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. 2014 Dec;32(6):547–551. [Article in Chinese] doi: 10.7518/hxkq.2014.06.004

唑来膦酸对破骨细胞黏附及整合素αv、β3基因表达的影响

Effect of zoledronate on the osteoclast adhesion and gene expression of integrin αv and β3

林 珏杉 1, 董 伟 1, 徐 纯峰 1, 孙 红 2, 冯 晓洁 1, 戚 孟春 1,
Editor: 石 冰
PMCID: PMC7030707  PMID: 25665417

Abstract

目的

研究唑来膦酸(ZOL)对破骨细胞黏附以及整合素αv和β3基因表达的影响。

方法

体外诱导小鼠RAW264.7细胞向破骨细胞分化,通过抗酒石酸酸性磷酸酶(TRAP)染色及牙本质吸收陷窝检测以评价破骨细胞生成情况。将细胞分为对照组及ZOL处理组两组,后者用1×10−6 mol·L−1的ZOL处理2 d,用结晶紫染色法检测细胞黏附情况,用实时荧光定量聚合酶链反应、Western blot和免疫荧光化学法检测整合素αv、β3 mRNA及蛋白表达水平。

结果

TRAP染色及牙本质吸收陷窝检测提示有多核破骨细胞生成。ZOL处理组破骨细胞黏附能力较对照组显著降低(P<0.01)。ZOL处理组整合素αv、β3 mRNA水平分别为0.66±0.05、0.59±0.08,显著低于对照组的1.01±0.01和1.01±0.02(P<0.01);蛋白表达水平分别为31 934.84±112.91、18 812.79±194.13, 较对照组(52 517.81±211.72、31 441.93±456.87)分别下降了39.19%和40.17%(P<0.01)。免疫荧光化学检测显示,ZOL处理使整合素αv、β3荧光强度(9.491±0.748、4.744±0.759)较对照组(15.159±1.143、11.418±1.095)分别降低了37.39% 和58.45%(P<0.01)。

结论

ZOL可抑制破骨细胞黏附并下调整合素αv、β3表达;ZOL的上述作用可能参与对破骨细胞性骨吸收的抑制。

Keywords: 唑来膦酸, 破骨细胞, 细胞黏附, 整合素αv和β3, 封闭区


破骨细胞介导的骨吸收参与了骨质疏松、Paget's病、多发性骨髓瘤等多种骨代谢疾病的病理过程[1]。整合素αv和β3在破骨细胞表面高表达,可以介导破骨细胞与骨基质的黏附,并在破骨细胞封闭区形成和维持骨吸收微环境中起重要作用[2]。唑来膦酸(zoledronate,ZOL)是目前治疗骨过度吸收性疾病的代表药物[3],主要通过抑制破骨细胞性骨吸收,降低骨改建来发挥作用,但其确切的分子机制尚不十分明确。本研究通过在破骨细胞分化过程中应用ZOL,检测ZOL对细胞黏附能力及整合素αv和β3基因表达的影响,以探讨ZOL抑制破骨细胞性骨吸收的分子机制。

1. 材料和方法

1.1. 实验材料

小鼠单核巨噬细胞株RAW264.7购自北京军事医学科学院;核因子κB受体活化因子配体(receptor activator of nuclear factor kappa B ligand,RANKL)(Biovision公司,美国);RPMI1640培养基、胎牛血清(Hyclone公司,美国);抗酒石酸酸性磷酸酶(tartrate-resistant acid phosphatase,TRAP)染色试剂盒(Sigma公司,美国);整合素αv、β3兔抗鼠多克隆抗体(Biolegend公司,美国)。

1.2. 破骨细胞诱导及实验分组

RAW264.7细胞株用50 ng·mL−1 RANKL诱导,使之向破骨细胞分化;诱导5 d后进行TRAP染色及牙本质磨片吸收陷窝检测[4],评价破骨细胞生成及骨吸收功能情况。

实验分组:细胞分为对照组和ZOL处理组,均用50 ng·mL−1 RANKL诱导5 d;其中ZOL组在RANKL诱导3 d后用1×10−6 mol·L−1的ZOL处理2 d。5 d后收获细胞,进行相关检测。

1.3. 破骨细胞黏附功能检测

将两组细胞按每孔5×103个细胞的密度接种于明胶包被的96孔板中,每组3孔,37 °C孵育2 h;然后用4%多聚甲醛固定10 min,PBS洗3次;再用2%结晶紫染液染色15 min,PBS洗3次后过夜;上酶标仪,595 nm波长处测每孔的光密度(optical density,OD)值。OD值越高,提示结晶紫染色越强,细胞黏附数目越多。

