The 2020 WHO classification is focused on the distinction between HPV-associated and HPV-independent squamous cell carcinoma of the lower female genital organs. Differentiating according to HPV association does not replace the process of grading; however, the WHO classification does not recommend any specific grading system. VIN are also differentiated according to whether they are HPV(p16)-associated. HPV-independent adenocarcinoma (AC) of the cervix uteri has an unfavorable prognosis. Immunohistochemical p16 expression is considered to be a surrogate marker for HPV association. HPV-associated AC of the cervix uteri is determined using the prognostically relevant Silva pattern.

Key words: p16 immunohistochemistry, HPV, Silva pattern

Introduction

The WHO Classification of Female Genital Tumors is the fourth volume in the fifth edition of the WHO series on the classification of human tumors, and was fundamentally revised in 2020 due to new histomorphological data and, in particular, molecular pathology data. In comparison with the 2013 edition, the scope of the work has doubled in length. The WHO classification is now primarily constructed on the basis of new (molecular) pathology data. However, data of therapeutic and diagnostic relevance, insofar as they are available, are certainly also incorporated. The WHO Blue Books represent an important foundation for a globally uniform diagnostic standard. In Germany, the guidelines of the AWMF (Association of the Scientific Medical Societies) recommend using the current WHO classification for the pathological findings report. The obligation to use the diagnostic histopathological standards and terminology according to the current WHO classification is described in all of the guidelines relating to gynecological malignancies with the verb “should”, this being the highest level of recommendation. While the WHO classification sets out terminology and criteria for diagnosis, the TNM classification of malignant tumors as well as the FIGO classification (Fédération Internationale de Gynécologie et dʼObstétrique) are used for staging, i.e., determining the extent and spread of the gynecological tumors.

The following article summarizes the significant changes of clinical relevance in the current WHO classification for tumors of the female genitals in a way that is relevant in practice.

Vulvar Tumors

With reference to vulvar intraepithelial neoplasias (VIN), the distinction between HPV-associated and HPV-negative neoplasia has been retained. In terms of nomenclature, HPV-associated VIN corresponds to low (VIN 1) and high-grade SIL (VIN 2 and 3; Figs. 1 and 2 ).

Fig. 1.

Fig. 1

 Clinicopathological characteristics of the 2020 WHO classification of vulvar precancerous lesions 1 ,  2 ,  3 ,  4 ,  12 ,  14 .

Fig. 2.

Fig. 2

 Precancerous lesions (VIN) and vulvar carcinoma. a  HPV-associated VIN (usual VIN; u-VIN), b and c  non-keratinizing, HPV-associated squamous cell carcinoma of the vulva with a plump pattern of invasion and p16 positivity (so-called block staining; see text), d  HPV-independent VIN (d-VIN), e and f  keratinizing squamous cell carcinoma of the vulva with a netlike pattern of invasion and aberrant p53 expression (see text).

In cases of VIN where no HPV is detected, the term HPV-independent VIN has been introduced 1 ,  2 ; Fig. 1 showing a variable morphology:

  • The differentiated VIN with its horizontal spread (d-VIN) is a precursor lesion that is allocated to a more aggressive,

  • the differentiated exophytic VIN lesion (DEVIL) to a less aggressive (keratinizing) squamous cell carcinoma and the

  • vulvar acanthosis with altered differentiation (VAAD) is allocated to verrucous carcinoma as a precursor/risk lesion 2 ,  3 .

Within this context, it is important to note that different types of lesions may coincide with each other 1 ,  2 ,  4 . Due to morphological similarities or overlaps 3 , DEVIL and VAAD are also covered by the umbrella term of aberrant maturation of the vulvar squamous epithelium (vulvar aberrant maturation; VAM; 4 ) ( Fig. 1 ), a term that is not included in the WHO classification.

Despite the fact that this distinction as yet lacks diagnostic and therapeutic relevance 5 ,  6 , the new WHO classification differentiates between HPV-associated and HPV-independent squamous cell carcinoma due to their different pathogenesis ( Figs. 1 and 2 ), and the WHO recommends supplying this information in the findings report. The ratio of HPV-independent to HPV-associated squamous cell carcinoma is stated to be between 0.60 and 0.83 7 .

Irrespective of clinicopathological differences ( Table 1 ), the HE-morphology does not allow for reliable differentiation between HPV-associated and HPV-independent (p53-associated) squamous cell carcinoma 2 ,  4 , as it has an error rate of 20 – 30% 8 ,  9 . The third pathogenetic concept postulated by Nooij et al. 10 (see below; Table 1 ; 5 ,  11 ) is not included in the new WHO classification as the current data are still insufficient.

Table 1  Pathogenetically based clinicopathological characteristics of vulvar squamous cell carcinoma 2 ,  4 ,  5 ,  6 ,  10 ,  11 ,  20 ,  42 .

HPV-associated HPV-independent Uncertain
p16 + /p53 p16 /p53 + p16 /p53
Frequency 40% 50 – 60% 20%
Age 40 – 60 years of age 50 – 70 years of age 60 – 70 years of age
Precancerous lesion VIN 2/3 (H-SIL) HPV-independent VIN (d-VIN,? VAAD,? DEVIL) ? (d-VIN-/VAAD-like?)
Etiopathogenesis High-risk HPV infection p53 alteration ? (NOTCH-1/HRAS/ PIK3CA mutation?)
Biomarker expression p16 positive (block staining) p53-aberrant staining pattern p16 negative/p53 wt
Histology (Heller et al. 2020) Non-keratinizing (ca. 66%) Keratinizing (80 – 90%) Keratinizing/ non-keratinizing
Inguinal lymph node metastases 30% 40% 30%
Radio(chemo)sensitivity Usually sensitive Less sensitive Possibly less sensitive
Prognosis Better Poorer Intermediate
  • Local recurrence (Nooij et al. 2017) 10

5.3% 22.6% 16.3%
  • 2-year DFS (Woelber et al. 2021) 11

64% 47% 60%
  • 5-year DSS (Barlow et al. 2020) 5

89% 75% 83%
  • Overall survival (Woelber et al. 2021) 11

82% 70% 75%

Immunohistochemistry showing strong nuclear and cytoplasmic p16 reactivity (so-called block staining; 12 ; Fig. 2 c ) points towards HPV association and is defined as a “reliable (although not perfect)” surrogate marker by the WHO (WHO 2020, 4 ,  13 ). Analysis using p53 immunohistochemistry may help to more accurately diagnose VIN and vulvar squamous cell carcinoma 4 ( Fig. 2 f ), as staining patterns have been defined that correlate well with underlying mutations 7 ,  14 .

