Abstract
Фосфопеническая остеомаляция опухолевого генеза — редкое приобретенное заболевание. Причиной является мезенхимальная опухоль, секретирующая фактор роста фибробластов 23 (ФРФ23). Избыточное количество ФРФ23 нарушает метаболизм фосфора и витамина D, что приводит к тяжелому паранеопластическому синдрому, проявляющемуся в виде множественных переломов, выраженного болевого синдрома в костях и генерализованной миопатии. Возможно полное излечение при радикальной резекции опухоли. К сожалению, локализация, малый размер образований и редкая встречаемость приводят к тому, что заболевание длительно остается нераспознанным и приводит к тяжелым, инвалидизирующим последствиям. Поэтапный подход к диагностике улучшает результаты. Вначале производят тщательный сбор анамнеза и лабораторную диагностику, затем функциональную визуализацию и подтверждают диагноз анатомической визуализацией опухоли. Методом выбора является оперативное лечение. Если резекция невозможна, то показана медикаментозная терапия активными метаболитами витамина D и солями фосфора. Активно развиваются новые терапевтические и диагностические подходы, такие как антитело к ФРФ23 и пан-ингибиторы рецепторов ФРФ. В данной статье представлен обзор современных подходов к диагностике и лечению ФРФ23-индуцированной остеомаляции.
Keywords: фосфопения, фосфор, остеомаляция, опухоль, ФРФ23, гиперпаратиреоз, остеопороз
Abstract
Tumor induced osteomalacia is a rare acquired disease. The cause is a mesenchymal tumor secreting fibroblast growth factor 23 (FGF23). An excessive amount of FGF 23 disrupts the metabolism of phosphorus and vitamin D, which leads to severe paraneoplastic syndrome, manifested in the form of multiple fractures, severe pain in the bones and generalized myopathy. With oncogenic osteomalacia, a complete cure is possible with radical resection of the tumor. Unfortunately, localization, small size of formations and rare frequency of occurrence lead to the fact that the disease remains unrecognized for a long time and leads to severe, disabling consequences. A step-by-step approach to diagnosis improves treatment outcomes. First, a thorough anamnesis is collected, then functional visualization is performed and the diagnosis is confirmed by anatomical visualization of the tumor. After that, the method of choice is a surgical treatment. If resection is not possible, then conservative therapy with active metabolites of vitamin D and phosphorus salts is indicated. New therapeutic approaches, such as the antibody to FGF23 or the pan-inhibitor of receptors to FGF, are actively developing. This article provides an overview of modern approaches to the diagnosis and treatment of this disease.
ВВЕДЕНИЕ
Фосфопеническая остеомаляция опухолевого генеза относится к орфанным, метаболическим заболеваниям [1][2]. На фоне избыточной секреции фактора роста фибробластов 23 (ФРФ23, fibroblast growth factor 23, FGF23) развивается тяжелый паранеопластический синдром, который в литературе называют «опухоль-индуцированной остеомаляцией» или «онкогенной остеомаляцией» (Tumor induced osteomalacia, TIO). Причиной является мезенхимальная опухоль, секретирующая ФРФ23. В большинстве случаев это высокодифференцированные, доброкачественные новообразования с умеренным темпом роста. Однако, несмотря на доброкачественность гистоморфологической картины, заболевание протекает тяжело как за счет гиперсекреции ФРФ23, так и за счет возможного метастазирования (вероятно, в случае повреждения целостности образования). Гиперсекреция ФРФ23 приводит к дефициту ионов фосфата и, соответственно, недостаточной минерализации костей, т.е.к остеомаляции [3–7].
Опухолевая остеомаляция встречается, как правило, во взрослом возрасте и требует тщательной дифференциальной диагностики, которая будет подробно освещена ниже. Впервые заболевание было описано достаточно поздно, в конце XX в. (схожий по клинике рахит описан в XVII в. [8]). У пациентов наблюдаются выраженные боли в костях (до 99,3%), множественные переломы (до 79%), уменьшение в росте (до 69%), генерализованная миопатия (до 65%), а также ряд неспецифических симптомов [1][3][4][9–11]. Визуализация опухолей с помощью мультиспиральной компьютерной томографии (МСКТ) или магнитно-резонансной томографии (МРТ) сложна из-за малых размеров, мезенхимальной природы образований и разнообразной локализации, как внутри костей так и в мягких тканях. Вдобавок неспецифичность клинической картины и малая распространенность приводят к тому, что заболевание остается нераспознанным [10–12]. Активная диагностика началась с 2008 г., что связано с прогрессом инструментальных методов. В мире известно около 1725 клинических случаев [13][14]. Распространенность и эпидемиология из-за редкости изучены недостаточно и неизвестны.
Полное излечение возможно при радикальном удалении опухоли, в отличие от генетически обусловленных форм остеомаляции [15][16]. Отсутствие ремиссии наблюдается при невозможности удалить патологический очаг, а рецидивы чаще встречаются при нерадикальном хирургическом лечении и метастазировании. В таких случаях показана медикаментозная терапия [2].
Описаны случаи, когда ФРФ23 синтезировался злокачественными образованиями (рак простаты [17], легкого [18], яичников [19], гемобластоз [20] и др.). Есть данные, что встречаются «ФРФ23-негативные» опухоли, секретирующие другие фосфатрегулирующие соединения: frizzled-related protein 4, FGF7 и матриксный внеклеточный фосфогликопротеин [21–23].
Подробная информация о ФРФ23-секретирующих опухолях представлена в данном обзоре.
ФАКТОРЫ РОСТА ФИБРОБЛАСТОВ. МЕТАБОЛИЗМ И РОЛЬ ФРФ23
ФРФ23 — белок из семейства факторов роста фибробластов (ФРФ), в котором известно 23 члена. Первый представитель — ФРФ2 — был открыт в 1973 г. и широко используется в микробиологии по сей день [24][25]. Большинство ФРФ действуют паракринно, однако некоторые (ФРФ23, ФРФ21, ФРФ19) обладают эндокринными свойствами [26]. Члены семейства имеют структурное сходство и участвуют в ангиогенезе, эмбриогенезе, регенерации и метаболизме, взаимодействуя с рецепторами FGFR1, FGFR2, FGFR3, и FGFR4 [26][27]. Разнообразие биологических функций ФРФ обусловлено различиями рецепторов и кофакторов, образующих множество комбинаций и активизирующих специфические сигнальные пути [28–30]. ФРФ являются ценными мишенями для разработки лекарственных веществ. Уже сейчас доступны препараты для лечения ожоговых и язвенных ран, разрабатываются регенерирующие и противоопухолевые средства на основе ФРФ [26][31].
В данном обзоре мы более подробно рассмотрим ФРФ23. Названия белков будут написаны заглавными буквами (например, FGF23). Названия генов будут написаны заглавными курсивными буквами (например, FGF23). ФРФ23 открыт в 2000 г. японским исследователем T. Yamashita [32]. ФРФ23 был обнаружен в мышином вентролатеральном ядре таламуса и привлек к себе внимание ученых. После ряда экспериментов ФРФ23 идентифицировали как причину аутосомно-доминантного рахита [33], oпухоль-индуцированной остеомаляции [34], показали его ведущую роль в патогенезе почечной недостаточности [5]. Клетки костной ткани (остеоциты и остеобласты) синтезируют белок ФРФ23. Концентрация ФРФ23 регулируется на множестве биологических уровней (в процессе транскрипции, посттрансляционно, в системном кровотоке), что свидетельствует о его важности для организма. На процесс транскрипции ФРФ23 оказывают влияние белки DMP-1, ANKH, PHEX, ENPP1, а мутации вих генах приводят к заболеваниям (табл. 1) [35–42]. В результате транскрипции гена FGF23, расположенного на 12-й хромосоме и состоящего из 3 экзонов, синтезируется белок, состоящий из 251 аминокислоты (32 kD) [26]. Далее включаются механизмы посттрансляционной модификации: отщепляется сигнальный пептид (24 амк) и ФРФ23 становится биоактивным. Часть ФРФ23 инактивируется внутри клетки, а часть секретируется в кровь в биоактивной форме (рис. 1). Инактивация внутри клетки происходит путем фосфорилирования белком Fam20C (FAM20C), а затем расщепления белком FURIN-like proteasa на N-терминальный (154 амк) и С-терминальный (73 амк) пептиды [43]. Баланс между биоактивной и инактивированной формами ФРФ23 крайне важен и предположительно зависит от уровня фосфора крови. Высокие концентрации фосфора опосредованно повышают концентрацию ФРФ23, увеличивая экспрессию белка GalNAc-N3 (GALNT3). GalNAc-N3 О-гликозилирует биоактивный ФРФ23, делая его недоступным для фосфорилирования и протеолиза, тем самым повышая концентрацию биоактивной формы в крови (рис. 1) [44].
