Abstract
目的
研究唑来膦酸(ZOL)对破骨细胞黏附以及整合素αv和β3基因表达的影响。
方法
体外诱导小鼠RAW264.7细胞向破骨细胞分化,通过抗酒石酸酸性磷酸酶(TRAP)染色及牙本质吸收陷窝检测以评价破骨细胞生成情况。将细胞分为对照组及ZOL处理组两组,后者用1×10−6 mol·L−1的ZOL处理2 d,用结晶紫染色法检测细胞黏附情况,用实时荧光定量聚合酶链反应、Western blot和免疫荧光化学法检测整合素αv、β3 mRNA及蛋白表达水平。
结果
TRAP染色及牙本质吸收陷窝检测提示有多核破骨细胞生成。ZOL处理组破骨细胞黏附能力较对照组显著降低(P<0.01)。ZOL处理组整合素αv、β3 mRNA水平分别为0.66±0.05、0.59±0.08,显著低于对照组的1.01±0.01和1.01±0.02(P<0.01);蛋白表达水平分别为31 934.84±112.91、18 812.79±194.13, 较对照组(52 517.81±211.72、31 441.93±456.87)分别下降了39.19%和40.17%(P<0.01)。免疫荧光化学检测显示,ZOL处理使整合素αv、β3荧光强度(9.491±0.748、4.744±0.759)较对照组(15.159±1.143、11.418±1.095)分别降低了37.39% 和58.45%(P<0.01)。
结论
ZOL可抑制破骨细胞黏附并下调整合素αv、β3表达;ZOL的上述作用可能参与对破骨细胞性骨吸收的抑制。
Keywords: 唑来膦酸, 破骨细胞, 细胞黏附, 整合素αv和β3, 封闭区
Abstract
Objective
To explore the effect of zoledronate (ZOL) on the osteoclast adhesion and expression of integrin αv and β3 in vitro.
Methods
Mice RAW264.7 cells were used for osteoclast differentiation in vitro, and osteoclastogenesis was examined by tartrate-resistant acid phosphatase (TRAP) staining and dentin resorption lacunae examination. The cells were then divided into 2 groups, the control group and ZOL treatment group (treated with 1×10−6 mol·L−1 ZOL for 2 d). The adhesion ability of osteoclasts and mRNA and the protein expressions of integrin αv and β3 were examined by crystal violet staining, real-time fluorescence quantitative polymerase chain reaction, Western blot analysis, and immunofluorescent chemistry.
Results
TRAP staining and dentin resorption lacunae examination revealed the formation of multi-nuclear osteoclasts. ZOL treatment significantly decreased the adhesion ability of osteoclasts (P<0.01). In the ZOL-treated group, the mRNA levels of integrin αv and β3 were 0.66±0.05 and 0.59±0.08, respectively. In the control group, the mRNA levels of integrin αv and β3 were 1.01±0.01 and 1.01±0.02, respectively; these values were higher than those in the ZOL-treated group (P<0.01). The protein level of integrin αv and β3 in the ZOL-treated group (31 934.84±112.91 and 18 812.79±194.13) was downregulated by approximately 39.19% and 40.17%, respectively, compared with those in the control group (52 517.81±211.72 and 31 441.93±456.87) (P<0.01). Immunofluorescent examination showed that the fluorescent intensities of integrin αv and β3 in the ZOL-treated group (9.491±0.748 and 4.744±0.759) were also significantly decreased compared with those in the control group (15.159±1.143 and 11.418±1.095) (P<0.01).
Conclusion
ZOL significantly inhibits osteoclast adhesion and downregulates integrin αv and β3 expression, thus contributing to the ZOL-induced inhibition of osteoclast-mediated bone resorption.