Should it not be possible to classify the tumor based on p16 immunohistochemistry (and/or molecular HPV detection) or the presence of p53, the WHO deems the description squamous cell carcinoma NOS to be “acceptable” ( Fig. 5 ). The WHO explicitly points out that molecular analyses (i.e., HPV detection in situ) are not indicated for diagnostic evaluation.

Fig. 5.

Fig. 5

 Clinicopathological characteristics of the 2020 WHO classification of squamous cell carcinoma of the female genitals 1 ,  5 ,  6 ,  8 ,  9 ,  11 , 12 , 13 , 14 ,  17 ,  18 ,  20 ,  24 ,  27 ,  44 .

Patients with p16-positive squamous cell carcinoma who have received radio(chemo)therapy show a higher response rate that is statistically significant compared with patients with p53-associated carcinoma 15 ,  16 ,  17 ,  18 .

In these patient groups with very different therapeutic approaches, it has now been acknowledged that p16-positive carcinomas have a better prognosis compared with those that are p53-positive 5 ,  6 ,  11 ,  19 . The study by McAlpine et al. 20 points out that patients with p53-positive tumors benefit from a more radical surgical approach. Initial molecular studies show that vulvar carcinoma with a p53 mutation and an additional PIK3CA comutation have a particularly unfavorable prognosis 7 . There also clearly exists a third pathogenetic group of p16 /p53 tumors, which ranks prognostically between the p16-positive and the p53-aberrant vulvar carcinoma 5 ,  11 ( Table 1 ). Whether or not the prognostically favorable low-grade squamous cell carcinoma with verrucous morphology represents one morphological end of the p16 /p53 tumor spectrum 7 is still unclear.

The WHO classification does not include grading specifications. In the view of the authors, HPV association (i.e., p16 block positivity; 12 ) does not (yet) replace the grading process. Should a grading be necessary for documentation or for the DRG system, this can be done based on the extent of keratinization, analogous to the approach used thus far.

It is unclear why verrucous carcinoma ( Fig. 3 ) is no longer listed in the WHO classification; it is, however, mentioned in more recent reviews 2 ,  4 . Molecular analyses also regard this tumor type separately 7 . Based on verified HRAS and PIK3CA mutations, VAAD is thought to be a precursor lesion of verrucous carcinoma 3 .

Fig. 3.

Fig. 3

 Verrucous carcinoma of the vulva: exophytic verrucous growth of well-differentiated squamous cell epithelium with superficial parakeratosis and a sharp demarcation, with only focal infiltration (arrow), from the subjacent stroma.

The WHO classification explicitly mentions the possibility of immunohistochemical HER2 detection for Morbus Paget . A meta-analysis of 713 patients demonstrated that HER2 expression was present in 30% of cases, and steroid hormone receptor positivity for ER, PR and AR was present in 13%, 8% and 40% respectively 21 . These may serve as a basis for possible therapeutic targets.

Vaginal Tumors

When it comes to the vaginal intraepithelial neoplasia (VaIN; Fig. 4 a ) and adenocarcinoma , there have been no changes.

Fig. 4.

Fig. 4

 Precancerous lesions and carcinoma of the vagina. a  HPV-associated precancerous lesion of the vagina (VAIN 3), b  keratinizing squamous cell carcinoma of the vagina with slight peritumoral desmoplasia and absence of peritumoral inflammation, c  non-keratinizing squamous cell carcinoma of the vagina with a high degree of peritumoral inflammation.

For squamous cell carcinoma of the vagina, the detection of HPV is currently of no therapeutic relevance 22 . Nevertheless, the WHO recommends making this distinction for these tumor types as well ( Fig. 5 ).

In general, the majority of vaginal squamous cell carcinomas are HPV-associated, especially those with a non-keratinizing morphology ( Fig. 4 b ) and tumor location in the upper or intermediate third (so-called Müllerian vagina). Distal squamous cell carcinomas are known as introitus carcinoma and stem from the urogenital sinus (so-called sinus vagina; 23 ,  24 ). Lacking HPV association, these are often keratinizing squamous cell carcinomas ( Fig. 4 c ).

For vaginal carcinomas too, the WHO points out that molecular analyses (i.e., HPV detection in situ) are not indicated for the diagnostic evaluation.

The WHO classification does not include grading specifications. In the view of the authors, HPV association (i.e., p16 block positivity; 12 ) does not (yet) replace the grading process. Should a grading be necessary for documentation or for the DRG system, this can be done based on the extent of keratinization, analogous to the approach used thus far.

Tumors of the Cervix Uteri

For squamous cell cervical intraepithelial neoplasia (CIN), there have been no changes.

When it comes to adenocarcinoma in situ (AIS) , a distinction is made between various HPV-associated variants and the non-HPV-associated gastric AIS (g-AIS). SMILE (stratified mucin-producing intraepithelial lesion) as a subtype of AIS is no longer listed as an independent entity.

Epithelial precancerous lesions and carcinoma of the cervix uteri are predominantly HPV-associated 25 .

To ensure a uniform nomenclature, the WHO has classified these squamous cell carcinomas in a manner analogous to the vulvar and vaginal carcinomas ( Fig. 5 ).

For the very rare HPV-negative squamous cell carcinoma 26 ,  27 there is no known precancerous lesion.

Similarly for squamous cell carcinoma of the cervix uteri , the HE-morphology alone does not allow differentiation between the two forms; for this reason the WHO recommends performing p16 immunohistochemistry but also accepts the diagnosis of squamous cell carcinoma NOS ( Fig. 5 ), as there are no existing therapeutic or prognostic differences. With regard to grading , the WHO classification states that there is no established grading system. In the view of the authors, HPV association (i.e., p16 block positivity; 12 ) does not (yet) replace the grading process. Should a grading be necessary for documentation or for the DRG system, this can be done based on the extent of keratinization, analogous to the approach used thus far.