Таблица 1. Заболевания, обусловленные ФРФ23Table 1. Diseases due to FGF23
Примечание. АР — аутосомно-рецессивный тип наследования; АД — аутосомно-доминантный тип наследования.
| Заболевание | Аббревиатура | Тип | Ген | Механизм | Комментарии | OMIM |
| Дефицит ФРФ23 и гиперфосфатемия | ||||||
| Первичный опухолевый (туморальный) кальциноз тип 1 | HFTC, HSS | АР | GALNT3 | Дефицит ФРФ23 | Отсутствует О-гликозилирование ФРФ23, в итоге избыточная инактивация ФРФ23 | #211900 #610233 |
| Первичный опухолевый (туморальный) кальциноз тип 2 | HFTC | АР | FGF23 | Дефицит ФРФ23 | Мутации ФРФ23 | #211900 |
| Первичный опухолевый (туморальный) кальциноз тип 3 | HFTC | АР транслокация | KL | Дефицит ФРФ23 | Мутации Klotho | #211900 |
| Избыток ФРФ23 и гипофосфатемия | ||||||
| Х-связанный гипофосфатемический рахит | XLH | X-сцепленно | PHEX | Избыток ФРФ23 | Мутации в PHEX стимулируют избыточную транскрипцию ФРФ23 | #307800 |
| Аутосомно-доминантный гипофосфатемический рахит | ADHR | АД | FGF23 | Избыток ФРФ23 | Мутантный белок ФРФ23 резистентен к инактивации и протеолизу | #193100 |
| Гипофосфатемический рахит с гиперпаратиреозом | ADHR | АД | KL | Избыток ФРФ23 | Избыток ФРФ23 | #612089 |
| Аутосомно-рецессивный гипофосфатемический рахит 1 типа | ARHP | АР | DMP1 | Избыток ФРФ23 | Мутации в генах стимулируют избыточную транскрипцию ФРФ23 | #241520 |
| Аутосомно-рецессивный гипофосфатемический рахит 2 типа | ARHP | АР | ENPP1 | Избыток ФРФ23 | Мутации в генах стимулируют избыточную транскрипцию ФРФ23 | #173335 |
| Болезнь депонирования кристаллов пирофосфата кальция; хондрокальциноз | CCAL2 | АД | ANKH | Избыток ФРФ23 | Мутации в генах стимулируют избыточную транскрипцию ФРФ23 | #118600#123000 |
| Краниометафизарная дисплазия, синдром Джексона | CMDJ | |||||
| Остеосклеротическая костная дисплазия (Синдром Рейна) | RNS | АР | FAM20C | Избыток ФРФ23. | Мутантный белок Fam20c не способен фосфорилировать ФРФ23 для инактивации | #259775 |
| Мутации рецепторов ФРФ23 | ||||||
| Остеоглофоническая дисплазия | АД? | FGFR1 | Резистентность к ФРФ23 | Резистентность к ФРФ23. | #166250 | |
| Ненаследуемые заболевания | ||||||
| Опухоль-индуцированная остеомаляция | TIO | FN1-FGFR1, FN1-FGF1 | Избыток ФРФ23 | Гиперсекреция ФРФ23 опухолевыми клетками | ||
| Хроническая почечная недостаточность | CKD | Избыток ФРФ23 | Компенсаторное повышение ФРФ23 |

Рисунок 1. Синтез ФРФ23 в остеоците. Регуляция экспрессии ФРФ23 на уровнях транскрипции и посттрансляционных модификаций.Комментарий. Ген FGF23 расположен на 12-й хромосоме и кодирует белок ФРФ23 (251 амк) в остеоцитах. Процесс транскрипции ингибируют белки DMP-1, ANKH, PHEX, ENPP1. В процессе посттрансляционной модификации отщепляется сигнальный пептид (24 амк). Часть ФРФ23 инактивируется внутри клетки путем фосфорилирования белком Fam20C (FAM20C), а затем расщепляется белком FURIN-like proteasa на N-терминальный (154 амк) и С-терминальный (73 амк) пептиды, которые затем секретируются в кровь. Инактивации ФРФ23 препятствует процесс О-гликозилирования ФРФ23 белком GalNAc-N3 (GALNT3). О-гликозилированный ФРФ23 недоступен для протеолиза, тем самым повышается его концентрация крови. ФРФ23 — фактор роста фибробластов 23; GalNAc-T3 — полипептид N-ацетилгалактозаминилтрансфераза 3, GALNT3 — ген полипептида N-ацетилгалактозаминилтрансфераза 3; фосфор — неорганический фосфат.Figure 1. Synthesis of FGF23 in the osteocyte. Regulation of FGF23 expression at the levels of transcription and post-translational modifications.
После посттрансляционных модификаций в кровь секретируются нижеследующие формы ФРФ23. Во-первых, это биоактивный «интактный ФРФ23» (N+C-пептиды). Во-вторых, это 2 короткие, небиоактивные формы: С-пептид и N-пептид. Их роль ифункции изучаются. Современные лабораторные наборы в большинстве случаев определяют интактный ФРФ23. Однако есть тесты, которые оценивают С-пептид. Таким образом, измерение соотношений интактного и С-пептида ФРФ23 может помочь в диагностике ФРФ23-обусловленных нарушений (рис. 2) [43].

Рисунок 2. Секреция и регуляция концентрации ФРФ23 в системном кровотоке.Комментарии. После отщепления сигнального пептида (24 амк) секретируется интактный ФРФ23 (227 амк). Часть ФРФ23 инактивируется белком-протеазой (FURIN-like proteasa). В системный кровоток ФРФ23 секретируется в 3 формах: интактный (биоактивный) ФРФ23, С-пептид ФРФ23, N-пептид ФРФ23. 1,25(OH)2D, ПТГ, фосфор, кальций, sKlotho повышают концентрацию ФРФ23. Дефицит железа, воспаление могут параллельно увеличить как транскрипцию ФРФ23, так и его расщепление. ФРФ23 — фактор роста фибробластов 23.Figure 2. Secretion and regulation of FGF23 concentration in the systemic circulation
В крови также существует система контроля концентраций ФРФ23, однако процесс его инактивации до конца не ясен. Предполагают участие ингибиторов активатора плазминогена (plasminogen activator inhibitor-1 (PAI-1)). PAI-1 является ингибитором сериновой протеазы (SERPIN), известна его взаимосвязь с патологическими состояниями человека, включая хроническую болезнь почек, инфаркт миокарда и диабет [45].
Активно изучается влияние на концентрацию ФРФ23 системных факторов: 1,25(OH)2D (1,25 дигидроксихолекальциферол, кальцитриол), ПТГ (паратиреоидный гормон), фосфора, кальция, sKlotho (serum soluble Klotho, растворимый в сыворотке Клото), факторов воспаления, дефицита железа и эритропоэтина (рис. 2). 1,25(OH)2D, ПТГ, фосфор, кальций повышают концентрацию ФРФ23. Известно, что 1,25(OH)2D стимулирует транскрипцию ФРФ23 путем связывания в промоторной области генаFGF23 [43]. Остальные механизмы менее ясны. Кальций увеличивает транскрипцию ФРФ23, действуя через кальций-чувствительные каналы (L-type voltage-sensitive calcium channels) [46]. ПТГ опосредованно может способствовать транскрипции ФРФ23, действуя через циклическую AТФ-зависимую протеинкиназу (PKA), Wnt-NURR1 сигнальные пути [47][48]. Циркулирующие в крови sKlotho и ФРФ2 также стимулируют экспрессию ФРФ23, активируя рецепторы ФРФ на остеоцитах [49][50]. Дефицит железа может параллельно увеличить как транскрипцию ФРФ23, так и его расщепление [43]. Системное воспаление характеризуется низким содержанием железа в сыворотке крови несмотря на нормальные или повышенные запасы железа в организме, что приводит к аналогичному влиянию на ФРФ23 [43].
Биоактивная форма ФРФ23 разносится системным кровотоком и взаимодействует с рецепторами FGFR1-4, активируя RAS-MAPK и PI3K-AKT внутриклеточные сигнальные пути [31][51]. Способность связывания факторов роста фибробластов с тем или иным рецептором FGFR определяется наличием специфического ко-рецептора. Без наличия ко-рецептора аффинность ФРФ23 к рецепторам FGFR1-4 низкая. Основной функцией ФРФ23 является контроль уровня фосфора по аналогии с ПТГ, регулирующим уровень кальция. Фосфатурические эффекты ФРФ23 называются каноническими. Они осуществляются при взаимодействии ФРФ23 с рецептором FGFR1 подтипа С (FGFR1C) [13] и требуют обязательного наличия ко-рецептора, трансмембранного белка альфа-КЛОТО (KL, αKlotho) [52]. Органами-мишенями в таком случае являются почки и паращитовидные железы [52–54]. ФРФ23 регулирует баланс фосфатов, удаляя избыток фосфора с мочой, снижая активность натрий-зависимых фосфатных транспортеров NaPi2a и NaPi2c (SLC34a1 и SLC34a3), тем самым повышая экскрецию фосфора [21][55]. Кроме того, ФРФ23 ингибирует синтез 1,25(OH)2D в почках, снижая активность D-1α-гидроксилазы (CYP27B1), и усиливает его распад через активацию 24α-гидроксилазы (CYP24A1) [56]. В паращитовидных железах ФРФ23 ингибирует секрецию ПТГ, однако этот эффект зачастую преодолевается ФРФ23-опосредованной супрессией кальция, что влечет значительное повышение продукции ПТГ [57].