Keywords: zoledronate, osteoclast, cell adhesion, integrin αv and β3, sealing zone
破骨细胞介导的骨吸收参与了骨质疏松、Paget's病、多发性骨髓瘤等多种骨代谢疾病的病理过程[1]。整合素αv和β3在破骨细胞表面高表达,可以介导破骨细胞与骨基质的黏附,并在破骨细胞封闭区形成和维持骨吸收微环境中起重要作用[2]。唑来膦酸(zoledronate,ZOL)是目前治疗骨过度吸收性疾病的代表药物[3],主要通过抑制破骨细胞性骨吸收,降低骨改建来发挥作用,但其确切的分子机制尚不十分明确。本研究通过在破骨细胞分化过程中应用ZOL,检测ZOL对细胞黏附能力及整合素αv和β3基因表达的影响,以探讨ZOL抑制破骨细胞性骨吸收的分子机制。
1. 材料和方法
1.1. 实验材料
小鼠单核巨噬细胞株RAW264.7购自北京军事医学科学院;核因子κB受体活化因子配体(receptor activator of nuclear factor kappa B ligand,RANKL)(Biovision公司,美国);RPMI1640培养基、胎牛血清(Hyclone公司,美国);抗酒石酸酸性磷酸酶(tartrate-resistant acid phosphatase,TRAP)染色试剂盒(Sigma公司,美国);整合素αv、β3兔抗鼠多克隆抗体(Biolegend公司,美国)。
1.2. 破骨细胞诱导及实验分组
RAW264.7细胞株用50 ng·mL−1 RANKL诱导,使之向破骨细胞分化;诱导5 d后进行TRAP染色及牙本质磨片吸收陷窝检测[4],评价破骨细胞生成及骨吸收功能情况。
实验分组:细胞分为对照组和ZOL处理组,均用50 ng·mL−1 RANKL诱导5 d;其中ZOL组在RANKL诱导3 d后用1×10−6 mol·L−1的ZOL处理2 d。5 d后收获细胞,进行相关检测。
1.3. 破骨细胞黏附功能检测
将两组细胞按每孔5×103个细胞的密度接种于明胶包被的96孔板中,每组3孔,37 °C孵育2 h;然后用4%多聚甲醛固定10 min,PBS洗3次;再用2%结晶紫染液染色15 min,PBS洗3次后过夜;上酶标仪,595 nm波长处测每孔的光密度(optical density,OD)值。OD值越高,提示结晶紫染色越强,细胞黏附数目越多。
1.4. 整合素αv、β3基因和蛋白表达检测
免疫荧光化学检测:培养5 d收获细胞,兔抗鼠整合素αv、β3多克隆抗体4 °C孵育过夜,以异硫氰酸荧光素(fluorescein isothiocyanate,FITC)标记的羊抗兔IgG为二抗,37 °C杂交2 h;碘化丙啶(propidium iodide,PI)复染,封片;激光扫描共聚焦显微镜(laser scanning confocal microscope,LSCM)观察。实时荧光定量聚合酶链反应(realtime fluorescence quantitative polymerase chain reaction,real-time PCR)检测mRNA表达:Trizol提取总RNA,逆转录合成cDNA;在Rotor-Gene 3000型荧光定量聚合酶链反应仪上进行实时检测,所用引物见表1。反应条件:95 °C,15 s;60 °C,40 s;72 °C,15 s;共40个循环。实验结果用Rotor-Gene软件进行分析。
表 1. real-time PCR所用目的基因及引物.