For adenocarcinoma (AC) of the cervix uteri , a similar distinction is made with regard to the high-risk HPV association. HPV-negative AC has a significantly less favorable prognosis 28 ,  29 ,  30 .

Therefore, the previous diagnostic category of AC-NOS no longer exists in the new edition of the WHO classification.

The same applies for (primary) serous AC of the cervix uteri , which are almost exclusively endometrial or isthmic endometrial carcinomas with cervical involvement 29 ,  31 .

The WHO classification has adopted the “International Endocervical Adenocarcinoma Classification” (IECC; 28 ,  29 ) ( Fig. 6 ), which was also included in the S3-Guideline for cervical carcinoma reviewed in 2021 32 .

Fig. 6.

Fig. 6

 Classification of adenocarcinoma of the cervix uteri in accordance with the 2020 WHO classification 1 ,  28 ,  29 ,  31 ,  32 ,  37 . Small image: strong p16 positivity of a usual-type AC.

An HPV analysis is not necessary for the diagnosis 1 . If “block-type” reactivity is detected 1 ( Fig. 6 ), p16 is a reliable surrogate marker for HPV association. In very rare cases, p16 hypermethylation may lead to a (false) negative immunohistochemistry 33 , an error that is estimated to occur for CIN 3 in approx. 5% of cases 4 ,  34 . The choice of a suitable p16 clone is also very important for the reliable detection of p16 35 . The p16 reactivity in old paraffin blocks or insufficiently fixed tissues is deemed unreliable 31 ,  36 . It is also important to note that HPV-independent AC (i.e., gastric AC) may also demonstrate p16 positivity 37 . The p16 immunohistochemistry must be interpreted within the context of the HE morphology.

The so-called Silva pattern , a prognostically relevant classification of (HPV-associated) AC based on architectural criteria, has been newly adopted into WHO classification ( Table 2 ).

Table 2  Frequency and prognostic relevance of the Silva pattern for HPV-associated adenocarcinoma of the cervix uteri 43 .

Frequency Pelvic lymph node metastasis FIGO Stage I FIGO Stage II – IV Recurrence rate
Pattern Agraphic file with name 10-1055-a-1545-4279-igftab2-01.jpg 20.7% 0% 100% 0% 0%
Pattern Bgraphic file with name 10-1055-a-1545-4279-igftab2-02.jpg 25.6% 4.4% 100% 0% 1.1%
Pattern Cgraphic file with name 10-1055-a-1545-4279-igftab2-03.jpg 53.7% 23.8% 83% 17% 23.7%

It distinguishes between the prognostically more favorable pattern A carcinoma with non-destructive invasion and the pattern B and C carcinoma with destructive invasion. Distinguishing between pattern A-AC and AIS based on HE morphology can be difficult (k = 0.23; 38 ).

In almost all cases, endometrioid AC of the endocervix represents a mucin-depleted variant of HPV-associated AC. Immunohistochemistry should be used to distinguish between benign lesions and endometrioid endometrial carcinoma with cervical infiltration.

Epithelial-mesenchymal Tumors

Adenofibromas of the cervix uteri that were previously listed in the WHO classification are now considered in fact to be benign endometrial or cervical polyps with an unusual morphology 39 ,  40 , or alternatively adenosarcoma with “low-grade stromal morphology” ( Fig. 7 ). Immunohistochemical analyses are helpful for differential diagnosis in these cases 41 .

Fig. 7.

Fig. 7

 Adenosarcoma of the Uterus: foliaceous tumor growth with very cell-poor stroma (*) showing discrete accentuation of the cell density underneath the superficial epithelium (arrows) with a bland cytology.

Footnotes

Conflict of Interest/Interessenkonflikt The authors declare that they have no conflict of interest./Die Autorinnen/Autoren geben an, dass kein Interessenkonflikt besteht.