С течением времени были изучены новые, названные неканоническими, эффекты ФРФ23 на миокард, печень, иммунные клетки, костный мозг (рис. 3). Передача сигналов ФРФ23 в этих случаях происходит независимо от KL через рецепторы FGFR2-4 с участием других ко-рецепторов [58]. Активное изучение ФРФ23 продолжается на протяжении последних 20 лет, однако еще остаются нерешенные вопросы.

Рисунок 3. Эффекты ФРФ23.Комментарий. ФРФ23, взаимодействуя с рецептором 1c FGF (ФРФР1) и ко-рецептором альфа-КЛОТО (Kлото), регулирует баланс фосфатов, ингибирует синтез кальцитриола и опосредованно влияет на продукцию ПТГ. Изучаются новые эффекты ФРФ23 через взаимодействие с другими рецепторами (ФРФР2, -3, -4) и ко-факторами на миокард, печень, иммунные клетки, костный мозг.Figure 3. Effects of FGF23
При избытке ФРФ23 наблюдаются гипофосфатемия, дефицит 1,25(ОН)2D, что приводит к фосфопенической остеомаляции, зачастую с переломами скелета. Из-за дефицита 1,25(OH)2D может развиваться вторичный гиперпаратиреоз.
ЭПИДЕМИОЛОГИЯ ОПУХОЛЬ-ИНДУЦИРОВАННОЙ ОСТЕОМАЛЯЦИИ
Опухолевой остеомаляции одинаково подвержены лица обоих полов, дебют заболевания наблюдается преимущественно в 40–45 лет, хотя встречается в любом возрасте [59–63]. Например, известны случаи пациентов с онкогенной остеомаляцией в возрасте 11,5 года [59], 3 лет [60][64] и даже 9 мес [62]. У детей преобладают генетические формы гиперсекреции ФРФ23 (PHEX-синдром, синдром Мак-Кьюна–Олбрайта, аутосомно-доминантный гипофосфатемический рахит и др., табл. 1) [15]. В случае выявления фосфопенической остеомаляции, индуцированной ФРФ23, необходимо исключать опухолевый генез. Настораживающими факторами в таком случае служат возраст и резкое начало заболевания.
Эпидемиология ФРФ23-опухолей остается малоизученной. По данным национального регистра Дании, с 2008 по 2018 гг. заболеваемость населения составила менее 0,13 на 100 000 человек, а у взрослых — 0,10 на 100 000 человек. Распространенность составила не более 0,70 на 100 000 человек среди всего населения и 0,43 на 100 000 среди взрослых. В 2018 г. среди взрослых было зарегистрировано не более 9 новых случаев. Код по МКБ-10 не определен, но чаще всего используются коды: М83.8 Другая остеомаляция у взрослых; E83.3 Нарушения обмена фосфора.
Клинические проявления онкогенной остеомаляции включают в себя значительные поражения опорно-двигательного аппарата c множественными переломами, выраженную мышечную слабость, которые в совокупности приводят к полной иммобилизации пациентов и развитию дыхательной недостаточности [1].
ДИАГНОСТИКА ОПУХОЛЕВОЙ ОСТЕОМАЛЯЦИИ
Лабораторная диагностика
В среднем от начала симптомов до постановки диагноза проходит 3 года, а до хирургического лечения — 5 лет [21]. За это время у пациентов успевают развиться переломы, деформации, выраженная хрупкость костей. В 95% случаев пациенты наблюдаются с диагнозами: остеопороз, гиперпаратиреоз, различные варианты артритов и другие заболевания минерального обмена, а также у неврологов из-за выраженной мышечной слабости [3]. Во избежание поздней диагностики этого редкого, но излечимого заболевания мы рекомендуем всем пациентам с остеопорозом, патологическими переломами и миопатией определять уровень фосфора в крови.
Характерными лабораторными признаками ФРФ23-опухоли в крови являются гипофосфатемия, повышение активности щелочной фосфатазы, нижне-нормальный уровень 25(ОН) витамина D и низкие концентрации активного метаболита 1,25(OH)2D, что может повлечь повышение уровней ПТГ и кальция [22][65][66]. При повышении уровня ПТГ необходима тщательная дифференциальная диагностика с гиперпаратиреозом, т.к. при длительном избытке ФРФ23 и реактивном повышении ПТГ развивается гиперплазия околощитовидных желез, которая ошибочно может трактоваться как первичный, а иногда и третичный гиперпаратиреоз. Далее оценивают потери фосфора с мочой. Для этого рассчитывают тубулярный индекс реабсорбции фосфора (TRP,%). В норме индекс реабсорбции фосфора должен составлять 85–95% [21]. При ФРФ23-опухоли фосфор активно экскретируется с мочой, и TRP,% составляет менее 85%. Расчет производится по представленной ниже формуле:
где TRP, % — тубулярный индекс реабсорбции фосфора;
UPh — фосфор разовой мочи (ммоль/л);
UCr — креатинин разовой мочи (ммоль/л);
PCr — креатинин плазмы либо сыворотки (ммоль/л);
PPh — фосфор плазмы либо сыворотки (ммоль/л).
* Если показатель креатинина представлен в единицах измерения мкмоль/л, то их следует перевести в ммоль/л. Для этого мкмоль/л необходимо разделить на 1000 и получить ммоль/л. Пример: креатинин 76,2 мкмоль/л = 0,0762 ммоль/л.
Пример:
дано: Фосфор разовой мочи — 11,72 (ммоль/л);
Креатинин разовой мочи — 3676,868 (мкмоль/л) = 3,676 ммоль/л;
Креатинин сыворотки — 76,1 (мкмоль/л) = 0,076 ммоль/л;
Фосфор сыворотки — 0,41 (ммоль/л).
При наличии хронической болезни почек стоит рассчитать индекс максимальной реабсорбции фосфатов с поправкой на скорость клубочковой фильтрации (СКФ) (TmP/GRF). Нормы приведены в таблице 2. Расчет TmP/GRF производится по однойиз двух формул, в зависимости от уровня TRP.
Таблица 2. Референсные интервалы TmP/GRF ммоль/л (индекс максимальной реабсорбции фосфатов с поправкой на СКФ) [82]Table 2. TmP/GRF reference intervals mmol/L (maximum phosphate reabsorption index adjusted for GFR) [82]
| Возраст | Мужской пол | Женский пол |
| Новорожденные | 1,43–3,43 | 1,43–3,43 |
| 3 мес | 1,48–3,30 | 1,48–3,30 |
| 6 мес | 1,15–2,60 | 1,15–2,60 |
| 2–15 лет | 1,15–2,44 | 1,15–2,44 |
| 25–35 лет | 1,00–1,35 | 0,96–1,44 |
| 45–55 лет | 0,90–1,35 | 0,88–1,42 |
| 65–75 лет | 0,80–1,35 | 0,80–1,35 |
Если TRP≤0,86 (86%), тогда используют формулу:
TmP/GRF = PPh×TRP*,
где TmP/GRF — индекс максимальной реабсорбции фосфатов с поправкой на СКФ;
PPh — фосфор плазмы либо сыворотки (ммоль/л);
TRP — тубулярный индекс реабсорбции фосфора (в долях).
* Показатель TRP для расчета по формуле необходимо перевести в доли. Для этого TRP, % следует разделить на 100. Пример: TRP 41% = 0,41.
Пример:
Дано: Тубулярный индекс реабсорбции фосфора — 41% = 0,41;
Фосфор плазмы либо сыворотки — 0,41 (ммоль/л).
0,1681 = 0,41 х 0,41.
Если TRP≥0,86 (86%), тогда используют формулу:
где TmP/GRF — индекс максимальной реабсорбции фосфатов с поправкой на СКФ;
TRP — тубулярный индекс реабсорбции фосфора (в долях);
PPh — фосфор плазмы либо сыворотки (ммоль/л).
* Показатель TRP для расчета по формуле необходимо перевести в доли. Для этого TRP, % следует разделить на 100. Пример: TRP 41% = 0,41.
Пример:
дано: Тубулярный индекс реабсорбции фосфора — 87% = 0,87;
Фосфор плазмы либо сыворотки — 0,8 (ммоль/л)
После лабораторного подтверждения фосфопенической остеомаляции необходимо исключить наследуемые причины заболевания (табл. 1) [67], после чего можно приступать к топическому поиску новообразования. Наиболее известные варианты наследственных синдромов — мутации, влияющие на экспрессию гена ФРФ23 (врожденные рахиты с мутациями в генах FGF23, DMP-1, ENPP1, PHEX). Реже встречаются мутации рецепторов (FGFR1) и ко-факторов (Klotho), c которыми связывается ФРФ23. При невозможности провести генетическое тестирование необходимо ориентироваться на возраст пациентов, наследственность, характер заболевания [68][69].