Tab 1 Primers of genes used in real-time PCR
基因 | GenBank号 | 引物序列 | 产物长度/bp |
整合素αv | NM-008402.2 | 上游:5′-AGGCTGGAACTCAACTGCCT-3′ | 364 |
下游:5′-TTGGCCCGTCAATGTCGTAA-3′ | |||
整合素β3 | NM-016780.2 | 上游:5′-GCCTTCGTGGACAAGCCTGT-3′ | 390 |
下游:5′-GGACAATGCCTGCCAGTCTT-3′ | |||
GAPDH | NM-008084.2 | 上游:5′-AATGTGTCCGTCGTGGATCT-3′ | 263 |
下游:5′-TCCACCACCCTGTTGCTGTA-3′ |
Western blot检测蛋白质表达:提取细胞总蛋白,煮沸变性5 min,凝胶电泳并转膜,5%牛血清白蛋白室温封闭2 h,兔抗鼠整合素αv、β3多克隆一抗孵育过夜;二抗孵育2 h,四唑硝基蓝(5-bromo-4-chloro-3-indolyl phosphate/tetranitroblue tetrazolium chloride,BCIP/NBT)显色1 min;以甘油醛-3-磷酸脱氢酶(glyceraldehyde-3-phosphate dehydrogenase,GAPDH)作为对照;用Image J分析软件检测膜上每个条带的相对灰度值。上述检测每组均检测3个样本。
1.5. 统计学分析
原始数据用Excel 2003建库,应用SPSS 13.0统计学软件对数据进行两独立样本t检验,检验水准为双侧α=0.05。
2. 结果
2.1. 破骨细胞生成及骨吸收功能检测
RAW264.7细胞经RANKL诱导5 d后,可见许多体积较大的细胞,呈圆形、梭形、椭圆形或不规则状;TRAP染色呈阳性,细胞内含有多个细胞核,一般为5~7个(图1A)。经扫描电子显微镜(scanning electron microscope,SEM)观察,这些细胞在牙本质磨片上可形成吸收陷窝(图1B),直径20~40 µm。上述结果表明,RAW264.7细胞被成功诱导成为具有骨吸收功能的破骨细胞。
图 1. 破骨细胞TRAP染色及牙本质磨片吸收陷窝.
Fig 1 Detection of osteoclasts by TRAP staining and dentin resorptive lacunae examination
A:TRAP × 200;B:SEM × 500。
2.2. ZOL对破骨细胞黏附功能的影响
对照组和ZOL处理组的OD值分别为0.231±0.018和0.152±0.010,ZOL组显著低于对照组(P<0.01);提示ZOL可以抑制破骨细胞的黏附功能。
2.3. 免疫荧光化学检测破骨细胞整合素αv、β3蛋白表达
整合素αv、β3的免疫荧光化学染色结果见图2、3。经LSCM观察,整合素αv、β3在两组破骨细胞(多核)及其前体细胞质内均呈阳性表达(绿色荧光),其中整合素β3还部分表达于细胞核(图2、3);两组比较,整合素αv、β3在对照组细胞中表达较强,而在ZOL组中表达较弱。应用Photoshop CS4对荧光灰度值进行测量,对照组αv、β3荧光强度分别为15.159±1.143和11.418±1.095,均显著高于ZOL组的9.491±0.748和4.744±0.759(P<0.01);ZOL处理使αv、β3荧光强度分别降低了37.39%和58.45%。该结果提示,ZOL可显著抑制整合素αv、β3蛋白表达水平。
图 2. 免疫荧光化学法检测破骨细胞中整合素αV的表达 LSCM × 400.
Fig 2 Detection of integrin αv expression within osteoclasts by immunofluorescent chemistry LSCM × 400
上:对照组;下:ZOL处理组;A1、B1:FITC标记整合素αv蛋白(绿色);A2、B2:PI标记细胞核(红色);A3、B3:融合图像;A4、B4:无荧光视野。
图 3. 免疫荧光化学法检测破骨细胞中整合素β3的表达 LSCM × 400.
Fig 3 Detection of integrin β3 expression within osteoclasts by immunofluorescent chemistry LSCM × 400
上:对照组;下:ZOL处理组;A1、B1:FITC标记整合素β3蛋白(绿色);A2、B2:PI标记细胞核(红色);A3、B3:融合图像;A4、B4:无荧光视野。
2.4. real-time PCR检测整合素αv、β3 mRNA表达
ZOL处理组整合素αv、β3 mRNA的表达水平分别为0.66±0.05、0.59±0.08,明显低于对照组的1.01±0.01和1.01±0.02(P<0.01);提示ZOL可显著抑制破骨细胞中整合素αv、β3 mRNA的表达水平。
2.5. Western-blot检测整合素αv、β3蛋白表达
对照组和ZOL处理组整合素αv、β3蛋白表达见图4。ZOL组整合素αv、β3蛋白灰度值分别为31 934.84±112.91和18 812.79±194.13,均低于对照组的52 517.81±211.72和31 441.93±456.87,差异有统计学意义(P<0.01)。与对照组比较,ZOL组整合素αv、β3分别下降了39.19%和40.17%。该结果提示ZOL能够显著抑制整合素αv、β3的蛋白表达。
图 4. Western blot检测整合素αv、β3蛋白的表达.