References/Literatur

  • 1.Lokuhetty D, White V A, Watanabe R. Lyon: Internal Agency for Research on Cancer (IARC); 2020. Female genital Tumours. 5th ed. [Google Scholar]
  • 2.Singh N, Gilks C B. Vulval squamous cell carcinoma and its precursors. Histopathology. 2020;76:128–138. doi: 10.1111/his.13989. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
  • 3.Watkins J C. Human Papillomavirus-Independent Squamous Lesions of the Vulva. Surg Pathol Clin. 2019;12:249–261. doi: 10.1016/j.path.2019.01.001. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
  • 4.Heller D S, Day T, Allbritton J I. Diagnostic Criteria for Differentiated Vulvar Intraepithelial Neoplasia and Vulvar Aberrant Maturation. J Low Genit Tract Dis. 2021;25:57–70. doi: 10.1097/LGT.0000000000000572. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
  • 5.Barlow E L, Lambie N, Donoghoe M W. The Clinical Relevance of p16 and p53 Status in Patients with Squamous Cell Carcinoma of the Vulva. J Oncol. 2020;2020:3.739075E6. doi: 10.1155/2020/3739075. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
  • 6.Sand F L, Nielsen D MB, Frederiksen M H. The prognostic value of p16 and p53 expression for survival after vulvar cancer: A systematic review and meta-analysis. Gynecol Oncol. 2019;152:208–217. doi: 10.1016/j.ygyno.2018.10.015. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
  • 7.Tessier-Cloutier B, Pors J, Thompson E. Molecular characterization of invasive and in situ squamous neoplasia of the vulva and implications for morphologic diagnosis and outcome. Mod Pathol. 2021;34:508–518. doi: 10.1038/s41379-020-00651-3. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
  • 8.Cheng A S, Karnezis A N, Jordan S. p16 Immunostaining Allows for Accurate Subclassification of Vulvar Squamous Cell Carcinoma Into HPV-Associated and HPV-Independent Cases. Int J Gynecol Pathol. 2016;35:385–393. doi: 10.1097/PGP.0000000000000263. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
  • 9.Santos M, Landolfi S, Olivella A. p16 overexpression identifies HPV-positive vulvar squamous cell carcinomas. Am J Surg Pathol. 2006;30:1347–1356. doi: 10.1097/01.pas.0000213251.82940.bf. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
  • 10.Nooij L S, Ter Haar N T, Ruano D. Genomic Characterization of Vulvar (Pre)cancers Identifies Distinct Molecular Subtypes with Prognostic Significance. Clin Cancer Res. 2017;23:6781–6789. doi: 10.1158/1078-0432.CCR-17-1302. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
  • 11.Woelber L, Prieske K, Eulenburg C. p53 and p16 expression profiles in vulvar cancer: a translational analysis by the Arbeitsgemeinschaft Gynäkologische Onkologie Chemo and Radiotherapy in Epithelial Vulvar Cancer study group. Am J Obstet Gynecol. 2021;224:5950–5.95E13. doi: 10.1016/j.ajog.2020.12.1220. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
  • 12.Darragh T M, Colgan T J, Thomas Cox J. The Lower Anogenital Squamous Terminology Standardization project for HPV-associated lesions: background and consensus recommendations from the College of American Pathologists and the American Society for Colposcopy and Cervical Pathology. Int J Gynecol Pathol. 2013;32:76–115. doi: 10.1097/PGP.0b013e31826916c7. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
  • 13.Dasgupta S, Ewing-Graham P C, Swagemakers S MA. Precursor lesions of vulvar squamous cell carcinoma – histology and biomarkers: A systematic review. Crit Rev Oncol Hematol. 2020;147:102866. doi: 10.1016/j.critrevonc.2020.102866. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
  • 14.Tessier-Cloutier B, Kortekaas K E, Thompson E. Major p53 immunohistochemical patterns in in situ and invasive squamous cell carcinomas of the vulva and correlation with TP53 mutation status. Mod Pathol. 2020;33:1595–1605. doi: 10.1038/s41379-020-0524-1. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
  • 15.Yap M L, Allo G, Cuartero J. Prognostic Significance of Human Papilloma Virus and p16 Expression in Patients with Vulvar Squamous Cell Carcinoma who Received Radiotherapy. Clin Oncol (R Coll Radiol) 2018;30:254–261. doi: 10.1016/j.clon.2018.01.011. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
  • 16.Lee L J, Howitt B, Catalano P. Prognostic importance of human papillomavirus (HPV) and p16 positivity in squamous cell carcinoma of the vulva treated with radiotherapy. Gynecol Oncol. 2016;142:293–298. doi: 10.1016/j.ygyno.2016.05.019. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
  • 17.Proctor L, Hoang L, Moore J. Association of human papilloma virus status and response to radiotherapy in vulvar squamous cell carcinoma. Int J Gynecol Cancer. 2020;30:100–106. doi: 10.1136/ijgc-2019-000793. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
  • 18.Allo G, Yap M L, Cuartero J. HPV-independent Vulvar Squamous Cell Carcinoma is Associated With Significantly Worse Prognosis Compared With HPV-associated Tumors. Int J Gynecol Pathol. 2020;39:391–399. doi: 10.1097/PGP.0000000000000620. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
  • 19.Rasmussen C L, Sand F L, Hoffmann Frederiksen M. Does HPV status influence survival after vulvar cancer? Int J Cancer. 2018;142:1158–1165. doi: 10.1002/ijc.31139. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
  • 20.McAlpine J N, Leung S CY, Cheng A. Human papillomavirus (HPV)-independent vulvar squamous cell carcinoma has a worse prognosis than HPV-associated disease: a retrospective cohort study. Histopathology. 2017;71:238–246. doi: 10.1111/his.13205. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
  • 21.Angelico G, Santoro A, Inzani F. Hormonal Environment and HER2 Status in Extra-Mammary Pagetʼs Disease (eMPD): A Systematic Literature Review and Meta-Analysis with Clinical Considerations. Diagnostics (Basel) 2020;10:1040. doi: 10.3390/diagnostics10121040. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
  • 22.Hellman K, Lindquist D, Ranhem C. Human papillomavirus, p16(INK4A), and Ki-67 in relation to clinicopathological variables and survival in primary carcinoma of the vagina. Br J Cancer. 2014;110:1561–1570. doi: 10.1038/bjc.2014.32. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
  • 23.Höckel M, Horn L-C, Illig R. Ontogenetic anatomy of the distal vagina: relevance for local tumor spread and implications for cancer surgery. Gynecol Oncol. 2011;122:313–318. doi: 10.1016/j.ygyno.2011.04.040. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
  • 24.Horn L-C, Höhn A K, Hampl M. S2k-Leitlinie Diagnostik und Therapie des Vaginalkarzinoms und seiner Vorstufen – Anforderungen an die Pathologie. Der Pathologe. 2021;42:116–124. doi: 10.1007/s00292-020-00876-8. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
  • 25.RIS HPV TT, VVAP and Head and Neck study groups . de Sanjosé S, Serrano B, Tous S. Burden of Human Papillomavirus (HPV)-Related Cancers Attributable to HPVs 6/11/16/18/31/33/45/52 and 58. JNCI Cancer Spectr. 2019;2:pky045. doi: 10.1093/jncics/pky045. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
  • 26.Li N, Franceschi S, Howell-Jones R. Human papillomavirus type distribution in 30,848 invasive cervical cancers worldwide: Variation by geographical region, histological type and year of publication. Int J Cancer. 2011;128:927–935. doi: 10.1002/ijc.25396. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
  • 27.Casey S, Harley I, Jamison J. A rare case of HPV-negative cervical squamous cell carcinoma. Int J Gynecol Pathol. 2015;34:208–212. doi: 10.1097/PGP.0000000000000132. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
  • 28.Hodgson A, Olkhov-Mitsel E, Howitt B E. International Endocervical Adenocarcinoma Criteria and Classification (IECC): correlation with adverse clinicopathological features and patient outcome. J Clin Pathol. 2019;72:347–353. doi: 10.1136/jclinpath-2018-205632. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
  • 29.Stolnicu S, Hoang L, Chiu D. Clinical Outcomes of HPV-associated and Unassociated Endocervical Adenocarcinomas Categorized by the International Endocervical Adenocarcinoma Criteria and Classification (IECC) Am J Surg Pathol. 2019;43:466–474. doi: 10.1097/PAS.0000000000001224. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
  • 30.Nicolás I, Saco A, Barnadas E. Prognostic implications of genotyping and p16 immunostaining in HPV-positive tumors of the uterine cervix. Mod Pathol. 2020;33:128–137. doi: 10.1038/s41379-019-0360-3. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
  • 31.Stolnicu S, Barsan I, Hoang L. International Endocervical Adenocarcinoma Criteria and Classification (IECC): A New Pathogenetic Classification for Invasive Adenocarcinomas of the Endocervix. Am J Surg Pathol. 2018;42:214–226. doi: 10.1097/PAS.0000000000000986. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
  • 32.AWMF S3-Leitlinie zur Diagnostik, Therapie und Nachsorge der Patientin mit Zervixkarzinom, 2021Accessed January 26, 2021 at:https://www.awmf.org/leitlinien/detail/ll/032-033OL.html
  • 33.Nuovo G J, Plaia T W, Belinsky S A. In situ detection of the hypermethylation-induced inactivation of the p16 gene as an early event in oncogenesis. Proc Natl Acad Sci U S A. 1999;96:12754–12759. doi: 10.1073/pnas.96.22.12754. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
  • 34.Shain A F, Kwok S, Folkins A K. Utility of p16 Immunohistochemistry in Evaluating Negative Cervical Biopsies Following High-risk Pap Test Results. Am J Surg Pathol. 2018;42:69–75. doi: 10.1097/PAS.0000000000000960. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
  • 35.Shain A F, Wilbur D C, Stoler M H. Test Characteristics of Specific p16 Clones in the Detection of High-grade Squamous Intraepithelial Lesions (HSIL) Int J Gynecol Pathol. 2018;37:82–87. doi: 10.1097/PGP.0000000000000391. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
  • 36.Nuovo A J, Garofalo M, Mikhail A. The effect of aging of formalin-fixed paraffin-embedded tissues on the in situ hybridization and immunohistochemistry signals in cervical lesions. Diagn Mol Pathol. 2013;22:164–173. doi: 10.1097/PDM.0b013e3182823701. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
  • 37.Carleton C, Hoang L, Sah S. A Detailed Immunohistochemical Analysis of a Large Series of Cervical and Vaginal Gastric-type Adenocarcinomas. Am J Surg Pathol. 2016;40:636–644. doi: 10.1097/PAS.0000000000000578. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
  • 38.Parra-Herran C, Taljaard M, Djordjevic B. Pattern-based classification of invasive endocervical adenocarcinoma, depth of invasion measurement and distinction from adenocarcinoma in situ: interobserver variation among gynecologic pathologists. Mod Pathol. 2016;29:879–892. doi: 10.1038/modpathol.2016.86. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
  • 39.Ip P P. Benign endometrial proliferations mimicking malignancies: a review of problematic entities in small biopsy specimens. Virchows Arch. 2018;472:907–917. doi: 10.1007/s00428-018-2314-4. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
  • 40.Howitt B E, Quade B J, Nucci M R. Uterine polyps with features overlapping with those of Müllerian adenosarcoma: a clinicopathologic analysis of 29 cases emphasizing their likely benign nature. Am J Surg Pathol. 2015;39:116–126. doi: 10.1097/PAS.0000000000000303. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
  • 41.McCluggage W G. A practical approach to the diagnosis of mixed epithelial and mesenchymal tumours of the uterus. Mod Pathol. 2016;29 01:S78–S91. doi: 10.1038/modpathol.2015.137. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
  • 42.Knopp S, Bjørge T, Nesland J M. p16INK4a and p21Waf1/Cip1 expression correlates with clinical outcome in vulvar carcinomas. Gynecol Oncol. 2004;95:37–45. doi: 10.1016/j.ygyno.2004.07.026. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
  • 43.Roma A A, Mistretta T-A, Diaz De Vivar A. New pattern-based personalized risk stratification system for endocervical adenocarcinoma with important clinical implications and surgical outcome. Gynecol Oncol. 2016;141:36–42. doi: 10.1016/j.ygyno.2016.02.028. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
  • 44.Höckel M, Trott S, Dornhöfer N. Vulvar field resection based on ontogenetic cancer field theory for surgical treatment of vulvar carcinoma: a single-centre, single-group, prospective trial. Lancet Oncol. 2018;19:537–548. doi: 10.1016/S1470-2045(18)30109-8. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
Geburtshilfe Frauenheilkd. 2021 Oct 6;81(10):1145–1153. [Article in German]