Инструментальная диагностика
Для успешного хирургического лечения ФРФ23-опухолей крайне важной является топическая диагностика. До 2017 г. в РФ в качестве метода диагностики применялись МСКТ либо МРТ всего тела, по результатам которых опухоли не всегда идентифицировались. В 2018 г. в России начали использовать более продвинутые методы диагностики, основанные на сродстве диагностических радиофармпрепаратов (РФП) к опухолевым рецепторам (соматостатиновые 2А типа SSTR2A) [1]. Применяется сцинтиграфия с РФП (99mTc-тектротид, 111In-октреотид) либо позитронно-эмиссионная томография (ПЭТ, ПЭТ/КТ) с РФП (соли галия: Ga DOTA-TATE). Широко используемый препарат для поиска новообразований 18F-фтордезоксиглюкоза (18F-ФДГ) не показал успешных результатов в диагностике ФРФ23-опухолей. Использование 18F-ФДГ обладает меньшей чувствительностью по сравнению со сцинтиграфией, а лучшим визуализирующим методом считается ПЭТ/КТ сGa DOTA-TATE [70]. Также отметим, что 21% опухолей не имеют на своей поверхности рецепторов SSTR2A, а значит, их поиск на данный момент затруднен. В мире описано применение селективного забора крови из вен с определением ФРФ23 в сомнительных (с точки зрения локализации опухоли) случаях [71][72].
Таким образом, инструментальная диагностика опухолей, секретирующих ФРФ23, строится поэтапно. Вначале проводят функциональную визуализацию с использованием специфических РФП. Затем осуществляют топический поиск опухоли: КТ, и/или МРТ, и/или УЗИ. При таком подходе удается диагностировать до 70% опухолей [72]. Образования обнаруживаются в мягких тканях (55%) или в костях (40%) любой локализации. Чаще поражаются конечности, голова и суставы. Размеры небольшие и составляют 1–2 см [73].
Гистологическая диагностика и молекулярно-генетические особенности опухолей
Патоморфология ФРФ23-опухолей остается предметом активного изучения. Патоморфологическое исследование проводят после хирургического иссечения для подтверждения мезенхимального происхождения и оценки границ опухоли. Нe рекомендуется проводить предоперационную биопсию опухолей, т.к. при нарушении целостности образования возможно метастазирование по организму.
Гистологически фосфатурические мезенхимальные опухоли содержат остеокластоподобные гигантские клетки, множественные веретенообразные клетки, зрелый жир, гиперваскуляризованная капсула отсутствует, а опухоль может инфильтрировать кость между трабекулами и соседние ткани [16]. Злокачественные признаки (высокая клеточная и митотическая активность, некроз) не характерны.
Иммуногистохимически определяется экспрессия ФРФ23, рецептора соматостатина 2A (в 79%), FGFR1 (82%). J.-C. Lee и соавт. провели серию экспериментов и нашли типичные мутации в тканях опухоли — слияние генов FN1-FGFR1, реже FN1-FGF1(FN1 — фибронектин) [74]. Предполагается, что мутантный белок, продукт слияния генов FN1-FGFR1, обладает стимулирующим действием на FGFR1-рецепторы на поверхности опухоли и таким образом потенцирует рост и развитие образования.
ТЕРАПИЯ ОПУХОЛЕВОЙ ОСТЕОМАЛЯЦИИ
Хирургическое лечение — это метод выбора при ФРФ23-опухолях. А первая операция — главный шанс излечить пациента. Резекцию опухоли необходимо по возможности проводить широко, в пределах здоровых тканей, особенно если образование не имеет капсулы и врастает в окружающие ткани. Единичные клетки, оставленные в послеоперационной ране, будут секретировать ФРФ23 и метастазировать. Рекомендуется избегать предоперационной биопсии и выскабливания опухоли по причине возможных метастазов. Желательно, чтобы операцию проводил опытный хирург, специализирующийся на пораженной области. Наиболее удобным показателем эффективности лечения является уровень фосфора, который восстанавливается уже на 5–10-е сутки после радикальной операции.
Отсутствие ремиссии может наблюдаться в следующих случаях:
Все вышеописанные причины являются показаниями к проведению консервативной терапии. Общепринятой на сегодняшний день схемой лечения пациентов с гипофосфатемической остеомаляцией является назначение альфакальцидола в дозах 4–4,5 мкг/сут, колекальциферола в поддерживающих дозах, по показаниям возможно применение препаратов фосфора 1–3 г/сут (суточную дозу распределяют на 3–4 приема в течение дня). Отметим, что препараты фосфора в России труднодоступны, а терапевтический ответ ограничен из-за побочных явлений, а именно диспептических расстройств (тошнота, рвота, диарея), развития нефрокальциноза и вторичного гиперпаратиреоза [75]. Многократный ежедневный прием (до 4–5 раз в сутки) солей фосфора снижает комплаентность пациентов.
Препарат буросумаб (KRN23), являющийся моноклональным антителом к ФРФ23, доказал эффективность и безопасность у данной группы пациентов (с 2020 г.), а также при врожденных рахитах с ФРФ23-опосредованным механизмом развития (с 2018 г.). Использование буросумаба продемонстрировало улучшение качества жизни, восстановление уровня фосфора, улучшение мышечной силы и гистоморфометрических параметров (снижение объема неминерализованного остеоида) [76]. Несмотря на то что буросумаб доказал свою краткосрочную эффективность, до сих пор отсутствует информация о его долгосрочных эффектах и о безопасности. Кроме того, поскольку буросумаб не останавливает прогрессирование или рост опухоли, его применение ограничено пациентами с неоперабельными или нелокализованными опухолями [2]. Буросумаб не зарегистрирован в России.
Идентификация транслокации FN1-FGFR1 в качестве молекулярного драйвера опухолей вызвала интерес научного сообщества [75]. Разрабатываются препараты с нацеливанием на FGFR1 для блокирования роста опухоли и секреции FGF23 [31][77–80]. Создан препарат ингибитор тирозинкиназы pan-FGFR BGJ398/инфигратиниб, который блокирует опухолевый FGFR1, что тормозит рост опухоли и секрецию ФРФ23. BGJ398/инфигратиниб уже показал свою эффективность, нормализуя ФРФ23 иснижая опухолевую нагрузку у пациентов с метастазами ФРФ23-опухоли [80]. Ингибитор pan-FGFR BGJ398/инфигратиниб является вариантом лечения, но из-за токсичности показан только пациентам с метастазами. Безопасность и эффективность применения ингибиторов FGFR являются областью активного изучения [31].
Цели консервативного лечения: в крови поддержание уровня фосфора в нижне-нормальных пределах, а показателей ПТГ, щелочной фосфатазы, кальция — в референсных интервалах. В качестве мониторинга исследуются показатели минерально-костного обмена каждые 3 мес. Кроме того, УЗИ почек проводится ежегодно, чтобы не пропустить развитие мочекаменной болезни на фоне медикаментозной терапии.
В литературе описаны альтернативные, но с недоказанной эффективностью методы лечения: препараты октреотида, цинакальцет, попытки радиочастотной абляции опухолевых очагов [81].
ОБСУЖДЕНИЕ
Онкогенная остеомаляция является редким заболеванием, в связи с чем долго остается нераспознанной вплоть до наступления инвалидизирующих осложнений. Однако заподозрить диагноз можно, если измерить уровень фосфора в крови и рассчитать индекс реабсорбции фосфатов в моче. Чтобы не пропустить фосфопеническую остеомаляцию, вовремя отличить ее от остеопороза, мы рекомендуем измерять уровень как кальция, так и фосфора в крови всем пациентам спатологическими переломами и диагностированным остеопорозом.
Поэтапная инструментальная диагностика в большинстве случаев эффективна. Применение РФП, использующих экспрессию рецепторов соматостатина, отражает явный прогресс в визуализации, но все еще существует значительный процент опухолей, которые не удается обнаружить. Возможно, визуализация улучшится благодаря более специфичным лигандам к SSTR2A и усовершенствованиям детекторов. Также актуальной разработкой является поиск новых эпитопов на поверхности опухоли, таких как, например, мутантный белок, продукт слияния генов FN-FGFR1.