Fig 4 Detection of protein level of integrin αv and β3 by Western blot
从上到下依次为整合素αv、β3和GAPDH。
3. 讨论
整合素是细胞表面重要的黏附受体,是由α、β两个亚基组成的异源二聚体,参与细胞与基质、细胞与细胞间的接触[2]。破骨细胞表面主要表达整合素αv和β3,通过与骨桥蛋白、骨涎蛋白、玻连蛋白等骨基质蛋白内的精氨酸-甘氨酸-天冬氨酸(Arg-Gly-Asp,RGD)序列结合,调控破骨细胞的黏附、迁移、封闭区形成及骨吸收[5]。
研究[2],[6]表明,许多信号分子参与了整合素αv、β3介导的信号调控。整合素αv、β3与骨基质蛋白中RGD序列结合,从而使细胞质与其结合的c-Src活化,并与适配蛋白脾酪氨酸激酶(spleen tyrosine kinase,Syk)形成复合体。Syk通过SH2功能域与破骨细胞表面DNAX活化蛋白12(DNAX-activating protein 12,Dap12)的免疫酪氨酸活化基序(immunoreceptor tyrosine-based activation motif,ITAM)功能域结合。活化的c-Src使Syk磷酸化,进而激活下游信号分子SLP-76(含有SH2结构域的相对分子质量为7.6×104的白细胞蛋白)和鸟嘌呤转换因子Vav3,使无活性的Rac转变成活性Rac,从与二磷酸鸟苷(guanosine diphosphate,GDP)结合转变成与三磷酸鸟苷(guanosine triphosphate,GTP)结合;从而诱发破骨细胞的细胞骨架重排形成肌动蛋白环。整合素αv、β3分布于肌动蛋白环的内侧和外侧,形成封闭区,为骨吸收提供所需的微环境。
整合素αv、β3功能改变会对破骨细胞黏附、细胞骨架重排及封闭区形成产生重要影响。整合素β3基因敲除小鼠表现出明显的骨量增加,这与破骨细胞介导的骨吸收障碍有关[7]。即使在RANKL和巨噬细胞集落刺激因子(macrophage colony stimulating factors,M-CSF)作用下,整合素β3-/-破骨细胞也不能形成肌动蛋白环,骨吸收活性明显下降[8];整合素β3点突变会使破骨细胞迁移能力显著降低[9]。双膦酸盐作为破骨细胞的有效抑制药物,能否通过影响整合素αv、β3来发挥对破骨细胞的抑制作用,目前尚不清楚。在本研究中,应用RANKL诱导RAW263.7细胞向破骨细胞分化,同时用1×10−6 mol·L−1 ZOL处理;发现ZOL处理组整合素αv、β3 mRNA水平较对照组明显下降,蛋白水平也分别下降了39.19%和40.17%;免疫荧光检测也表明,ZOL组整合素αv、β3荧光强度显著降低,分别下降了37.39%和58.45%。上述结果提示,ZOL可显著抑制破骨细胞中整合素αv、β3基因表达,从而影响αv、β3在破骨细胞黏附、细胞骨架重排及骨吸收中的作用。结晶紫染色实验进一步表明,ZOL处理组OD值显著低于对照组,证实了ZOL对破骨细胞黏附的抑制作用。国外学者[10]应用人成骨细胞作为研究对象,发现ZOL同样可抑制细胞黏附及整合素αv、β3基因的表达。研究[11]发现,接受双膦酸盐长期治疗的患者体内存在巨大的破骨细胞,不能贴附于骨组织表面,这也可能与双膦酸盐对破骨细胞表面整合素αv、β3的抑制有关。
研究整合素在破骨细胞功能中的作用有极其重要的价值。破骨细胞在骨质疏松、多发性骨髓瘤、骨转移瘤等多种病理性骨吸收中发挥着重要作用[1];而其进行骨吸收的前提是通过整合素αv、β3与骨基质表面发生黏附,使细胞骨架重排,形成封闭区和皱褶缘,为骨吸收提供局部微环境[2],[5]–[6]。临床前研究表明,整合素αv、β3靶向药物,如多肽(S247、ATN-161、cilengitide)及非肽类小分子(PSK1404),均可有效抑制骨吸收及肿瘤骨转移[12]–[13];从而为以整合素αv、β3为靶向进行药物干预,抑制上述病理状态下的骨吸收开辟了新途径。
本研究表明,在体外ZOL可有效地抑制破骨细胞整合素αv、β3的基因表达,降低细胞的黏附能力;ZOL的上述作用可能与其对破骨细胞性骨吸收的抑制有关。
Funding Statement
[基金项目] 国家自然科学基金资助项目(81270965,81101448);河北省自然科学基金资助项目(C2011401044)
References
- 1.Edwards JR, Weivoda MM. Osteoclasts: malefactors of disease and targets for treatment[J] Discov Med. 2012;13(70):201–210. [PubMed] [Google Scholar]
- 2.Izawa T, Zou W, Chappel JC, et al. c-Src links a RANK/αvβ3 integrin complex to the osteoclast cytoskeleton[J] Mol Cell Biol. 2012;32(14):2943–2953. doi: 10.1128/MCB.00077-12. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
- 3.Piper PK, Jr, Gruntmanis U. Management of osteoporosis in the aging male: focus on zoledronic acid[J] Clin Interv Aging. 2009;4:289–303. doi: 10.2147/cia.s4295. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