WHO-Klassifikation 2020 für Tumoren des unteren weiblichen Genitales

Zusammenfassung

In der WHO-Klassifikation 2020 steht die Unterscheidung von HPV-assoziierten und HPV-unabhängigen Plattenepithelkarzinomen des unteren weiblichen Genitales im Vordergrund. Die Unterscheidung der HPV-Assoziation ersetzt das Grading nicht, für welches jedoch kein Gradingsystem empfohlen wird. Auch bei der VIN erfolgt die Trennung nach HPV-(p16-)Assoziation. HPV-unabhängige Adenokarzinome (AC) der Cervix uteri sind prognostisch ungünstiger. Als Surrogatmarker für eine HPV-Assoziation gilt der immunhistochemische Nachweis von p16. Beim HPV-assoziierten AC der Cervix uteri erfolgt die prognostisch relevante Angabe des sog. Silva-Patterns.

Schlüsselwörter: p16-Immunhistochemie, HPV, Silva Pattern

Einleitung

Die WHO-Klassifikation der Tumoren des weiblichen Genitales ist im 4. Band der 5. Auflage aufgrund neuer histomorphologischer und insbesondere molekularpathologischer Daten 2020 grundlegend überarbeitet worden und hat sich in ihrem Umfang im Vergleich zu 2013 verdoppelt. Die WHO-Klassifikation wird vorrangig aufgrund neuer (molekular-)pathologischer Daten erstellt. Therapeutisch und diagnostisch relevante Daten, soweit vorhanden, fließen aber in jedem Fall mit ein. Die „blauen Bücher der WHO“ stellen eine wichtige Grundlage für einen weltweit einheitlichen diagnostischen Standard dar. In Deutschland wird in den Leitlinien/Empfehlungen der AWMF (Arbeitsgemeinschaft der Wissenschaftlichen Medizinischen Fachgesellschaften e. V.) darauf hingewiesen, dass die derzeit aktuelle WHO-Klassifikation für die pathologische Befunderstellung heranzuziehen ist. Die Verbindlichkeit der diagnostischen histopathologischen Standards und Terminologie der jeweils aktuellen WHO-Klassifikation ist in allen Leitlinien zu gynäkologischen Malignomen mit dem Verb „soll“ als höchstem Grad der Empfehlung belegt. Während Kriterien zur Diagnosestellung und Terminologie in der WHO-Klassifikation abgebildet werden, dienen zur Stadieneinteilung, also der Ausbreitung der gynäkologischen Tumoren neben der TNM-Klassifikation maligner Tumoren auch die FIGO-Klassifikation (Fédération Internationale de Gynécologie et dʼObstétrique).