Развитие хирургических методов не стоит на месте, и опухоли, которые раньше были «неоперабельными», становятся доступны для резекции. Результаты хирургического лечения улучшаются благодаря распространению среди хирургов крайне важных фактов о том, что: 1) широкие резекции необходимы и приводят к стойкому излечению; 2) предоперационная биопсия опухолей не рекомендуется и может приводить к рецидивам; 3) опыт и профессионализм хирурга играют решающую роль в исходе операции. Кроме того, совершенствуются и исследуются менее инвазивные методы (радиочастотная абляция, лучевая терапия, селективный забор крови с определением ФРФ23 и радиохирургия). Если результаты испытаний подтвердят, что абляционные процедуры являются лечебными, то их можно будет использовать активнее [2].
На данный момент консервативная терапия улучшает качество жизни, состояние костной и мышечной массы благодаря возмещению дефицитов фосфора и витамина D. Очевидно, что возможности медикаментозного лечения улучшатся. Несмотря на то что буросумаб не влияет на рост опухоли, он, вероятно, станет эффективным средством для борьбы с заболеванием, с лучшей переносимостью и наименьшим количеством побочных эффектов. Ингибитор pan-FGFR BGJ398/инфигратиниб возможен как вариант лечения, но из-за токсичности его применение ограничено. В настоящее время разрабатывается ряд препаратов-ингибиторов FGFR1, pan-FGFR, которые могут быть эффективны при ФРФ23-опухолях. Однако, чтобы доказать свою эффективность и безопасность, они должны иметь ограниченную токсичность, что маловероятно [2][82].
ЗАКЛЮЧЕНИЕ
Несмотря на огромные успехи, достигнутые в понимании патогенеза и терапии опухолевой остеомаляции, сохраняется необходимость в разработке более совершенных методов диагностики и лечения. Новые знания о молекулярных основах ФРФ23-опухолей вдохновляют на дальнейшие исследования. За последнее десятилетие в этой области достигнуты значительные успехи, и, видимо, их будет еще больше. Все это в совокупности дает надежду, что течение данного заболевания станет намного более благоприятным.
ДОПОЛНИТЕЛЬНАЯ ИНФОРМАЦИЯ
Источники финансирования. Государственное задание № АААА-А20-120011690202-4 «Разработка персонализированных подходов к диагностике и лечению пациентов с остеопорозом вследствие эндокринопатий на основании изучения молекулярно-генетических предикторов, применения инновационных методов диагностики и исследования патогенеза редких заболеваний скелета».
Конфликт интересов. Авторы декларируют отсутствие явных и потенциальных конфликтов интересов, связанных с публикацией настоящей статьи.
Участие авторов. Все авторы внесли значимый вклад в проведение исследования и подготовку статьи, прочли и одобрили финальную версию статьи перед публикацией.
Footnotes
The authors declare that there are no conflicts of interest present.
Contributor Information
С. А. Гронская, Email: sofyaants@gmail.com.
Ж. Е. Белая, Email: jannabelaya@gmail.com.
Г. А. Мельниченко, Email: teofrast2000@mail.ru.
References
- Folpe Andrew L., Fanburg-Smith Julie C., Billings Steven D., Bisceglia Michele, Bertoni Franco, Cho Justin Y., Econs Michael J., Inwards Carrie Y., Jan de Beur Suzanne M., Mentzel Thomas, Montgomery Elizabeth, Michal Michal, Miettinen Markku, Mills Stacey E., Reith John D., O'Connell John X., Rosenberg Andrew E., Rubin Brian P., Sweet Donald E., Vinh Tuyethoa N., Wold Lester E., Wehrli Brett M., White Kenneth E., Zaino Richard J., Weiss Sharon W.. Most Osteomalacia-associated Mesenchymal Tumors Are a Single Histopathologic Entity. The American Journal of Surgical Pathology. 2004 Jan;28(1):1–30. doi: 10.1097/00000478-200401000-00001. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
- Florenzano Pablo, Hartley Iris R., Jimenez Macarena, Roszko Kelly, Gafni Rachel I., Collins Michael T.. Tumor-Induced Osteomalacia. Calcified Tissue International. 2020 Jun;108(1):128–142. doi: 10.1007/s00223-020-00691-6. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
- Feng Juan, Jiang Yan, Wang Ou, Li Mei, Xing Xiaoping, Huo Li, Li Fang, Yu Wei, Zhong Ding-rong, Jin Jin, Liu Yong, Qi Fang, Lv Wei, Zhou Lian, Meng Xun-wu, Xia Wei-bo. The diagnostic dilemma of tumor induced osteomalacia: a retrospective analysis of 144 cases. Endocrine Journal. 2017 Apr;64(7):675–683. doi: 10.1507/endocrj.ej16-0587. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
- Kobayashi Hiroshi, Ito Nobuaki, Akiyama Toru, Okuma Tomotake, Kinoshita Yuka, Ikegami Masachika, Shinoda Yusuke, Fukumoto Seiji, Tanaka Sakae, Kawano Hirotaka. Prevalence and clinical outcomes of hip fractures and subchondral insufficiency fractures of the femoral head in patients with tumour-induced osteomalacia. International Orthopaedics. 2017 Aug;41(12):2597–2603. doi: 10.1007/s00264-017-3610-3. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
- Toro Luis, Barrientos Víctor, León Pablo, Rojas Macarena, Gonzalez Magdalena, González-Ibáñez Alvaro, Illanes Sebastián, Sugikawa Keigo, Abarzúa Néstor, Bascuñán César, Arcos Katherine, Fuentealba Carlos, Tong Ana María, Elorza Alvaro A., Pinto María Eugenia, Alzamora Rodrigo, Romero Carlos, Michea Luis. Erythropoietin induces bone marrow and plasma fibroblast growth factor 23 during acute kidney injury. Kidney International. 2018 Feb;93(5):1131–1141. doi: 10.1016/j.kint.2017.11.018. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
- Rabadi Seham, Udo Ikemesit, Leaf David E., Waikar Sushrut S., Christov Marta. Acute blood loss stimulates fibroblast growth factor 23 production. American Journal of Physiology-Renal Physiology. 2017 Sep;314(1):F132–F139. doi: 10.1152/ajprenal.00081.2017. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
- Shimada Takashi, Hasegawa Hisashi, Yamazaki Yuji, Muto Takanori, Hino Rieko, Takeuchi Yasuhiro, Fujita Toshiro, Nakahara Kazuhiko, Fukumoto Seiji, Yamashita Takeyoshi. FGF-23 Is a Potent Regulator of Vitamin D Metabolism and Phosphate Homeostasis. Journal of Bone and Mineral Research. 2006 Apr;19(3):429–435. doi: 10.1359/jbmr.0301264. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
- Novikov P.V. Rakhit i nasledstvennye rakhitopodobnye zabolevaniya u detei: diagnostika, lechenie, profilaktika: monografiya. — M.: Triada-Kh; 2006. 336 s.