- 4.刘 强, 董 伟, 戚 孟春, et al. 阿仑膦酸盐对破骨细胞生成的抑制及钙离子激动剂的拮抗效应[J] 实用口腔医学杂志. 2012;28(2):182–186. [Google Scholar]
- 5.Szabo AM, Howell NR, Pellegrini P, et al. Development and validation of competition binding assays for affinity to the extracellular matrix receptors, αvβ3 and αIIbβ3 integrin[J] Anal Biochem. 2012;423(1):70–77. doi: 10.1016/j.ab.2011.12.046. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
- 6.Teitelbaum SL. The osteoclast and its unique cytoskeleton[J] Ann N Y Acad Sci. 2011;1240:14–17. doi: 10.1111/j.1749-6632.2011.06283.x. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
- 7.McHugh KP, Hodivala-Dilke K, Zheng MH, et al. Mice lacking beta 3 integrins are osteosclerotic because of dys-functional osteoclasts[J] J Clin Invest. 2000;105(4):433–440. doi: 10.1172/JCI8905. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
- 8.Feng X, Novack DV, Faccio R, et al. A Glanzmann's mutation in beta 3 integrin specifically impairs osteoclast function[J] J Clin Invest. 2001;107(9):1137–1144. doi: 10.1172/JCI12040. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
- 9.Faccio R, Novack DV, Zallone A, et al. Dynamic changes in the osteoclast cytoskeleton in response to growth factors and cell attachment are controlled by beta 3 integrin[J] J Cell Biol. 2003;162(3):499–509. doi: 10.1083/jcb.200212082. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
- 10.Koch FP, Wunsch A, Merkel C, et al. The influence of bisphosphonates on human osteoblast migration and integrin avb3/tenascin C gene expression in vitro[J] Head Face Med. 2011;7(1):4. doi: 10.1186/1746-160X-7-4. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
- 11.Weinstein RS, Roberson PK, Manolagas SC. Giant osteoclast formation and long-term oral bisphosphonate therapy[J] N Engl J Med. 2009;360(1):53–62. doi: 10.1056/NEJMoa0802633. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
- 12.Clézardin P. Therapeutic targets for bone metastases in breast cancer[J] Breast Cancer Res. 2011;13(2):207. doi: 10.1186/bcr2835. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
- 13.Clëzardin P. Integrins in bone metastasis formation and potential therapeutic implications[J] Curr Cancer Drug Targets. 2009;9(7):801–806. doi: 10.2174/156800909789760348. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]