Die wesentlichen, klinisch relevanten, Veränderungen der aktuellen WHO-Klassifikation sind im Folgenden für das untere weibliche Genitale praxisrelevant zusammengefasst.

Tumoren der Vulva

Bei den vulvären intraepithelialen Neoplasien (VIN) ist die Unterscheidung HPV-assoziiert und HPV-negativ beibehalten worden. Die HPV-assoziierte VIN entspricht nomenklatorisch der Low- (VIN 1) sowie High-Grade-SIL (VIN 2 und 3; Abb. 1 und 2 ).

Abb. 1.

Abb. 1

 Klinikopathologische Charakteristika der WHO-Klassifikation 2020 der vulvären Präkanzerosen 1 ,  2 ,  3 ,  4 ,  12 ,  14 .

Abb. 2.

Abb. 2

 Präkanzerosen (VIN) und Karzinom der Vulva. a  HPV-assoziierte VIN (usual VIN; u-VIN), b und c  nicht keratinisierendes, HPV-assoziiertes Plattenepithelkarzinom der Vulva mit plumpem Invasionsmuster und p16-Positivität (sog. block-staining; s. Text), d  HPV-unabhängige VIN (d-VIN), e und f  keratinisierendes Plattenepithelkarzinom der Vulva mit netzigem Invasionsmuster und aberranter p53-Expression (s. Text).

Für die VIN ohne HPV-Nachweis wird der Terminus HPV-unabhängige VIN eingeführt 1 ,  2 ; Abb. 1 , die eine variable Morphologie zeigt:

  • Die differenzierte VIN mit horizontalem Wachstum (d-VIN) wird als Vorläuferläsion einem aggressiveren,

  • die differenzierte exophytische VIN-Läsion (DEVIL) einem weniger aggressiven (keratinisierenden) Plattenepithelkarzinom und die

  • vulväre Akanthose mit abnormer Differenzierung (VAAD) dem verrukösen Karzinom als Vorläufer- bzw. Risikoläsion zugeordnet 2 ,  3 .

Dabei ist zu beachten, dass sich überschneidende Läsionen vorkommen können 1 ,  2 ,  4 . Aufgrund morphologischer Ähnlichkeiten bzw. Überschneidungen 3 werden DEVIL und VAAD auch unter dem Oberbegriff einer atypischen Ausreifung des vulvären Plattenepithels (vulvar aberrant maturation; VAM; 4 ) zusammengefasst ( Abb. 1 ), ein Terminus, der in der WHO-Klassifikation nicht enthalten ist.

Ungeachtet einer derzeit (noch) fehlenden diagnostischen und therapeutischen Relevanz 5 ,  6 , erfolgt aufgrund einer differenten Pathogenese ( Abb. 1 und 2 ) in der neuen WHO-Klassifikation eine Unterscheidung in HPV-assoziierte und HPV-unabhängige Plattenepithelkarzinome, wobei diese Angabe im Befundbericht von der WHO empfohlen wird. Das Verhältnis HPV-unabhängiger zu HPV-assoziierten Plattenepithelkarzinom wird mit 0,60 bis 0,83 angegeben 7 .

Ungeachtet klinikopathologischer Unterschiede ( Tab. 1 ) ist mit einer Fehlerrate von 20 – 30% 8 ,  9 rein HE-morphologisch eine Unterscheidung HPV-assoziierter und HPV-unabhängiger (p53-assoziierter) Plattenepithelkarzinome nicht verlässlich möglich 2 ,  4 . Der von Nooij et al. 10 postulierte dritte pathogenetische Ansatz (s. u.; Tab. 1 ; 5 ,  11 ) ist aufgrund einer derzeit noch unzureichenden Datenlage in der WHO-Klassifikation nicht berücksichtigt.

Tab. 1  Pathogenetisch basierte klinikopathologische Charakteristika von Plattenepithelkarzinomen der Vulva 2 ,  4 ,  5 ,  6 ,  10 ,  11 ,  20 ,  42 .

HPV-Assoziation HPV-unabhängig unklar
p16 + /p53 p16 /p53 + p16 /p53
Häufigkeit 40% 50 – 60% 20%
Alter 40. – 60. Lebensjahr 50. – 70. Lebensjahr 60. – 70. Lebensjahr
Präkanzerose VIN 2/3 (H-SIL) HPV-unabhängige VIN (d-VIN,? VAAD,? DEVIL) ? (d-VIN-/VAAD-like?)
Ätiopathogenese HPV High-Risk-Infektion p53-Alteration ? (NOTCH-1-/HRAS-/PIK3CA-Mutation?)
Biomarker-Expression p16-positiv (block staining) p53-aberrantes Färbemuster p16-negativ/p53 wt
Histologie (Heller et al. 2020) nicht keratinisierend (ca. 66%) keratinisierend (80 – 90%) keratinisierend/ nicht keratinisierend
inguinale Lymphknotenmetastasen 30% 40% 30%
Radio(chemo)sensitivität i. d. R. sensitiv weniger sensitiv mglw. weniger sensitiv
Prognose besser schlechter intermediär
  • Lokalrezidiv (Nooij et al. 2017) 10

5,3% 22,6% 16,3%
  • 2-Jahres-DFS (Woelber et al. 2021) 11

64% 47% 60%
  • 5-Jahres-DSS (Barlow et al. 2020) 5

89% 75% 83%
  • Gesamtüberleben (Woelber et al. 2021) 11

82% 70% 75%

Eine starke nukleäre und zytoplasmatische p16-Reaktivität in der Immunhistochemie (sog. block-staining; 12 ; Abb. 2 c ) spricht für eine HPV-Assoziation und wird von der WHO als „reliable (although not perfect)“ Surrogatmarker definiert (WHO 2020, 4 ,  13 ). Eine p53-Immunhistochemie kann die Diagnostik bei den VIN und vulvären Plattenepithelkarzinomen präzisieren 4 ( Abb. 2 f ), da Färbemuster definiert wurden, die gut mit zugrunde liegenden Mutationen korrelieren 7 ,  14 .