- Eremkina Anna K., Mirnaya Svetlana S., Gorbacheva Anna M., Panevin Taras S., Voronkova Iya A., Mokrysheva N. G.. The case of oncogenic hypophosphatemic osteomalacia. Obesity and metabolism. 2020 Sep;17(2):220–227. doi: 10.14341/omet12472. [DOI] [Google Scholar]
- Gronskaia Sofya, Melnichenko Galina, Rozhinskaya Liudmila, Grebennikova Tatiana, Mamedova Elizaveta, Pigarova Ekaterina, Przhialkovskaya Elena, Dzeranova Larisa, Dedov Ivan, Fadeyev Valentin, Brandi Maria Luisa, Belaya Zhanna. A registry for patients with chronic hypoparathyroidism in Russian adults. Endocrine Connections. 2020 Jun;9(7):627–636. doi: 10.1530/ec-20-0219. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
- Lesnyak Olga, Gladkova Elena, Aleksandrov Nikolay, Belaya Zhanna, Belova Ksenia, Bezlyudnaya Natalya, Dobrovolskaya Olga, Dreval Alexandr, Ershova Olga, Grebennikova Tatiana, Kryukova Irina, Mazurenko Sergey, Priymak Diana, Rozhinskaya Ludmila, Samigullina Rusanna, Solodovnikov Alexander, Toroptsova Natalya. Treatment of high fracture risk patients in routine clinical practice. Archives of Osteoporosis. 2020 Nov;15(1) doi: 10.1007/s11657-020-00851-z. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
- Lewiecki E. Michael, Jackson Avery, Lake Anne F., Carey John J., Belaya Zhanna, Melnichenko Galina A., Rochelle Rachelle. Bone Health TeleECHO: a Force Multiplier to Improve the Care of Skeletal Diseases in Underserved Communities. Current Osteoporosis Reports. 2019 Nov;17(6):474–482. doi: 10.1007/s11914-019-00543-9. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
- Urakawa Itaru, Yamazaki Yuji, Shimada Takashi, Iijima Kousuke, Hasegawa Hisashi, Okawa Katsuya, Fujita Toshiro, Fukumoto Seiji, Yamashita Takeyoshi. Klotho converts canonical FGF receptor into a specific receptor for FGF23. Nature. 2006 Nov;444(7120):770–774. doi: 10.1038/nature05315. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
- Grebennikova Tatiana A., Umiarova Diliara Sh., Slashchuk Konstantin Y., Degtyarev Mikhail V., Rodionova Svetlana S., Rumyantsev Pavel O., Belaya Zhanna E.. Tumor-induced osteomalacia: a clinical case report. Osteoporosis and Bone Diseases. 2019 Sep;21(4):24–28. doi: 10.14341/osteo10264. [DOI] [Google Scholar]
- Tella Sri Harsha, Amalou Hayet, Wood Bradford J, Chang Richard, Chen Clara C, Robinson Cemre, Millwood Michelle, Guthrie Lori C, Xu Sheng, Levy Elliot, Krishnasamy Venkatesh, Gafni Rachel I, Collins Michael T. Multimodality Image-Guided Cryoablation for Inoperable Tumor-Induced Osteomalacia. Journal of Bone and Mineral Research. 2017 Jul;32(11):2248–2256. doi: 10.1002/jbmr.3219. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
- Li Xiang, Jiang Yan, Huo Li, Wu Huanwen, Liu Yong, Jin Jin, Yu Wei, Lv Wei, Zhou Lian, Xia Yu, Wang Ou, Li Mei, Xing Xiaoping, Chi Yue, Jiajue Ruizhi, Cui Lijia, Meng Xunwu, Xia Weibo. Nonremission and Recurrent Tumor‐Induced Osteomalacia: A Retrospective Study. Journal of Bone and Mineral Research. 2019 Oct;35(3):469–477. doi: 10.1002/jbmr.3903. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
- Mak Milena Perez, da Costa e Silva Verônica Torres, Martin Regina Matsunaga, Lerario Antonio Marcondes, Yu Luis, Hoff Paulo Marcelo Gehm, de Castro Junior Gilberto. Advanced prostate cancer as a cause of oncogenic osteomalacia: an underdiagnosed condition. Supportive Care in Cancer. 2012 May;20(9):2195–2197. doi: 10.1007/s00520-012-1474-z. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
- Savva Constantinos, Adhikaree Jason, Madhusudan Srinivasan, Chokkalingam Kamal. Oncogenic osteomalacia and metastatic breast cancer: a case report and review of the literature. Journal of Diabetes & Metabolic Disorders. 2019 Mar;18(1):267–272. doi: 10.1007/s40200-019-00398-y. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
- Lin Hung-An, Shih Shyang-Rong, Tseng Yu-Ting, Chen Chi-Hau, Chiu Wei-Yih, Hsu Chih-Yao, Tsai Keh-Sung. Ovarian Cancer-Related Hypophosphatemic Osteomalacia—A Case Report. The Journal of Clinical Endocrinology & Metabolism. 2014 Sep;99(12):4403–4407. doi: 10.1210/jc.2014-2120. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
- Reinert Rachel B, Bixby Dale, Koenig Ronald J. Fibroblast Growth Factor 23–Induced Hypophosphatemia in Acute Leukemia. Journal of the Endocrine Society. 2018 Apr;2(5):437–443. doi: 10.1210/js.2018-00010. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
- Chong William H, Molinolo Alfredo A, Chen Clara C, Collins Michael T. Tumor-induced osteomalacia. Endocrine-Related Cancer. 2011 Apr;18(3):R53–R77. doi: 10.1530/erc-11-0006. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
- Folpe Andrew L.. Phosphaturic mesenchymal tumors: A review and update. Seminars in Diagnostic Pathology. 2019 Jul;36(4):260–268. doi: 10.1053/j.semdp.2019.07.002. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
- White Kenneth E., Larsson Tobias E., Econs Michael J.. The Roles of Specific Genes Implicated as Circulating Factors Involved in Normal and Disordered Phosphate Homeostasis: Frizzled Related Protein-4, Matrix Extracellular Phosphoglycoprotein, and Fibroblast Growth Factor 23. Endocrine Reviews. 2006 May;27(3):221–241. doi: 10.1210/er.2005-0019. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
- Armelin Hugo A.. Pituitary Extracts and Steroid Hormones in the Control of 3T3 Cell Growth. Proceedings of the National Academy of Sciences. 2006 May;70(9):2702–2706. doi: 10.1073/pnas.70.9.2702. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
- Gospodarowicz Denis. Localisation of a fibroblast growth factor and its effect alone and with hydrocortisone on 3T3 cell growth. Nature. 2005 Aug;249(5453):123–127. doi: 10.1038/249123a0. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
- Hui Qi, Jin Zi, Li Xiaokun, Liu Changxiao, Wang Xiaojie. FGF Family: From Drug Development to Clinical Application. International Journal of Molecular Sciences. 2018 Jun;19(7):1875. doi: 10.3390/ijms19071875. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
- Ornitz David M, Itoh Nobuyuki. Genome Biology. 2002 Sep;2(3):reviews3005.1. doi: 10.1186/gb-2001-2-3-reviews3005. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
- Billings Paul C., Pacifici Maurizio. Interactions of signaling proteins, growth factors and other proteins with heparan sulfate: mechanisms and mysteries. Connective Tissue Research. 2015 Jun;56(4):272–280. doi: 10.3109/03008207.2015.1045066. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
- Kim Ji-Hee, Hwang Kyu-Hee, Park Kyu-Sang, Kong In Deok, Cha Seung-Kuy. Biological Role of Anti-aging Protein Klotho. Journal of Lifestyle Medicine. 2015 Oct;5(1):1–6. doi: 10.15280/jlm.2015.5.1.1. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
- Comps-Agrar Laëtitia, Dunshee Diana Ronai, Eaton Dan L., Sonoda Junichiro. Unliganded Fibroblast Growth Factor Receptor 1 Forms Density-independent Dimers. Journal of Biological Chemistry. 2015 Aug;290(40):24166–24177. doi: 10.1074/jbc.m115.681395. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
- Fedyanin M. Yu., Khmelkova D. N., Serebriyskaya T. S., Nikolskaya T. A., Tyulyandin S. A.. Перспективы терапевтического воздействия на сигнальный путь FGFR. Advances in molecular oncology. 2015 Aug;2(1):027. doi: 10.17650/2313-805x.2015.2.1.027-038. [DOI] [Google Scholar]
- Yamashita Tetsuo, Yoshioka Masazumi, Itoh Nobuyuki. Identification of a Novel Fibroblast Growth Factor, FGF-23, Preferentially Expressed in the Ventrolateral Thalamic Nucleus of the Brain. Biochemical and Biophysical Research Communications. 2002 Sep;277(2):494–498. doi: 10.1006/bbrc.2000.3696. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
- White Kenneth E., Evans Wayne E., O'Riordan Jeffery L.H., Speer Marcy C., Econs Michael J., Lorenz-Depiereux Bettina, Grabowski Monika, Meitinger Thomas, Strom Tim M.. Autosomal dominant hypophosphataemic rickets is associated with mutations in FGF23. Nature Genetics. 2002 Jul;26(3):345–348. doi: 10.1038/81664. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
- Shimada Takashi, Mizutani Satoru, Muto Takanori, Yoneya Takashi, Hino Rieko, Takeda Shu, Takeuchi Yasuhiro, Fujita Toshiro, Fukumoto Seiji, Yamashita Takeyoshi. Cloning and characterization of FGF23 as a causative factor of tumor-induced osteomalacia. Proceedings of the National Academy of Sciences. 2002 Jul;98(11):6500–6505. doi: 10.1073/pnas.101545198. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