1.4. 整合素αv、β3基因和蛋白表达检测

免疫荧光化学检测:培养5 d收获细胞,兔抗鼠整合素αv、β3多克隆抗体4 °C孵育过夜,以异硫氰酸荧光素(fluorescein isothiocyanate,FITC)标记的羊抗兔IgG为二抗,37 °C杂交2 h;碘化丙啶(propidium iodide,PI)复染,封片;激光扫描共聚焦显微镜(laser scanning confocal microscope,LSCM)观察。实时荧光定量聚合酶链反应(realtime fluorescence quantitative polymerase chain reaction,real-time PCR)检测mRNA表达:Trizol提取总RNA,逆转录合成cDNA;在Rotor-Gene 3000型荧光定量聚合酶链反应仪上进行实时检测,所用引物见表1。反应条件:95 °C,15 s;60 °C,40 s;72 °C,15 s;共40个循环。实验结果用Rotor-Gene软件进行分析。

表 1. real-time PCR所用目的基因及引物.

Tab 1 Primers of genes used in real-time PCR

基因 GenBank号 引物序列 产物长度/bp
整合素αv NM-008402.2 上游:5′-AGGCTGGAACTCAACTGCCT-3′ 364
下游:5′-TTGGCCCGTCAATGTCGTAA-3′
整合素β3 NM-016780.2 上游:5′-GCCTTCGTGGACAAGCCTGT-3′ 390
下游:5′-GGACAATGCCTGCCAGTCTT-3′
GAPDH NM-008084.2 上游:5′-AATGTGTCCGTCGTGGATCT-3′ 263
下游:5′-TCCACCACCCTGTTGCTGTA-3′

Western blot检测蛋白质表达:提取细胞总蛋白,煮沸变性5 min,凝胶电泳并转膜,5%牛血清白蛋白室温封闭2 h,兔抗鼠整合素αv、β3多克隆一抗孵育过夜;二抗孵育2 h,四唑硝基蓝(5-bromo-4-chloro-3-indolyl phosphate/tetranitroblue tetrazolium chloride,BCIP/NBT)显色1 min;以甘油醛-3-磷酸脱氢酶(glyceraldehyde-3-phosphate dehydrogenase,GAPDH)作为对照;用Image J分析软件检测膜上每个条带的相对灰度值。上述检测每组均检测3个样本。

1.5. 统计学分析

原始数据用Excel 2003建库,应用SPSS 13.0统计学软件对数据进行两独立样本t检验,检验水准为双侧α=0.05。

2. 结果

2.1. 破骨细胞生成及骨吸收功能检测

RAW264.7细胞经RANKL诱导5 d后,可见许多体积较大的细胞,呈圆形、梭形、椭圆形或不规则状;TRAP染色呈阳性,细胞内含有多个细胞核,一般为5~7个(图1A)。经扫描电子显微镜(scanning electron microscope,SEM)观察,这些细胞在牙本质磨片上可形成吸收陷窝(图1B),直径20~40 µm。上述结果表明,RAW264.7细胞被成功诱导成为具有骨吸收功能的破骨细胞。

图 1. 破骨细胞TRAP染色及牙本质磨片吸收陷窝.

图 1

Fig 1 Detection of osteoclasts by TRAP staining and dentin resorptive lacunae examination

A:TRAP × 200;B:SEM × 500。

2.2. ZOL对破骨细胞黏附功能的影响

对照组和ZOL处理组的OD值分别为0.231±0.018和0.152±0.010,ZOL组显著低于对照组(P<0.01);提示ZOL可以抑制破骨细胞的黏附功能。

2.3. 免疫荧光化学检测破骨细胞整合素αv、β3蛋白表达

整合素αv、β3的免疫荧光化学染色结果见图23。经LSCM观察,整合素αv、β3在两组破骨细胞(多核)及其前体细胞质内均呈阳性表达(绿色荧光),其中整合素β3还部分表达于细胞核(图23);两组比较,整合素αv、β3在对照组细胞中表达较强,而在ZOL组中表达较弱。应用Photoshop CS4对荧光灰度值进行测量,对照组αv、β3荧光强度分别为15.159±1.143和11.418±1.095,均显著高于ZOL组的9.491±0.748和4.744±0.759(P<0.01);ZOL处理使αv、β3荧光强度分别降低了37.39%和58.45%。该结果提示,ZOL可显著抑制整合素αv、β3蛋白表达水平。

图 2. 免疫荧光化学法检测破骨细胞中整合素αV的表达 LSCM × 400.

图 2

Fig 2 Detection of integrin αv expression within osteoclasts by immunofluorescent chemistry LSCM × 400

上:对照组;下:ZOL处理组;A1、B1:FITC标记整合素αv蛋白(绿色);A2、B2:PI标记细胞核(红色);A3、B3:融合图像;A4、B4:无荧光视野。

图 3. 免疫荧光化学法检测破骨细胞中整合素β3的表达 LSCM × 400.