Ist eine Unterscheidung mittels p16-Immunhistochemie (und/oder molekularem HPV-Nachweis) bzw. p53 im Tumor nicht möglich, ist gemäß WHO die Angabe Plattenepithelkarzinom NOS „acceptable“ ( Abb. 5 ). Explizit wird von der WHO darauf hingewiesen, dass molekulare Untersuchungen (z. B. HPV-Nachweis in situ) für die Diagnostik nicht indiziert sind.

Abb. 5.

Abb. 5

 Klinikopathologische Charakteristika der WHO-Klassifikation 2020 von Plattenepithelkarzinomen des unteren weiblichen Genitales 1 ,  5 ,  6 ,  8 ,  9 ,  11 ,  12 ,  13 ,  14 ,  17 ,  18 ,  20 ,  24 ,  27 ,  44 .

Radio(chemo)therapeutisch behandelte Patientinnen mit p16-positiven Plattenepithelkarzinomen zeigen eine statistisch signifikant bessere Ansprechrate als p53-assoziierte Karzinome 15 ,  16 ,  17 ,  18 .

Bei Patientinnen mit sehr unterschiedlichem therapeutischen Ansatz ist mittlerweile akzeptiert, dass p16-positive im Vergleich zu p53-positiven Karzinomen eine bessere Prognose zeigen 5 ,  6 ,  11 ,  19 . Die Studie von McAlpine et al. 20 weist darauf hin, dass Patientinnen mit p53-positiven Tumoren von einem radikaleren chirurgischen Vorgehen profitieren. Erste molekulare Studien zeigen, dass Vulvakarzinome mit einer p53-Mutation und zusätzlicher PIK3CA-Komutation eine besonders ungünstige Prognose haben 7 . Die offenbar existente dritte pathogenetische Gruppe der p16 /p53 -Tumoren steht prognostisch zwischen den p16-positiven und p53-aberranten Vulvakarzinomen 5 ,  11 ( Tab. 1 ). Ob das prognostisch günstige Low-Grade-Plattenepithelkarzinom mit verruköser Morphologie ein morphologisches Endspektrum der p16 /p53 -Tumoren darstellt 7 , ist unklar.

Angaben zum Grading sind in der WHO-Klassifikation nicht enthalten. Nach Ansicht der Autoren ersetzt die HPV-Assoziation (i. e. p16 „block-positivity“; 12 ) das Grading derzeit (noch) nicht. Sollte ein Grading zur Dokumentation bzw. für das DRG-System relevant sein, kann dieses in Analogie zum bisherigen Vorgehen anhand des Ausmaßes der Keratinisierung erfolgen.

Unklar ist, warum das verruköse Karzinom ( Abb. 3 ) nicht mehr in der WHO-Klassifikation aufgeführt ist, wohl aber in rezenten Übersichtsarbeiten 2 ,  4 . Auch molekulare Untersuchungen nehmen zu diesem Tumortyp separat Stellung 7 . Die VAAD wird aufgrund nachgewiesener HRAS- und PIK3CA-Mutationen als Vorläuferläsion des verrukösen Karzinoms diskutiert 3 .

Abb. 3.

Abb. 3

 Verruköses Karzinom der Vulva: exophytisch-verruköses Wachstum gut differenzierter Plattenepithelien mit oberflächlicher Parakeratose und scharfer, nur fokal infiltrativer Begrenzung (Pfeil) zum darunterliegenden Stroma.

Die WHO-Klassifikation weist explizit auf die Möglichkeit des immunhistochemischen HER2-Nachweises beim Morbus Paget hin. Eine Metaanalyse von 713 Patientinnen ergab, dass in 30% eine HER2-Expression und für die Steroidhormonrezeptoren ER, PR und AR in 13%, 8% bzw. 40% eine Positivität vorliegt 21 , die als mögliches therapeutisches Target dienen könnte.

Tumoren der Vagina

Bei den vaginalen intraepithelialen Neoplasien (VaIN; Abb. 4 a ) und Adenokarzinomen gibt es keine Änderungen.

Abb. 4.

Abb. 4

 Präkanzerosen und Karzinom der Vagina. a  HPV-assoziiertes Präkanzerose der Vagina (VAIN 3), b  keratinisierendes Plattenepithelkarzinom der Vagina mit geringer peritumoraler Desmoplasie und fehlender peritumoraler Entzündung, c  nicht keratinisierendes Plattenepithelkarzinom der Vagina mit hochgradiger peritumoraler Entzündung.

Auch beim Plattenepithelkarzinom der Vagina gibt es derzeit keine therapeutische Relevanz in Bezug auf den HPV-Nachweis 22 , dennoch empfiehlt auch hier die WHO deren Unterscheidung ( Abb. 5 ).

Allgemein ist die Mehrzahl der vaginalen Plattenepithelkarzinome HPV-assoziiert, insbesondere bei nicht keratinisierender Morphologie ( Abb. 4 b ) und Tumorlokalisation im oberen und mittleren Drittel (sog. Müller-Scheide). Bei distal lokalisierten Plattenepithelkarzinomen handelt es sich um sog. Introituskarzinome, ausgehend vom Urogenitalsinus (sog. Sinus-Scheide; 23 ,  24 ), die bei fehlender HPV-Assoziation oft keratinisierende Plattenepithelkarzinome sind ( Abb. 4 c ).

Auch beim Vaginalkarzinom wird von der WHO darauf hingewiesen, dass molekulare Untersuchungen (z. B. HPV-Nachweis in situ) für die Diagnostik nicht indiziert sind.

Angaben zum Grading sind in der WHO-Klassifikation nicht enthalten. Nach Ansicht der Autoren ersetzt die HPV-Assoziation (i. e. p16 „block-positivity“; 12 das Grading derzeit (noch) nicht. Sollte ein Grading zur Dokumentation bzw. für das DRG-System relevant sein, kann dieses in Analogie zum bisherigen Vorgehen anhand des Ausmaßes der Keratinisierung erfolgen.

Tumoren der Cervix uteri

Bei den plattenepithelialen zervikalen intraepithelialen Neoplasien (CIN) gibt es keine Änderungen.