- Simpson M.A., Hsu R., Keir L.S., Hao J., Sivapalan G., Ernst L.M., Zackai E.H., Al-Gazali L.I., Hulskamp G., Kingston H.M., Prescott T.E., Ion A., Patton M.A., Murday V., George A., Crosby A.H.. Mutations in FAM20C Are Associated with Lethal Osteosclerotic Bone Dysplasia (Raine Syndrome), Highlighting a Crucial Molecule in Bone Development. The American Journal of Human Genetics. 2007 Oct;81(5):906–912. doi: 10.1086/522240. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
- Raine J, Winter R M, Davey A, Tucker S M. Unknown syndrome: microcephaly, hypoplastic nose, exophthalmos, gum hyperplasia, cleft palate, low set ears, and osteosclerosis. Journal of Medical Genetics. 2008 Nov;26(12):786–788. doi: 10.1136/jmg.26.12.786. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
- Liu Shiguang, Zhou Jianping, Tang Wen, Jiang Xi, Rowe David W., Quarles L. Darryl. Pathogenic role of Fgf23 in Hyp mice. American Journal of Physiology-Endocrinology and Metabolism. 2006 Feb;291(1):E38–E49. doi: 10.1152/ajpendo.00008.2006. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
- Francis F., Hennig S., Korn B., Reinhardt R., de Jong P., Poustka A., Lehrach H., Rowe P.S.N, Goulding J.N., Summerfield T., Mountford R., Read A.P., Popowska E., Pronicka E., Davies K.E., O'Riordan J.L.H., Econs M.J., Nesbitt T., Drezner M.K., Oudet C., Pannetier S., Hanauer A., Strom T.M., Meindl A., Lorenz B., Cagnoli B., Mohnike K.L., Murken J., Meitinger T.. A gene (PEX) with homologies to endopeptidases is mutated in patients with X–linked hypophosphatemic rickets. Nature Genetics. 2004 Aug;11(2):130–136. doi: 10.1038/ng1095-130. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
- Lorenz-Depiereux Bettina, Schnabel Dirk, Tiosano Dov, Häusler Gabriele, Strom Tim M.. Loss-of-Function ENPP1 Mutations Cause Both Generalized Arterial Calcification of Infancy and Autosomal-Recessive Hypophosphatemic Rickets. The American Journal of Human Genetics. 2010 Feb;86(2):267–272. doi: 10.1016/j.ajhg.2010.01.006. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
- Feng Jian Q, Ward Leanne M, Liu Shiguang, Lu Yongbo, Xie Yixia, Yuan Baozhi, Yu Xijie, Rauch Frank, Davis Siobhan I, Zhang Shubin, Rios Hector, Drezner Marc K, Quarles L Darryl, Bonewald Lynda F, White Kenneth E. Loss of DMP1 causes rickets and osteomalacia and identifies a role for osteocytes in mineral metabolism. Nature Genetics. 2006 Oct;38(11):1310–1315. doi: 10.1038/ng1905. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
- Bergwitz Clemens, Jüppner Harald. Regulation of Phosphate Homeostasis by PTH, Vitamin D, and FGF23. Annual Review of Medicine. 2010 Jan;61(1):91–104. doi: 10.1146/annurev.med.051308.111339. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
- White Kenneth E., Evans Wayne E., O'Riordan Jeffery L.H., Speer Marcy C., Econs Michael J., Lorenz-Depiereux Bettina, Grabowski Monika, Meitinger Thomas, Strom Tim M.. Autosomal dominant hypophosphataemic rickets is associated with mutations in FGF23. Nature Genetics. 2002 Jul;26(3):345–348. doi: 10.1038/81664. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
- Edmonston Daniel, Wolf Myles. FGF23 at the crossroads of phosphate, iron economy and erythropoiesis. Nature Reviews Nephrology. 2019 Sep;16(1):7–19. doi: 10.1038/s41581-019-0189-5. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
- Takashi Y., Fukumoto S.. Phosphate-sensing and regulatory mechanism of FGF23 production. Journal of Endocrinological Investigation. 2020 Mar;43(7):877–883. doi: 10.1007/s40618-020-01205-9. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
- Park Moo Yong, Herrmann Sandra M., Saad Ahmed, Eirin Alfonso, Tang Hui, Lerman Amir, Textor Stephen C., Lerman Lilach O.. Biomarkers of Kidney Injury and Klotho in Patients with Atherosclerotic Renovascular Disease. Clinical Journal of the American Society of Nephrology. 2014 Dec;10(3):443–451. doi: 10.2215/cjn.07290714. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
- David Valentin, Dai Bing, Martin Aline, Huang Jinsong, Han Xiaobin, Quarles L. Darryl. Calcium Regulates FGF-23 Expression in Bone. Endocrinology. 2013 Oct;154(12):4469–4482. doi: 10.1210/en.2013-1627. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
- Lavi-Moshayoff Vardit, Wasserman Gilad, Meir Tomer, Silver Justin, Naveh-Many Tally. PTH increases FGF23 gene expression and mediates the high-FGF23 levels of experimental kidney failure: a bone parathyroid feedback loop. American Journal of Physiology-Renal Physiology. 2010 Aug;299(4):F882–F889. doi: 10.1152/ajprenal.00360.2010. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
- Meir Tomer, Durlacher Karina, Pan Zheng, Amir Gail, Richards William G., Silver Justin, Naveh-Many Tally. Parathyroid hormone activates the orphan nuclear receptor Nurr1 to induce FGF23 transcription. Kidney International. 2014 Jun;86(6):1106–1115. doi: 10.1038/ki.2014.215. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
- Xiao Liping, Esliger Alycia, Hurley Marja M. Nuclear fibroblast growth factor 2 (FGF2) isoforms inhibit bone marrow stromal cell mineralization through FGF23/FGFR/MAPK in vitro. Journal of Bone and Mineral Research. 2012 Jul;28(1):35–45. doi: 10.1002/jbmr.1721. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
- Smith Rosamund C., O’Bryan Linda M., Farrow Emily G., Summers Lelia J., Clinkenbeard Erica L., Roberts Jessica L., Cass Taryn A., Saha Joy, Broderick Carol, Ma Y. Linda, Zeng Qing Qiang, Kharitonenkov Alexei, Wilson Jonathan M., Guo Qianxu, Sun Haijun, Allen Matthew R., Burr David B., Breyer Matthew D., White Kenneth E.. Circulating αKlotho influences phosphate handling by controlling FGF23 production. Journal of Clinical Investigation. 2012 Nov;122(12):4710–4715. doi: 10.1172/jci64986. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
- Ornitz DM, Itoh N. The Fibroblast Growth Factor signaling pathway. WIREs Dev Biol. 2015;4(3):215-266. doi: https://doi.org/ 10.1002/wdev.176 [DOI] [PMC free article] [PubMed]
- Teven Chad M., Farina Evan M., Rivas Jane, Reid Russell R.. Fibroblast growth factor (FGF) signaling in development and skeletal diseases. Genes & Diseases. 2014 Oct;1(2):199–213. doi: 10.1016/j.gendis.2014.09.005. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
- Bernuy Jeanette, Gonzales Gustavo F.. Metabolismo mineral óseo en pacientes con enfermedad renal crónica: revisión sobre su fisiopatología y morbimortalidad. Revista Peruana de Medicina Experimental y Salud Pública. 2015 Dec;32(2):326. doi: 10.17843/rpmesp.2015.322.1628. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
- Shimada T, Kakitani M, Yamazaki Y, et al. Targeted ablation of Fgf23 demonstrates an essential physiological role of FGF23 in phosphate and vitamin D metabolism. J Clin Invest. 2004;113(4):561-568. doi: https://doi.org/ 10.1172/JCI19081 [DOI] [PMC free article] [PubMed]
- Rabadi Seham, Udo Ikemesit, Leaf David E., Waikar Sushrut S., Christov Marta. Acute blood loss stimulates fibroblast growth factor 23 production. American Journal of Physiology-Renal Physiology. 2017 Sep;314(1):F132–F139. doi: 10.1152/ajprenal.00081.2017. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
- Tohyama Osamu, Imura Akihiro, Iwano Akiko, Freund Jean-Noël, Henrissat Bernard, Fujimori Toshihiko, Nabeshima Yo-ichi. Klotho Is a Novel β-Glucuronidase Capable of Hydrolyzing Steroid β-Glucuronides. Journal of Biological Chemistry. 2004 Mar;279(11):9777–9784. doi: 10.1074/jbc.m312392200. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
- Ho Bryan B, Bergwitz Clemens. FGF23 signalling and physiology. Journal of Molecular Endocrinology. 2020 Dec;66(2):R23–R32. doi: 10.1530/jme-20-0178. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
- Rodelo-Haad Cristian, Santamaria Rafael, Muñoz-Castañeda Juan R., Pendón-Ruiz de Mier M. Victoria, Martin-Malo Alejandro, Rodriguez Mariano. FGF23, Biomarker or Target? Toxins. 2019 Mar;11(3):175. doi: 10.3390/toxins11030175. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
- Prader A, Illig R, Uehlinger E, Stalder G. [Rickets following bone tumor]. Helv Paediatr Acta. 1959;14:554-565. [PubMed]
- Fernández-Cooke Elisa, Cruz-Rojo Jaime, Gallego Carmen, Romance Ana Isabel, Mosqueda-Peña Rocio, Almaden Yolanda, Sánchez del Pozo Jaime. Tumor-Induced Rickets in a Child With a Central Giant Cell Granuloma: A Case Report. Pediatrics. 2015 May;135(6):e1518–e1523. doi: 10.1542/peds.2014-2218. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