图 3

Fig 3 Detection of integrin β3 expression within osteoclasts by immunofluorescent chemistry LSCM × 400

上:对照组;下:ZOL处理组;A1、B1:FITC标记整合素β3蛋白(绿色);A2、B2:PI标记细胞核(红色);A3、B3:融合图像;A4、B4:无荧光视野。

2.4. real-time PCR检测整合素αv、β3 mRNA表达

ZOL处理组整合素αv、β3 mRNA的表达水平分别为0.66±0.05、0.59±0.08,明显低于对照组的1.01±0.01和1.01±0.02(P<0.01);提示ZOL可显著抑制破骨细胞中整合素αv、β3 mRNA的表达水平。

2.5. Western-blot检测整合素αv、β3蛋白表达

对照组和ZOL处理组整合素αv、β3蛋白表达见图4。ZOL组整合素αv、β3蛋白灰度值分别为31 934.84±112.91和18 812.79±194.13,均低于对照组的52 517.81±211.72和31 441.93±456.87,差异有统计学意义(P<0.01)。与对照组比较,ZOL组整合素αv、β3分别下降了39.19%和40.17%。该结果提示ZOL能够显著抑制整合素αv、β3的蛋白表达。

图 4. Western blot检测整合素αv、β3蛋白的表达.

图 4

Fig 4 Detection of protein level of integrin αv and β3 by Western blot

从上到下依次为整合素αv、β3和GAPDH。

3. 讨论

整合素是细胞表面重要的黏附受体,是由α、β两个亚基组成的异源二聚体,参与细胞与基质、细胞与细胞间的接触[2]。破骨细胞表面主要表达整合素αv和β3,通过与骨桥蛋白、骨涎蛋白、玻连蛋白等骨基质蛋白内的精氨酸-甘氨酸-天冬氨酸(Arg-Gly-Asp,RGD)序列结合,调控破骨细胞的黏附、迁移、封闭区形成及骨吸收[5]

研究[2],[6]表明,许多信号分子参与了整合素αv、β3介导的信号调控。整合素αv、β3与骨基质蛋白中RGD序列结合,从而使细胞质与其结合的c-Src活化,并与适配蛋白脾酪氨酸激酶(spleen tyrosine kinase,Syk)形成复合体。Syk通过SH2功能域与破骨细胞表面DNAX活化蛋白12(DNAX-activating protein 12,Dap12)的免疫酪氨酸活化基序(immunoreceptor tyrosine-based activation motif,ITAM)功能域结合。活化的c-Src使Syk磷酸化,进而激活下游信号分子SLP-76(含有SH2结构域的相对分子质量为7.6×104的白细胞蛋白)和鸟嘌呤转换因子Vav3,使无活性的Rac转变成活性Rac,从与二磷酸鸟苷(guanosine diphosphate,GDP)结合转变成与三磷酸鸟苷(guanosine triphosphate,GTP)结合;从而诱发破骨细胞的细胞骨架重排形成肌动蛋白环。整合素αv、β3分布于肌动蛋白环的内侧和外侧,形成封闭区,为骨吸收提供所需的微环境。

整合素αv、β3功能改变会对破骨细胞黏附、细胞骨架重排及封闭区形成产生重要影响。整合素β3基因敲除小鼠表现出明显的骨量增加,这与破骨细胞介导的骨吸收障碍有关[7]。即使在RANKL和巨噬细胞集落刺激因子(macrophage colony stimulating factors,M-CSF)作用下,整合素β3-/-破骨细胞也不能形成肌动蛋白环,骨吸收活性明显下降[8];整合素β3点突变会使破骨细胞迁移能力显著降低[9]。双膦酸盐作为破骨细胞的有效抑制药物,能否通过影响整合素αv、β3来发挥对破骨细胞的抑制作用,目前尚不清楚。在本研究中,应用RANKL诱导RAW263.7细胞向破骨细胞分化,同时用1×10−6 mol·L−1 ZOL处理;发现ZOL处理组整合素αv、β3 mRNA水平较对照组明显下降,蛋白水平也分别下降了39.19%和40.17%;免疫荧光检测也表明,ZOL组整合素αv、β3荧光强度显著降低,分别下降了37.39%和58.45%。上述结果提示,ZOL可显著抑制破骨细胞中整合素αv、β3基因表达,从而影响αv、β3在破骨细胞黏附、细胞骨架重排及骨吸收中的作用。结晶紫染色实验进一步表明,ZOL处理组OD值显著低于对照组,证实了ZOL对破骨细胞黏附的抑制作用。国外学者[10]应用人成骨细胞作为研究对象,发现ZOL同样可抑制细胞黏附及整合素αv、β3基因的表达。研究[11]发现,接受双膦酸盐长期治疗的患者体内存在巨大的破骨细胞,不能贴附于骨组织表面,这也可能与双膦酸盐对破骨细胞表面整合素αv、β3的抑制有关。