Beim Adenocarcinomata in situ (AIS) werden verschiedene Varianten HPV-assoziierter und das nicht HPV-assoziierte gastrische AIS (g-AIS) unterschieden. Die SMILE (Stratified mucin-producing intraepithelial lesion) als Subtyp der AIS wird nicht mehr als eigenständige Entität aufgeführt.

Epitheliale Präkanzerosen und Karzinome der Cervix uteri sind mehrheitlich HPV-assoziiert 25 .

Um eine einheitliche Nomenklatur zu gewährleisten, wird auch hier von der WHO eine Unterteilung der Plattenepithelkarzinome wie beim Vulva- und Vaginalkarzinom vorgenommen ( Abb. 5 ).

Für die sehr seltenen HPV-negativen Plattenepithelkarzinome 26 ,  27 ist keine Präkanzerose bekannt.

Auch bei den Plattenepithelkarzinomen der Cervix uteri gelingt eine rein HE-morphologische Unterscheidung beider Formen nicht, daher wird von der WHO die p16-Immunhistochemie empfohlen, aber auch hier die Diagnose Plattenepithelkarzinom-NOS akzeptiert ( Abb. 5 ), da keine therapeutischen bzw. prognostischen Unterschiede bestehen. Die WHO-Klassifikation konstatiert zum Grading , dass kein etabliertes Gradingsystem existiert. Nach Ansicht der Autoren ersetzt die HPV-Assoziation (i. e. p16 „block-positivity“; 12 ) das Grading derzeit (noch) nicht. Sollte ein Grading zur Dokumentation bzw. für das DRG-System relevant sein, kann dieses in Analogie zum bisherigen Vorgehen anhand des Ausmaßes der Keratinisierung erfolgen.

Auch beim Adenokarzinom (AC) der Cervix uteri erfolgt eine Unterteilung anhand der HPV High-Risk-Assoziation. HPV-negative AC zeigen eine signifikant ungünstigere Prognose 28 , 29 , 30 .

Daher gibt es die bisherige diagnostische Kategorie AC-NOS in der neuen WHO-Klassifikation nicht mehr.

Gleiches gilt für das (primäre) seröse AC der Cervix uteri , bei denen es sich fast ausschließlich um endometriale oder isthmische Endometriumkarzinome mit zervikaler Beteiligung handelt 29 ,  31 .

Die WHO-Klassifikation hat die auch in der 2021 überarbeiteten Version der S3-Leitlinie Zervixkarzinom 32 aufgeführte „International Endocervical Adenocarcinoma Classification“ (IECC; 28 ,  29 ) übernommen ( Abb. 6 ).

Abb. 6.

Abb. 6

 Einteilung von Adenokarzinomen der Cervix uteri entsprechend der WHO-Klassifikation 2020 1 ,  28 ,  29 ,  31 ,  32 ,  37 . Kleines Bild: starke p16-Positivität eines AC usual type.

Eine HPV-Analyse ist für die Diagnosestellung nicht notwendig 1 . Beim Nachweis einer „block-type“-Reaktivität 1 ( Abb. 6 ) ist p16 ein verlässlicher Surrogatmarker für die HPV-Assoziation. In sehr seltenen Fällen kann eine p16-Hypermethylierung zu einer (falsch) negativen Immunhistochemie führen 33 , die für die CIN 3 mit rund 5% angegeben wird 4 ,  34 . Bedeutsam ist auch die Auswahl eines geeigneten p16-Klons für die verlässliche p16-Bestimmung 35 . Die p16-Reaktivität ist an alten Paraffinblöcken bzw. unzureichend fixiertem Gewebe unzuverlässig 31 ,  36 . Wichtig ist, dass auch HPV-unabhängige AC (z. B. gastrische) eine p16-Positivität zeigen können 37 . Die Interpretation der p16-Immunhistochemie muss hier im Kontext mit der HE-Morphologie erfolgen.

Neu in die WHO-Klassifikation aufgenommen wurde die auf architektonischen Kriterien basierende, prognostisch-relevante Klassifikation (HPV-assoziierter) AC, das sog. Silva-Pattern ( Tab. 2 ).

Tab. 2  Häufigkeit und prognostische Relevanz des sog. Silva-Patterns beim HPV-assoziierten Adenokarzinom der Cervix uteri 43 .

Häufigkeit pelvine Lymphknotenmetastasierung FIGO-Stadium I FIGO-Stadium II – IV Rezidivrate
Pattern Agraphic file with name 10-1055-a-1545-4279-igfdetab2-01.jpg 20,7% 0% 100% 0% 0%
Pattern Bgraphic file with name 10-1055-a-1545-4279-igfdetab2-02.jpg 25,6% 4,4% 100% 0% 1,1%
Pattern Cgraphic file with name 10-1055-a-1545-4279-igfdetab2-03.jpg 53,7% 23,8% 83% 17% 23,7%

Diese unterscheidet zwischen prognostisch günstigen, non-destruktiv wachsenden Pattern-A- und den destruierend wachsenden Pattern-B- und -C-Karzinomen. Die Abgrenzung zwischen Pattern-A-AC und dem AIS kann HE-morphologisch schwierig sein (k = 0,23; 38 ).

Das endometrioide AC der Endozervix stellt fast in allen Fällen eine muzindepletierte Variante des HPV-assoziierten ACs dar. Endometrioide Endometriumkarzinome mit Zervixinfiltration und benigne Läsionen sind immunhistochemisch abzugrenzen.

Epithelial-mesenchymale Tumoren

Bei den bisher in der WHO-Klassifikation aufgeführten Adenofibromen der Cervix uteri handelt es sich de facto um benigne Endometrium- bzw. Zervixpolypen mit ungewöhnlicher Morphologie 39 ,  40 oder aber um Adenosarkome mit „low-grade Morphologie des Stromas“ ( Abb. 7 ), bei denen immunhistochemische Untersuchungen differenzialdiagnostisch hilfreich sind 41 .

Abb. 7.

Abb. 7

 Adenosarkom des Uterus: blattartiges Wachstum des Tumors mit sehr zellarmem Stroma (*), das eine diskrete Akzentuierung der Zelldichte unter dem oberflächlichen Epithel zeigt (Pfeile) mit blander Zytologie.


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