- Jung Gu-Hee, Kim Jae-Do, Cho Yool, Chung So-Hak, Lee Jung-Hyun, Sohn Kyung-Rak. A 9-month-old phosphaturic mesenchymal tumor mimicking the intractable rickets. Journal of Pediatric Orthopaedics B. 2011 Mar;19(1):127–132. doi: 10.1097/bpb.0b013e32832f59cb. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
- Chong William H, Andreopoulou Panagiota, Chen Clara C, Reynolds James, Guthrie Lori, Kelly Marilyn, Gafni Rachel I, Bhattacharyya Nisan, Boyce Alison M, El-Maouche Diala, Crespo Diana Ovejero, Sherry Richard, Chang Richard, Wodajo Felasfa M, Kletter Gad B, Dwyer Andrew, Collins Michael T. Tumor localization and biochemical response to cure in tumor-induced osteomalacia. Journal of Bone and Mineral Research. 2013 Jan;28(6):1386–1398. doi: 10.1002/jbmr.1881. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
- Mamedova Elizaveta, Kolodkina Anna, Vasilyev Evgeny V., Petrov Vasiliy, Belaya Zhanna, Tiulpakov Anatoly. Successful Use of Denosumab for Life-Threatening Hypercalcemia in a Pediatric Patient with Primary Hyperparathyroidism. Hormone Research in Paediatrics. 2020 Sep;93(4):272–278. doi: 10.1159/000510625. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
- Crossen Stephanie S., Zambrano Eduardo, Newman Beverley, Bernstein Jonathan A., Messner Anna H., Bachrach Laura K., Twist Clare J.. Tumor-induced Osteomalacia in a 3-Year-Old With Unresectable Central Giant Cell Lesions. Journal of Pediatric Hematology/Oncology. 2016 Nov;39(1):e21–e24. doi: 10.1097/mph.0000000000000686. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
- Sundaram M., McCarthy E. F.. Oncogenic osteomalacia. Skeletal Radiology. 2002 Oct;29(3):117–124. doi: 10.1007/s002560050581. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
- Mamedova Elizaveta, Dimitrova Diana, Przhiyalkovskaya Elena, Buryakina Svetlana, Vasilyev Evgeny, Tiulpakov Anatoly, Belaya Zhanna. Non-lethal Raine Syndrome in a Middle-Aged Woman Caused by a Novel FAM20C Mutation. Calcified Tissue International. 2019 Aug;105(5):567–572. doi: 10.1007/s00223-019-00599-w. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
- Grebennikova T A, Belaya Zh E, Tsoriev T T, Rozhinskaya L Ya, Melnichenko G A. THE ENDOCRINE FUNCTION OF THE BONE TISSUE. Osteoporosis and Bone Diseases. 2018 Jan;18(1):28–37. doi: 10.14341/osteo2015128-37. [DOI] [Google Scholar]
- Belaya Z., Golounina O., Nikitin A., Tarbaeva N., Pigarova E., Mamedova E., Vorontsova M., Shafieva I., Demina I., Van Hul W.. Multiple bilateral hip fractures in a patient with dyskeratosis congenita caused by a novel mutation in the PARN gene. Osteoporosis International. 2020 Nov;32(6):1227–1231. doi: 10.1007/s00198-020-05758-6. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
- Yukina Marina, Nuralieva Nurana, Sorkina Ekaterina, Troshina Ekaterina, Tiulpakov Anatoly, Belaya Zhanna, Melnichenko Galina. Atypical progeroid syndrome (p.E262K LMNA mutation): a rare cause of short stature and osteoporosis. Endocrinology, Diabetes & Metabolism Case Reports. 2021 Apr;2021 doi: 10.1530/edm-20-0188. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
- El-Maouche Diala, Sadowski Samira M., Papadakis Georgios Z., Guthrie Lori, Cottle-Delisle Candice, Merkel Roxanne, Millo Corina, Chen Clara C., Kebebew Electron, Collins Michael T.. 68Ga-DOTATATE for Tumor Localization in Tumor-Induced Osteomalacia. The Journal of Clinical Endocrinology & Metabolism. 2016 Aug;101(10):3575–3581. doi: 10.1210/jc.2016-2052. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
- Ito N., Shimizu Y., Suzuki H., Saito T., Okamoto T., Hori M., Akahane M., Fukumoto S., Fujita T.. Clinical utility of systemic venous sampling of FGF23 for identifying tumours responsible for tumour-induced osteomalacia. Journal of Internal Medicine. 2010 Jul;268(4):390–394. doi: 10.1111/j.1365-2796.2010.02262.x. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
- Andreopoulou Panagiota, Dumitrescu Claudia E, Kelly Marilyn H, Brillante Beth A, Cutler Peck Carolee M, Wodajo Felasfa M, Chang Richard, Collins Michael T. Selective venous catheterization for the localization of phosphaturic mesenchymal tumors. Journal of Bone and Mineral Research. 2010 Dec;26(6):1295–1302. doi: 10.1002/jbmr.316. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
- Wang Hai, Zhong Dingrong, Liu Yong, Jiang Yan, Qiu Guixing, Weng Xisheng, Xing Xiaoping, Li Mei, Meng Xunwu, Li Fang, Zhu Zhaohui, Yu Wei, Xia Weibo, Jin Jin. Surgical Treatments of Tumor-Induced Osteomalacia Lesions in Long Bones. Journal of Bone and Joint Surgery. 2015 Jul;97(13):1084–1094. doi: 10.2106/jbjs.n.01299. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
- Lee Jen-Chieh, Su Sheng-Yao, Changou Chun A, Yang Rong-Sen, Tsai Keh-Sung, Collins Michael T, Orwoll Eric S, Lin Chung-Yen, Chen Shu-Hwa, Shih Shyang-Rong, Lee Cheng-Han, Oda Yoshinao, Billings Steven D, Li Chien-Feng, Nielsen G Petur, Konishi Eiichi, Petersson Fredrik, Carpenter Thomas O, Sittampalam Kesavan, Huang Hsuan-Ying, Folpe Andrew L. Characterization of FN1–FGFR1 and novel FN1–FGF1 fusion genes in a large series of phosphaturic mesenchymal tumors. Modern Pathology. 2016 Jul;29(11):1335–1346. doi: 10.1038/modpathol.2016.137. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
- Carpenter Thomas O, Imel Erik A, Holm Ingrid A, Jan de Beur Suzanne M, Insogna Karl L. A clinician's guide to X-linked hypophosphatemia. Journal of Bone and Mineral Research. 2011 May;26(7):1381–1388. doi: 10.1002/jbmr.340. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
- Jan De Beur Suzanne, Miller Paul, Weber Thomas, Peacock Munro, Insogna Karl, Kumar Rajiv, Luca Diana, Theodore-Oklota Christina, Lampl Kathy, San Martin Javier, Carpenter Thomas. OR13-1 Burosumab Improves the Biochemical, Skeletal, and Clinical Symptoms of Tumor-Induced Osteomalacia Syndrome. Journal of the Endocrine Society. 2019 May;3(Supplement_1) doi: 10.1210/js.2019-or13-1. [DOI] [Google Scholar]
- Wöhrle Simon, Bonny Olivier, Beluch Noemie, Gaulis Swann, Stamm Christelle, Scheibler Marcel, Müller Matthias, Kinzel Bernd, Thuery Anne, Brueggen Joseph, Hynes Nancy E, Sellers William R, Hofmann Francesco, Graus-Porta Diana. FGF receptors control vitamin D and phosphate homeostasis by mediating renal FGF-23 signaling and regulating FGF-23 expression in bone. Journal of Bone and Mineral Research. 2011 Aug;26(10):2486–2497. doi: 10.1002/jbmr.478. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
- Wöhrle Simon, Henninger Christine, Bonny Olivier, Thuery Anne, Beluch Noemie, Hynes Nancy E, Guagnano Vito, Sellers William R, Hofmann Francesco, Kneissel Michaela, Graus Porta Diana. Pharmacological inhibition of fibroblast growth factor (FGF) receptor signaling ameliorates FGF23-mediated hypophosphatemic rickets. Journal of Bone and Mineral Research. 2012 Nov;28(4):899–911. doi: 10.1002/jbmr.1810. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
- Fumarola Claudia, Bozza Nicole, Castelli Riccardo, Ferlenghi Francesca, Marseglia Giuseppe, Lodola Alessio, Bonelli Mara, La Monica Silvia, Cretella Daniele, Alfieri Roberta, Minari Roberta, Galetti Maricla, Tiseo Marcello, Ardizzoni Andrea, Mor Marco, Petronini Pier Giorgio. Expanding the Arsenal of FGFR Inhibitors: A Novel Chloroacetamide Derivative as a New Irreversible Agent With Anti-proliferative Activity Against FGFR1-Amplified Lung Cancer Cell Lines. Frontiers in Oncology. 2019 Mar;9 doi: 10.3389/fonc.2019.00179. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
- Collins MT. Striking response of tumor-induced osteomalacia to the FGFR inhibitor NVP-BGJ398. In: American Society of Bone and Mineral Research annual meeting. Seattle: WA; 2015.
- Mishra Sunil Kumar, Kuchay Mohammad Shafi, Sen Ishita Barat, Garg Arpit, Baijal Sanjay Saran, Mithal Ambrish. Successful Management Of Tumor‐Induced Osteomalacia with Radiofrequency Ablation: A Case Series. JBMR Plus. 2019 Jan;3(7) doi: 10.1002/jbm4.10178. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
- Payne R B. Renal Tubular Reabsorption of Phosphate (TmP/GFR): Indications and Interpretation. Annals of Clinical Biochemistry: International Journal of Laboratory Medicine. 2014 Feb;35(2):201–206. doi: 10.1177/000456329803500203. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