研究整合素在破骨细胞功能中的作用有极其重要的价值。破骨细胞在骨质疏松、多发性骨髓瘤、骨转移瘤等多种病理性骨吸收中发挥着重要作用[1];而其进行骨吸收的前提是通过整合素αv、β3与骨基质表面发生黏附,使细胞骨架重排,形成封闭区和皱褶缘,为骨吸收提供局部微环境[2],[5][6]。临床前研究表明,整合素αv、β3靶向药物,如多肽(S247、ATN-161、cilengitide)及非肽类小分子(PSK1404),均可有效抑制骨吸收及肿瘤骨转移[12][13];从而为以整合素αv、β3为靶向进行药物干预,抑制上述病理状态下的骨吸收开辟了新途径。

本研究表明,在体外ZOL可有效地抑制破骨细胞整合素αv、β3的基因表达,降低细胞的黏附能力;ZOL的上述作用可能与其对破骨细胞性骨吸收的抑制有关。

Funding Statement

[基金项目] 国家自然科学基金资助项目(81270965,81101448);河北省自然科学基金资助项目(C2011401044)

References

  • 1.Edwards JR, Weivoda MM. Osteoclasts: malefactors of disease and targets for treatment[J] Discov Med. 2012;13(70):201–210. [PubMed] [Google Scholar]
  • 2.Izawa T, Zou W, Chappel JC, et al. c-Src links a RANK/αvβ3 integrin complex to the osteoclast cytoskeleton[J] Mol Cell Biol. 2012;32(14):2943–2953. doi: 10.1128/MCB.00077-12. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
  • 3.Piper PK, Jr, Gruntmanis U. Management of osteoporosis in the aging male: focus on zoledronic acid[J] Clin Interv Aging. 2009;4:289–303. doi: 10.2147/cia.s4295. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
  • 4.刘 强, 董 伟, 戚 孟春, et al. 阿仑膦酸盐对破骨细胞生成的抑制及钙离子激动剂的拮抗效应[J] 实用口腔医学杂志. 2012;28(2):182–186. [Google Scholar]
  • 5.Szabo AM, Howell NR, Pellegrini P, et al. Development and validation of competition binding assays for affinity to the extracellular matrix receptors, αvβ3 and αIIbβ3 integrin[J] Anal Biochem. 2012;423(1):70–77. doi: 10.1016/j.ab.2011.12.046. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
  • 6.Teitelbaum SL. The osteoclast and its unique cytoskeleton[J] Ann N Y Acad Sci. 2011;1240:14–17. doi: 10.1111/j.1749-6632.2011.06283.x. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]
  • 7.McHugh KP, Hodivala-Dilke K, Zheng MH, et al. Mice lacking beta 3 integrins are osteosclerotic because of dys-functional osteoclasts[J] J Clin Invest. 2000;105(4):433–440. doi: 10.1172/JCI8905. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
  • 8.Feng X, Novack DV, Faccio R, et al. A Glanzmann's mutation in beta 3 integrin specifically impairs osteoclast function[J] J Clin Invest. 2001;107(9):1137–1144. doi: 10.1172/JCI12040. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
  • 9.Faccio R, Novack DV, Zallone A, et al. Dynamic changes in the osteoclast cytoskeleton in response to growth factors and cell attachment are controlled by beta 3 integrin[J] J Cell Biol. 2003;162(3):499–509. doi: 10.1083/jcb.200212082. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
  • 10.Koch FP, Wunsch A, Merkel C, et al. The influence of bisphosphonates on human osteoblast migration and integrin avb3/tenascin C gene expression in vitro[J] Head Face Med. 2011;7(1):4. doi: 10.1186/1746-160X-7-4. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
  • 11.Weinstein RS, Roberson PK, Manolagas SC. Giant osteoclast formation and long-term oral bisphosphonate therapy[J] N Engl J Med. 2009;360(1):53–62. doi: 10.1056/NEJMoa0802633. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
  • 12.Clézardin P. Therapeutic targets for bone metastases in breast cancer[J] Breast Cancer Res. 2011;13(2):207. doi: 10.1186/bcr2835. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
  • 13.Clëzardin P. Integrins in bone metastasis formation and potential therapeutic implications[J] Curr Cancer Drug Targets. 2009;9(7):801–806. doi: 10.2174/156800909789760348. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]

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